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    油菜蜂花粉乙醇提取物對異丙腎上腺素致心肌細(xì)胞肥大的保護作用及機制研究

    2021-11-03 13:58:56陳立府李志良謝仕慧史培穎
    天然產(chǎn)物研究與開發(fā) 2021年10期
    關(guān)鍵詞:蜂花粉心肌細(xì)胞試劑盒

    陳立府,孟 菲,2,李志良,2,謝仕慧,史培穎,3 *

    1福建農(nóng)林大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院(蜂學(xué)學(xué)院);2福建農(nóng)林大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院;3天然生物毒素國家地方聯(lián)合工程實驗室,福州 350002

    心力衰竭(heart failure,HF)是一種常見的心血管病綜合征,是各種心臟疾病發(fā)展的終末階段,其致殘率和死亡率均較高。心臟肥大(cardiac hypertrophy,CH)是HF過程中的早期適應(yīng)性反應(yīng),但是長時間的CH會加速心肌纖維化和心臟收縮功能障礙,進而加快HF的進程[1]。CH不僅會引發(fā)充血性心力衰竭,也是高血壓、心臟瓣膜病、擴張型心肌病、心肌缺血、心肌梗死、心律失常和猝死的獨立危險因素[2]。對CH的控制可以顯著延緩心肌病的進程。延緩或避免CH的發(fā)生是一個主要的治療目標(biāo)。

    異丙腎上腺素(isoproterenol,ISO)屬于腎上腺素能受體激動劑。重復(fù)或連續(xù)注射ISO興奮β1-腎上腺素能受體,可使心肌產(chǎn)生毒性損傷,增加心肌的收縮力和耗氧量致使心律失常、后負(fù)荷增高和心肌缺血壞死等,導(dǎo)致心肌重塑,從而誘發(fā)代償性CH[3]。因此,ISO常被用來建立CH模型。研究表明ISO誘導(dǎo)的CH會伴有心肌細(xì)胞面積增加、蛋白質(zhì)合成過多以及CH的標(biāo)記基因如心鈉素(ANP)、腦鈉肽(BNP)和β-肌球蛋白重鏈(β-MHC)等的再激活[4,5]。

    蜂花粉是眾多蜂產(chǎn)品中的典型代表之一,所含成分豐富。據(jù)Thakur等的統(tǒng)計顯示,蜂花粉主要成分包括碳水化合物(54.22%)、蛋白質(zhì)(21.30%)、脂質(zhì)(5.31%)、纖維(8.75%)、灰分(2.91%)等[6],還含有酚酸類化合物、黃酮類化合物、多胺、核苷、氨基酸、脂肪酸、維生素等[6-8]。蜂花粉具有抗氧化[9]、抗心肌梗死[7]、保護肝腎[10]等多種藥理活性,具有潛在的應(yīng)用價值。課題組前期研究了五味子蜂花粉乙醇提取物及其主要成分對H2O2損傷H9c2心肌細(xì)胞的保護作用及其機制[11],證實蜂花粉的抗氧化能力對心肌細(xì)胞損傷具有保護作用。油菜蜂花粉是蜂產(chǎn)品市場的熱銷品之一,Zhang等[9]通過比較不同蜂花粉中總酚和總黃酮含量及抗氧化能力的差異,發(fā)現(xiàn)油菜蜂花粉的總酚和總黃酮含量較高,抗氧化能力也較強。本文以常見蜂花粉—油菜蜂花粉乙醇提取物(rape bee pollen ethanol extract,RBPEE)為研究對象,鑒定其主要化學(xué)成分,并研究其對ISO誘導(dǎo)心肌細(xì)胞肥大的干預(yù)作用及可能的分子機制,為蜂花粉資源的深度開發(fā)利用奠定基礎(chǔ)。

    1 實驗材料與方法

    1.1 主要試劑與材料

    1.1.1 蜂花粉

    油菜(BrassicanapusL.)蜂花粉于2018年12月購自鮮蜂堂青海養(yǎng)蜂基地,按照國標(biāo)GB/T 30359-2013進行蜂花粉純度鑒定,純度大于95%,符合實驗要求,于4 ℃保存。

