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    MC38結(jié)腸癌小鼠腫瘤浸潤(rùn)免疫細(xì)胞的動(dòng)態(tài)變化

    2021-11-02 07:51:38張波揚(yáng)陳煥鵬余文蘭劉忠華黃朝峰
    關(guān)鍵詞:荷瘤體積小鼠

    張波揚(yáng),陳煥鵬,余文蘭,劉忠華,黃朝峰

    (1.華南農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,廣州510642;2.中山大學(xué)人類(lèi)病毒研究所,廣州510080)

    異質(zhì)性是惡性腫瘤的重要特征。目前,研究者多從腫瘤本身探索腫瘤的發(fā)生發(fā)展機(jī)制,如腫瘤干細(xì)胞理論、腫瘤遺傳學(xué)等,因此腫瘤曾一致被認(rèn)為是細(xì)胞內(nèi)突變的體細(xì)胞遺傳?。?]。近年來(lái),腫瘤微環(huán)境免疫特征已經(jīng)被列入腫瘤十大特征之一[2]。探索腫瘤微環(huán)境與腫瘤發(fā)生的關(guān)系既能預(yù)測(cè)臨床預(yù)后,亦可評(píng)價(jià)放化療效果[3-4]。隨著單細(xì)胞測(cè)序和質(zhì)譜流式細(xì)胞術(shù)等新技術(shù)的應(yīng)用,多種新型免疫細(xì)胞亞群得到鑒定,腫瘤浸潤(rùn)免疫細(xì)胞成為了研究的熱點(diǎn)之一。

    腫瘤微環(huán)境主要是由免疫細(xì)胞、間充質(zhì)細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞和細(xì)胞外基質(zhì)等構(gòu)成復(fù)雜的細(xì)胞和分子調(diào)控網(wǎng)絡(luò),通過(guò)代謝重編程和低氧調(diào)控等方式促進(jìn)腫瘤的發(fā)生和發(fā)展[5]。腫瘤微環(huán)境中的免疫細(xì)胞主要分為淋巴系來(lái)源和骨髓來(lái)源,淋巴系來(lái)源的主要有CD8+T細(xì)胞(cytotoxic T lymphocytes,CTLs)、CD4+T細(xì)胞(regulatory Tcells,Ths)、自然殺傷(natural killer,NK)細(xì)胞和樹(shù)突狀細(xì)胞(dendriticcells,DC),主要發(fā)揮抗腫瘤作用。髓系來(lái)源的主要是腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞(tumor-associated macrophages,TAMs)和髓源抑制性細(xì)胞(myeloid-derived suppressor cells,MDSC),主要發(fā)揮免疫抑制作用。腫瘤與其微環(huán)境之間的相互作用非常復(fù)雜,免疫浸潤(rùn)成分在每個(gè)腫瘤階段都發(fā)生了變化,特定的細(xì)胞對(duì)患者的生存影響深遠(yuǎn)。其中,T細(xì)胞一直是研究者關(guān)注的一個(gè)熱點(diǎn)。多項(xiàng)研究表明,大多數(shù)T細(xì)胞密度隨腫瘤進(jìn)展而降低,T細(xì)胞的低密度浸潤(rùn)與不良預(yù)后相關(guān)[6-7],這也是患者生存最重要的預(yù)測(cè)標(biāo)準(zhǔn)[8-10]。過(guò)繼T細(xì)胞治療的新方法為患者帶來(lái)了新的希望,但是腫瘤浸潤(rùn)免疫細(xì)胞是高度不均勻的。除了淋巴系來(lái)源細(xì)胞,大部分髓系成分同樣具有代表性,然而分析Th1和CD8以外的免疫細(xì)胞如何影響臨床效果時(shí)常常得出矛盾的結(jié)果[6]。

    目前,腫瘤與宿主免疫系統(tǒng)之間的關(guān)系尚不明確。通過(guò)繪制動(dòng)態(tài)免疫圖譜的方式,為患者定制免疫特征圖譜,可以識(shí)別動(dòng)態(tài)生物標(biāo)志物,區(qū)分假性治療進(jìn)展,明確具有潛在反應(yīng)的患者,為個(gè)性化精準(zhǔn)治療提供動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè)方案[11]。本文采用流式細(xì)胞術(shù)對(duì)荷瘤小鼠不同時(shí)間節(jié)點(diǎn)的腫瘤浸潤(rùn)免疫細(xì)胞進(jìn)行分析,動(dòng)態(tài)觀察結(jié)腸癌發(fā)展的細(xì)胞學(xué)變化,繪制免疫微環(huán)境的時(shí)空變化景觀,以期為尋找預(yù)后生物標(biāo)志物和開(kāi)發(fā)新的治療方法提供思路。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    SPF級(jí)雌性C57BL/6J小鼠24只,體質(zhì)量為19~21 g,42~56日齡,來(lái)源于廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心[SCXK(粵)2018-0002],實(shí)驗(yàn)動(dòng)物質(zhì)量合格證號(hào)為44007200068714。動(dòng)物飼養(yǎng)于華南農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心屏障環(huán)境[SYXK(粵)2019-0136]。本研究涉及的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)方案符合3R原則,經(jīng)華南農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物福利與倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(批號(hào)2019D086)。

    1.2 儀器設(shè)備和試劑

    流式細(xì)胞儀(型號(hào):BD-LSRF fortessa)購(gòu)自美國(guó)BD公司,小鼠結(jié)腸癌MC38細(xì)胞株來(lái)源于美國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心。RPMI 1640(C11875500BT)購(gòu)自美國(guó)Gibco公司。大鼠抗小鼠pecific blue-CD45(48-0451-82)、pecy7-CD3(25-0031-82)、percpcy5.5-CD4(45-0042-82)、APC-CD8(17-0081-83)、PE-NK1.1(12-5941-82)、pecy7-CD11b(25-0112-82)、APC-Ly6G

    (17-9668-80)、PE-F4/80(12-4801-82)和pecy7-CD206(25-2061-82)單克隆抗體均購(gòu)自美國(guó)eBioscience公司,F(xiàn)ITC-Ly6C(553104)單克隆抗體購(gòu)自美國(guó)BD公司,percpcy5.5-CD11c(65-0114-U100)和APC-MHCⅡ(20-5321-U100)單克隆抗體購(gòu)自美國(guó)Tonbo Biosciences公司。PBS和D-PBS為實(shí)驗(yàn)室配制,膠原酶2(V900892)、膠原酶4(V900893)、DNA脫氧核糖核苷酸酶1(D4513)和透明質(zhì)酸酶(H3884)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司。

    1.3 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物處理

    調(diào)整小鼠結(jié)腸癌MC38細(xì)胞密度為5×105個(gè)/mL,均于C57BL/6J小鼠右側(cè)腹股溝處行一次性皮下注射(0.1 mL/只)。24只小鼠均可觀察到腫瘤生長(zhǎng),在肉眼可觀測(cè)腫瘤大?。ù蠹s荷瘤1周)后,每周觀察一次并使用游標(biāo)卡尺記錄皮下腫瘤的長(zhǎng)寬數(shù)值,腫瘤體積=長(zhǎng)×寬2/2。每周記錄一次小鼠體質(zhì)量。每周隨機(jī)選取6只小鼠,采用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)小鼠腫瘤內(nèi)免疫細(xì)胞浸潤(rùn)水平。

    1.4 腫瘤組織單細(xì)胞懸液的制備

    采用脫頸椎法處死小鼠后,剝離腫瘤組織,冰浴10 min,用1×PBS洗2次,剪碎腫瘤,加入膠原酶2(1 mg/mL)、膠原酶4(1 mg/mL)、透明質(zhì)酸酶(100 U/mL)和DNA脫氧核糖核苷酸酶1(100 U/mL),消化30 min。70μm篩網(wǎng)過(guò)濾腫瘤組織,1×PBS洗1次,終止消化。1×PBS洗1次,吸取10μL細(xì)胞懸液用1×PBS稀釋10倍,用于細(xì)胞計(jì)數(shù)。

    1.5 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)腫瘤內(nèi)免疫細(xì)胞浸潤(rùn)水平