    1.1.2 心肌細(xì)胞系

    H9c2(2-1)(Procell CL-0089)心肌細(xì)胞株購買自普諾賽生命科技有限公司(武漢,中國)。

    1.1.3 主要實驗試劑

    純凈水(怡寶);色譜級甲醇、乙腈(德國Merck);甲酸、磷酸鹽緩沖溶液PBS(國藥集團化學(xué)試劑有限公司);胎牛血清FBS、DMEM高糖培養(yǎng)基(賽澳美細(xì)胞技術(shù)有限公司);青鏈霉素混合液、胰蛋白酶(美國HyClone公司);鹽酸異丙腎上腺素(上海阿拉丁生化科技股份有限公司);尿苷、鳥苷(純度≥98%)、卡托普利、細(xì)胞級DMSO(北京索萊寶科技有限公司);BCA蛋白定量測定試劑盒、丙二醛(MDA)試劑盒、谷胱甘肽(GSH)試劑盒、超氧化物歧化酶(SOD)試劑盒(南京建成生物工程研究所);YF?488標(biāo)記鬼筆環(huán)肽(YF?488-Phalloidin)(綠色)(蘇州宇恒生物科技有限公司);TransZol UP試劑盒(北京全式金生物技術(shù)有限公司);逆轉(zhuǎn)錄和熒光定量PCR試劑盒(南京諾唯贊生物科技股份有限公司);PCR引物(福州尚亞生物技術(shù)有限公司)。

    1.1.4 主要儀器設(shè)備

    Agilent 1290 Infinity LC儀器、Agilent 6530 QTOF質(zhì)譜儀(安捷倫科技有限公司);5% CO2培養(yǎng)箱(C150)(Binder);生物安全柜(Hfsafe-1500 A2電動型)(廣州莫菲公司);倒置熒光顯微鏡(TS2-C-S-EC-ELWD 0.3)(Nikon);倒置顯微鏡(TS-100f)(Nikon);酶標(biāo)儀(Infinite F50、Infinite Pro200)(Tecan);Real-Time System C1000 Touch Thermal Cycler PCR儀(BIORAD);梯度PCR儀(Applied Biosystems);超微量分光光度計(浙江金華益迪醫(yī)療設(shè)備廠);培英HZQ-F100全溫雙層振蕩培養(yǎng)箱(濟南好來寶醫(yī)療器材有限公司);FreeZone(Plus)4.5 L冷凍干燥機(賽默飛);3K15臺式高速冷凍離心機(Sigma)。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 RBPEE的制備及主要成分鑒定

    1.2.1.1 RBPEE的制備

    根據(jù)課題組前期研究[11],用粉碎機將干燥后的蜂花粉粉碎,稱取蜂花粉粉末,以料液比1∶15加入70%乙醇混勻,進行搖床振搖提取(240 rpm,37 ℃)結(jié)合超聲提取(振搖24 h,超聲20 min),重復(fù)操作2次。將提取液進行抽濾,濾液在4 ℃條件下,8 000 rpm離心10 min,取上清液于圓底燒瓶中進行旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)(46~50 ℃,0.07 MPa)至浸膏狀,收集底物進行冷凍干燥,收集凍干粉備用。

    1.2.1.2 RBPEE主要成分鑒定

    精確稱量10 mg蜂花粉凍干粉,將其溶解于1 mL的70%甲醇溶液中,渦旋2 min后超聲5 min,再14 000 rpm離心10 min,取上清液至進樣瓶中,用于UPLC-MS分析。

    1.2.1.2.1 UPLC條件

    UPLC分析在Agilent 1290 Infinity LC儀器上進行,該儀器由四元泵、自動進樣器、柱溫室和二極管陣列檢測器組成。樣品在Zorbax SB-C18色譜柱(3.5 μm,100 mm × 2.1 mm內(nèi)徑)上分離。流動相為超聲除氣后的0.1%甲酸水溶液(A)-甲醇(B),梯度洗脫條件如下:0~3 min:10%(B);3~10 min:10%~65%(B);10~10.5 min:65%~80%(B);10.5~15 min:80%(B)。UV檢測波長設(shè)定為254 nm。柱溫和流速分別設(shè)置為20 ℃和0.2 mL/min,進樣體積1 μL[11]。

    1.2.1.2.2 Q-TOF MS條件

    UPLC系統(tǒng)連接到配備Dual ESI電噴霧離子源的Agilent 6530 QTOF質(zhì)譜儀:毛細(xì)管電壓在(-)ESI模式下為3.5 kV;霧化器壓力為40 psig;干燥氣體(氮氣)流量為10.0 L/min,溫度為325 ℃;OCT 1 RF Vpp為750 V。掃描范圍為m/z100~1 500。

    1.2.2 細(xì)胞培養(yǎng)樣品制備

    完全培養(yǎng)基:10%胎牛血清+1%青霉素、鏈霉素雙抗+89% DMEM高糖培養(yǎng)基;不完全培養(yǎng)基:1%青霉素、鏈霉素雙抗+99% DMEM高糖培養(yǎng)基;細(xì)胞凍存液:55% DMEM高糖培養(yǎng)基+40%胎牛血清+5% DMSO。

    使用細(xì)胞級DMSO配制蜂花粉以及卡托普利(Captopril)儲備液:RBPEE制成100 mg/mL的儲備液;卡托普利儲備液濃度為1 mmol/L。10 mmol/L的ISO儲備液用完全培養(yǎng)液直接溶解制得。臨用時,分別用完全培養(yǎng)液稀釋上述儲備液至所需濃度。

    1.2.3 細(xì)胞分組及給藥

    H9c2細(xì)胞經(jīng)種板孵育24 h后,按表1分組情況進行加樣:除陰性對照組加完全培養(yǎng)液,陽性對照組加0.1 mmol/L卡托普利,其他組加入對應(yīng)體積各濃度梯度RBPEE溶液進行培養(yǎng)24 h。培養(yǎng)24 h后加入不完全培養(yǎng)液進行饑餓12 h,最后經(jīng)PBS清洗后,除陰性對照組加完全培養(yǎng)液,其余各組都加入50 μmol/L的ISO損傷細(xì)胞48 h。

    表1 細(xì)胞分組給藥情況Table 1 Cell group administration

    1.2.4 心肌細(xì)胞骨架染色及表面積測定

    將各組給藥處理的H9c2心肌細(xì)胞根據(jù)YF?488標(biāo)記鬼筆環(huán)肽染色說明書進行固定染色。細(xì)胞經(jīng)PBS清洗后用含有4%多聚甲醛溶液冰上固定15 min,PBS清洗后再利用0.5% Trion X-100溶液在室溫下透化10 min,繼續(xù)用PBS清洗,隨后用200 μL PBS溶液稀釋5 μL YF熒光標(biāo)記的鬼筆環(huán)肽儲液配成染液,室溫避光孵育30 min進行染色。PBS清洗后在倒置熒光顯微鏡400倍的視野下進行觀察并拍照。每組隨機選取4~6個視圖,用Oplenic軟件對照片中心肌細(xì)胞的表面積進行測量,取其平均值。

    1.2.5 細(xì)胞總蛋白含量、SOD和GSH的測定

    細(xì)胞總蛋白含量、SOD和GSH測定方法根據(jù)測定試劑盒說明書微調(diào)后進行操作。即,細(xì)胞培養(yǎng)48 h后,胰酶消化細(xì)胞并終止,1 000 rpm離心5 min,棄上清,再加入1 mL生理鹽水吹打混勻,1 000 rpm離心5 min棄上清,留細(xì)胞沉淀,再加入0.3 mL生理鹽水,冰水浴下電動研磨,每次15~20 s,間隔30 s,總共研磨4次,不離心根據(jù)蛋白定量測定試劑盒、SOD測定試劑盒(WST-1法)和微量還原型GSH測定試劑盒(微板法)說明書加樣表直接取樣檢測。

    1.2.6 細(xì)胞MDA測定

    細(xì)胞MDA含量測定方法根據(jù)測定試劑盒(微板法)說明書微調(diào)后進行操作。消化、清洗、離心后留沉淀加入0.5 mL試劑五提取液懸浮細(xì)胞,混勻2 min后冰水浴下電動研磨破碎細(xì)胞,每次15~20 s,間隔30 s,總共研磨4次,取0.1 mL破碎后的細(xì)胞懸液于1.5 mL離心管中(預(yù)先在管蓋上刺一個小孔),然后根據(jù)說明書加樣表進行操作計算。

    1.2.7 實時熒光定量PCR

    按給藥分組情況處理細(xì)胞后按照TransZol UP試劑盒對各組細(xì)胞的RNA進行提取,并進行RNA濃度的測定。使用HiScript?Ⅱ Q RT SuperMix 試劑盒,根據(jù)說明書將所得樣品的RNA進行反轉(zhuǎn)錄,合成cDNA。以cDNA為模板,按ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix試劑盒說明書配制反應(yīng)體系,每個樣品設(shè)3個復(fù)孔。從65 ℃到95 ℃,以0.5 ℃/5 s逐漸增溫,同時檢測熒光信號來獲得熔解曲線。反應(yīng)結(jié)束后,根據(jù)儀器生成的循環(huán)閾值Ct,取重復(fù)組別的平均Ct值做數(shù)據(jù)分析,計算各基因的相對表達(dá)量。根據(jù)引物設(shè)計原則,利用NCBI網(wǎng)頁端設(shè)計PCR引物(見表2)。

    表2 PCR擴增的引物序列Table 2 Primer sequences for PCR amplification

    1.2.8 數(shù)據(jù)分析

    所有數(shù)據(jù)均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示。使用GraphPad Prism 8.0軟件單因素方差分析對各組樣品進行顯著性差異分析。當(dāng)P< 0.05時,表示具有顯著性差異;當(dāng)P< 0.01時,表示差異具有極顯著性。

    2 結(jié)果

    2.1 UPLC-ESI-QTOF MS分析RBPEE的主要成分

    RBPEE在254 nm處的UV色譜圖和負(fù)離子模式的總離子流色譜圖見圖1,初步鑒定了7種主要成分,包括1種糖類、2種核苷類、1種多胺和3種黃酮類化合物,鑒定結(jié)果見表3。

    表3 RBPEE中的各峰分配情況Table 3 Peak assignments for the analysis of RBPEE

    圖1 RBPEE在254 nm的UV色譜圖(A)和負(fù)離子模式的總離子流色譜圖(B)Fig.1 UV chromatogram at 254 nm (A) and total ion chromatogram in negative ion mode of RBPEE (B)

    峰1的[M-H]-離子的質(zhì)荷比為195.051 45,分子式為C6H12O7,不飽和度為1,該化合物初步推測為葡萄糖酸[11]。峰2的[M-H]-離子的質(zhì)荷比為243.062 16,分子式為C9H12N2O,不飽和度為5,通過與標(biāo)準(zhǔn)品對照,該化合物鑒定為尿苷[11];峰3的[M-H]-離子的質(zhì)荷比為282.084 06,分子式為C10H13N5,不飽和度為7,通過與標(biāo)準(zhǔn)品對照,該化合物鑒定為鳥苷[11]。峰4的[M-H]-離子的質(zhì)荷比為436.223 02,分子式為C25H31N3O4,不飽和度為12,該化合物初步鑒定為N′,N′′-雙(對香豆酰)亞精胺[8]。峰5的[M-H]-離子的質(zhì)荷比為625.142 37,分子式是C27H30O17,不飽和度為13,該化合物初步鑒定為槲皮素-3-O-(2′′-O-吡喃葡萄糖基)-吡喃葡萄糖苷[8]。峰6和峰7具有相同分子離子,其[M-H]-離子質(zhì)荷比分別為609.145 92和609.143 18,分子式為C27H30O16,不飽和度都為13,根據(jù)先前報道[8],峰6初步鑒定為槲皮素-3-O-(2′′-O-吡喃葡萄糖基)-鼠李糖苷,峰7鑒定為山奈酚-3-O-(2′′-O-吡喃葡萄糖基)-吡喃葡萄糖苷。

    2.2 RBPEE對細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化、表面積和總蛋白含量的影響

    ISO處理48 h后,通過顯微(400×)觀察,發(fā)現(xiàn)陰性對照組細(xì)胞形態(tài)及生存狀態(tài)良好,未見異常變化,細(xì)胞呈單層簇狀,多呈放射狀的同心圓排列,收縮有力;模型組心肌細(xì)胞呈現(xiàn)顯著的病理性形態(tài)學(xué)變化,細(xì)胞核暗淡,間質(zhì)水腫,細(xì)胞肥大,胞間隙明顯縮小,排列紊亂。與模型組相比,卡托普利組和RBPEE處理組細(xì)胞形態(tài)及生存狀態(tài)明顯好轉(zhuǎn),心肌細(xì)胞形態(tài)回縮,細(xì)胞間隙恢復(fù)(見圖2)。各組細(xì)胞經(jīng)鬼筆環(huán)肽染色后,模型組與陰性對照組相比,細(xì)胞明顯肥大,細(xì)胞骨架的微絲密度增大,細(xì)胞形態(tài)中梭形占比減少、圓形占比增加,胞間隙明顯縮小,分布不均勻且排列紊亂,更易聚集成團。與模型組比較,卡托普利組和RBPEE處理組的細(xì)胞體積明顯縮小,形態(tài)恢復(fù)梭形,細(xì)胞骨架微絲密度顯著降低,細(xì)胞間隙增加,排列恢復(fù)齊整。

    圖2 RBPEE對H9c2心肌細(xì)胞形態(tài)的影響(左:未染色,右:鬼筆環(huán)肽染色)Fig.2 Effect of RBPEE on morphology of H9c2 cardiomyocytes (left:no staining,right:phalloidin staining)注:A:陰性對照組;B:模型組;C:陽性對照組;D:低濃度組,E:中濃度組,F(xiàn):高濃度組;“→”指示細(xì)胞失去梭形呈圓形;“○”標(biāo)注細(xì)胞胞間隙明顯縮小聚集成團。下同。Note:A:Negative control;B:Model;C:Positive control;D:Low concentration;E:Middle concentration;F:High concentration;“→” indicates a loss of spindle and a round shape;“○” note that the intercellular space is significantly reduced and aggregates.The same below.

    細(xì)胞骨架染色后的細(xì)胞表面積結(jié)果如表4所示,模型組相較于陰性對照組的細(xì)胞表面積平均增大了40.28%,不同濃度的RBPEE處理后分別降低了24.93%(低濃度組)、26.58%(中濃度組)、29.24%(高濃度組),且都具有顯著性差異(P< 0.01,相較于模型組)。

    表4 RBPEE對H9c2細(xì)胞表面積的影響

    RBPEE處理后的各組細(xì)胞經(jīng)過48 h的ISO損傷后,各組細(xì)胞總蛋白含量結(jié)果如圖3所示。模型組的總蛋白含量相較于陰性對照組顯著增加(P< 0.01);與模型組相比,低、中、高濃度RBPEE預(yù)處理后,總蛋白含量均顯著降低(P< 0.01)。

    圖3 RBPEE處理對心肌細(xì)胞總蛋白含量的影響(n = 6)Fig.3 Effect of RBPEE treatment on total protein content in cardiomyocytes (n = 6)注:與陰性對照組相比,** P < 0.01;與模型組相比,## P < 0.01。Note:Compared with negative control,** P < 0.01; Compared with model,## P < 0.01.

    綜上,RBPEE能夠顯著降低肥大心肌細(xì)胞的表面積和總蛋白含量,對ISO致心肌細(xì)胞肥大具有保護作用。

    2.3 RBPEE對心肌細(xì)胞肥大標(biāo)志物mRNA表達(dá)水平的影響

    RBPEE處理后,心肌細(xì)胞肥大標(biāo)志物ANP、BNP和β-MHC的mRNA表達(dá)水平如圖4所示。在ISO處理的模型組中,ANP、BNP和β-MHC的基因表達(dá)水平相較于陰性對照組顯著增加(P< 0.01)。與模型組相比,低、中、高濃度RBPEE組ANP和BNP基因表達(dá)水平顯著降低(P< 0.01);中、高濃度RBPEE組β-MHC基因表達(dá)水平顯著降低(P<0.01)。綜上,RBPEE能夠顯著降低三種心肌細(xì)胞肥大標(biāo)志物的mRNA表達(dá)水平,對ISO致心肌細(xì)胞肥大具有保護作用。

    圖4 RBPEE處理對心肌細(xì)胞肥大標(biāo)志物基因表達(dá)的影響(n = 3)Fig.4 Effect of RBPEE treatment on the gene expression of hypertrophy markers in cardiomyocytes (n = 3)注:與陰性對照組相比,** P < 0.01;與模型組相比,## P < 0.01。Note:Compared with negative control,** P < 0.01;Compared with model, ## P < 0.01.

    2.4 RBPEE對H9c2心肌細(xì)胞中SOD、GSH和MDA的影響

    RBPEE處理后各組細(xì)胞中SOD活力和GSH、MDA的含量如表5所示。相較于陰性對照組,模型組中SOD活力和GSH含量都顯著降低(P< 0.01),MDA含量則顯著升高(P< 0.01)。三種濃度RBPEE處理后的SOD活性和GSH含量較模型組顯著升高(P< 0.05,P< 0.01);MDA含量在RBPE處理后較模型組均顯著降低(P< 0.01)。實驗結(jié)果表明,給予RBPEE處理后可以降低ISO對H9c2心肌細(xì)胞造成的氧化損傷,提高細(xì)胞的抗氧化能力。

    表5 RBPEE對H9c2細(xì)胞中SOD、GSH和MDA的影響Table 5 Effect of RBPEE on SOD,GSH and MDA in H9c2 cells = 6)

    2.5 RBPEE對心肌細(xì)胞中炎癥相關(guān)指標(biāo)mRNA表達(dá)的影響

    RBPEE處理對心肌細(xì)胞白細(xì)胞介素2(IL-2)、白細(xì)胞介素6(IL-6)和腫瘤壞死因子-α(TNF-α)的mRNA表達(dá)水平的影響如圖5所示,相較于陰性對照組,模型組上述基因的表達(dá)水平均顯著增加(P< 0.01);與模型組相比,低、中、高濃度RBPEE組IL-6和TNF-α的基因表達(dá)水平顯著降低(P< 0.05,P< 0.01);中、高濃度RBPEE組IL-2的基因表達(dá)水平顯著降低(P< 0.05,P< 0.01)。上述結(jié)果表明,給予RBPEE預(yù)處理后,可以顯著降低ISO對H9c2心肌細(xì)胞造成的炎癥反應(yīng),提高細(xì)胞的抗炎能力。

    圖5 RBPEE處理對心肌細(xì)胞炎癥相關(guān)指標(biāo)基因表達(dá)的影響(n = 3)Fig.5 Effect of RBPEE treatment on the gene expression of inflammation-related factors in cardiomyocytes (n = 3) 注:與陰性對照組相比,** P < 0.01;與模型組相比,# P < 0.05,## P < 0.01。Note:Compared with negative control,** P < 0.01;Compared with model, # P < 0.05,## P < 0.01.

    2.6 RBPEE對心肌細(xì)胞中凋亡相關(guān)指標(biāo)mRNA表達(dá)的影響

    在RBPEE處理后,B淋巴細(xì)胞瘤-2(Bcl-2)、Bcl-2相關(guān)X蛋白(Bax)、半胱氨酸蛋白酶-3(Caspase-3)、半胱氨酸蛋白酶-8(Caspase-8)和半胱氨酸蛋白酶-9(Caspase-9)的mRNA表達(dá)水平變化情況如圖6所示,模型組中上述基因的表達(dá)水平相較于陰性對照組均有顯著變化(P< 0.01):除抗凋亡基因Bcl-2的基因表達(dá)水平和Bcl-2/Bax的比值顯著降低外,其余四個基因的表達(dá)水平都顯著提高;在低、中、高濃度的RBPEE處理后,Bax的基因表達(dá)水平相較于模型組顯著降低(P< 0.01),而Bcl-2的基因表達(dá)水平以及Bcl-2/Bax的比值相較于模型組顯著提高(P< 0.05,P< 0.01);在低、高濃度的RBPEE處理后,Caspase-3的基因表達(dá)水平相較于模型組顯著降低(P< 0.05);在高濃度的RBPEE處理后,Caspase-8和Caspase-9的基因表達(dá)水平相較于模型組顯著降低(P< 0.01)。上述結(jié)果表明RBPEE可以通過調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡相關(guān)基因的表達(dá)而降低ISO誘導(dǎo)的H9c2心肌細(xì)胞肥大損傷。

    圖6 RBPEE處理對心肌細(xì)胞凋亡相關(guān)指標(biāo)基因表達(dá)的影響(n = 3)Fig.6 Effect of RBPEE treatment on the gene expression of apoptosis-related factors in cardiomyocytes (n = 3)注:與陰性對照組相比,** P < 0.01;與模型組相比,# P < 0.05,## P < 0.01。Note:Compared with negative control,** P < 0.01;Compared with model, # P < 0.05,## P < 0.01.

    3 討論與結(jié)論

    CH的特征主要有心肌細(xì)胞體積增大、蛋白質(zhì)合成增加、質(zhì)量變大以及心室壁增厚。ANP、BNP和β-MHC作為CH的分子標(biāo)記物,它們在CH進程中再表達(dá),由心肌細(xì)胞自主產(chǎn)生和釋放,積極參與補償機制,調(diào)節(jié)心臟功能[5]。在本研究中,心肌細(xì)胞表面積明顯增大,總蛋白含量顯著增加以及三種心肌細(xì)胞肥厚性標(biāo)志物的mRNA表達(dá)水平顯著提高,表明ISO誘導(dǎo)心肌細(xì)胞肥大模型成功。使用RBPEE處理后,細(xì)胞表面積和總蛋白含量相較于模型組有顯著縮減,三種心肌細(xì)胞肥大標(biāo)志物mRNA的表達(dá)水平也有顯著降低,表明RBPEE對ISO誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞肥大具有較好的預(yù)防效果。

    正常情況下,由于機體可以通過SOD等抗氧化酶類以及GSH、類胡蘿卜素以及維生素C等非酶類抗氧化物等物質(zhì)來及時清除組織氧化代謝產(chǎn)生的過量自由基,從而保證機體內(nèi)自由基實現(xiàn)動態(tài)平衡,維持機體正常運作[10]。氧化應(yīng)激的損傷途徑主要是通過活性氧(ROS)與細(xì)胞內(nèi)的脂質(zhì)、蛋白質(zhì)和核酸等生物大分子發(fā)生過氧化反應(yīng),引起細(xì)胞結(jié)構(gòu)損傷與代謝障礙,進而引發(fā)各種疾病。當(dāng)細(xì)胞膜受ROS攻擊時,膜上磷脂分子中的不飽和脂肪酸氧化生成MDA等脂質(zhì)過氧化物。因此機體細(xì)胞受氧化損傷的程度通過細(xì)胞內(nèi)SOD活力、GSH含量以及MDA含量的變化來反映[11,12]。NF-κB途徑被認(rèn)為是促炎信號傳導(dǎo)途徑,經(jīng)氧化應(yīng)激反應(yīng)激活的NF-κB可以從細(xì)胞質(zhì)轉(zhuǎn)運到細(xì)胞核,從而促進細(xì)胞促炎介質(zhì)的轉(zhuǎn)錄,如IL-6和TNF-α等[13]。因此檢測促炎癥細(xì)胞因子的表達(dá)量可以判斷心肌細(xì)胞受炎癥反應(yīng)的影響程度。我們利用ISO誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞肥大會使細(xì)胞中的SOD活力和GSH含量顯著降低,MDA含量顯著升高,心肌細(xì)胞中IL-6、TNF-α和IL-2的mRNA表達(dá)水平顯著提高,表明心肌細(xì)胞肥大伴隨著氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng)的發(fā)生。當(dāng)RBPEE處理后,SOD活力和GSH含量顯著增加、MDA含量顯著降低、三種炎癥反應(yīng)因子的基因表達(dá)水平顯著降低,表明RBPEE可以通過抑制氧化應(yīng)激和炎癥反應(yīng)來預(yù)防ISO對心肌細(xì)胞的損傷作用。

    細(xì)胞凋亡的主要途徑有外源性途徑(死亡受體途徑)、內(nèi)源性線粒體途徑和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激途徑[14]。在死亡受體途徑中,Caspase-8在被死亡誘導(dǎo)信號復(fù)合物(DISC)激活后,啟動信號級聯(lián)反應(yīng),導(dǎo)致末端效應(yīng)器Caspase-3或Caspase-7等的自動活化,最終誘發(fā)細(xì)胞凋亡信號[14]。在線粒體途徑中,當(dāng)線粒體受到外界刺激后,Bcl-2家族中的凋亡促進因子Bax調(diào)控線粒體外膜通透性,促使線粒體外膜透化,導(dǎo)致線粒體膜腔隙內(nèi)的細(xì)胞色素C與三磷酸脫氧腺苷(dATP)、凋亡蛋白酶激活因子(APAF1)形成凋亡多聚體復(fù)合物,釋放至胞漿,招募半胱氨酸蛋白酶9前體(pro-Caspase-9),引起Caspase-9活化,啟動信號級聯(lián)反應(yīng),激活下游的Caspase-3,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[14]。Bcl-2是Bcl-2家族中的抗凋亡成員,Bcl-2與Bax的比值是評價心肌細(xì)胞凋亡的一個有效指標(biāo)[11]。在本實驗中,通過測定各處理組中Bcl-2、Bax、Caspase-8、Caspase-9和Caspase-3的基因表達(dá)水平來判斷心肌細(xì)胞凋亡情況。實驗結(jié)果顯示ISO誘導(dǎo)心肌細(xì)胞肥大損傷伴隨著細(xì)胞凋亡進程。RBPEE預(yù)處理對Caspase-8、Caspase-9、Caspase-3和Bax的基因表達(dá)水平具有顯著的抑制作用,Bcl-2的基因表達(dá)水平和Bcl-2/Bax的比值較模型組顯著升高,表明RBPEE對ISO誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡具有預(yù)防作用。

    本實驗采用UPLC-QTOF MS對RBPEE的化學(xué)成分進行定性分析,初步鑒定了RBPEE中7種主要成分,包括1個糖類(葡萄糖酸)、2個核苷類(尿苷和鳥苷)、1個多胺類(N′,N′′-雙(對香豆酰)亞精胺)和3個黃酮二糖苷類化合物(槲皮素-3-O-(2′′-O-吡喃葡萄糖基)-吡喃葡萄糖苷、槲皮素-3-O-(2′′-O-吡喃葡萄糖基)-鼠李糖苷和山奈酚-3-O-(2′′-O-吡喃葡萄糖基)-吡喃葡萄糖苷)。研究表明尿苷和鳥苷都具有抗氧化、抗炎和抗凋亡作用[15-17];N1,N5-雙(對香豆酰)亞精胺具有良好的抗氧化性,可以提高細(xì)胞中總抗氧化能力,提高細(xì)胞中抗氧化酶SOD、CAT和GPx的酶活性,降低脂質(zhì)氧化水平[18];黃酮二糖苷類化合物的苷元如槲皮素、山奈酚具有抗氧化、抗炎、抗凋亡等藥理作用[19,20]。因此,核苷類、多胺類和黃酮類化合物可能是RBPEE發(fā)揮抗氧化、抗炎和抗凋亡作用的有效成分。

    綜上,RBPEE對ISO誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞肥大具有一定的預(yù)防作用,其作用機制可能與降低氧化應(yīng)激水平、抑制炎癥反應(yīng)和抗凋亡作用密切相關(guān)。

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