    將單細(xì)胞懸液調(diào)整至細(xì)胞密度為1×107個(gè)/mL,每管吸取100μL細(xì)胞懸液準(zhǔn)備流式染色。檢測(cè)分3組,先用抗小鼠CD45抗體4℃避光孵育10 min,然后組1加入抗小鼠CD3、CD4、CD8、NK1.1抗體和相應(yīng)的同型對(duì)照抗體,組2加入抗小鼠CD11b、Ly6C、Ly6G抗體和相應(yīng)的同型對(duì)照抗體,組3直接加入抗小鼠CD11c、F4/80、CD206、MHCⅡ抗體和相應(yīng)的同型對(duì)照抗體。4℃避光孵育30 min后,1×PBS洗1次,用于流式細(xì)胞儀檢測(cè)。各免疫細(xì)胞分子標(biāo)志定義如下:CD3+T細(xì) 胞(CD45+CD3+),CD4+T細(xì) 胞(CD45+CD3+CD4+),CD8+T細(xì)胞(CD45+CD3+CD8+),NK細(xì)胞(CD45+CD3-NK1.1+),DC(CD45+CD11c+),總的巨噬細(xì)胞(macrophage,后用Mφ表示)(CD45+F4/80+),Ⅰ型Mφ(CD45+F4/80+MHCⅡ+),Ⅱ型Mφ(CD45+F4/80+CD206+),MDSC(CD45+CD11b+),單核MDSC(M-MDSC)(CD45+CD11b+Ly6C+),粒 細(xì) 胞MDSC(G-MDSC)(CD45+CD11b+Ly6G+)。流式數(shù)據(jù)使用Flowjo-V10軟件分析處理,單位體積浸潤(rùn)細(xì)胞數(shù)=各亞群細(xì)胞數(shù)/腫瘤體積。

    1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)使用GraphPad Prism 8.0.1軟件進(jìn)行分析。將荷瘤2~4周時(shí)的數(shù)據(jù)分別與荷瘤1周時(shí)的數(shù)據(jù)進(jìn)行比較,所有計(jì)數(shù)資料以±s表示;組間比較采用方差分析,兩組之間比較采用t檢驗(yàn),以P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 荷瘤小鼠腫瘤體積變化及腫瘤免疫細(xì)胞浸潤(rùn)變化

    相比荷瘤1周,荷瘤2周和3周時(shí)的小鼠腫瘤體積均明顯增大(P<0.05),荷瘤4周時(shí)顯著增大(P<0.000 1),提示腫瘤體積迅速增長(zhǎng),增長(zhǎng)速率不斷加快(圖1A)。記錄荷瘤4周的6只小鼠體質(zhì)量,結(jié)果顯示在荷瘤1~4周時(shí)未見(jiàn)顯著變化(圖1B)。

    從荷瘤1周時(shí)開(kāi)始,每周隨機(jī)選擇6只小鼠剖檢取材并進(jìn)行流式檢測(cè)。結(jié)果顯示,CD45+細(xì)胞比例在荷瘤2周時(shí)較1周時(shí)明顯降低(P<0.001),荷瘤3周時(shí)顯著降低(P<0.000 1),荷瘤4周時(shí)雖明顯降低(P<0.01),但略有回升趨勢(shì)(圖1C)。

    為排除腫瘤大小差異對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響,計(jì)算單位體積內(nèi)浸潤(rùn)細(xì)胞數(shù)(各亞群細(xì)胞數(shù)/mm3)以比較單位體積腫瘤內(nèi)的細(xì)胞學(xué)變化。結(jié)果顯示,單位體積腫瘤內(nèi)CD45+細(xì)胞浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2周時(shí)無(wú)明顯變化(P>0.05),荷瘤3周時(shí)降低(P<0.05),荷瘤4周時(shí)顯著降低(P<0.001)(圖1D)。CD45是白細(xì)胞共同抗原的標(biāo)志,在淋巴細(xì)胞的發(fā)育、功能調(diào)節(jié)及信號(hào)傳遞中具有重要意義,被廣泛用作浸潤(rùn)免疫細(xì)胞的整體標(biāo)志物。檢測(cè)發(fā)現(xiàn),荷瘤1~4周時(shí)CD45+細(xì)胞水平整體呈現(xiàn)驟降趨勢(shì),但在荷瘤3周后趨于穩(wěn)定(圖1D)。

    圖1腫瘤生長(zhǎng)曲線(xiàn)與免疫細(xì)胞浸潤(rùn)變化Figure 1 Variations in tumor growth curves and immune cell infiltration

    2.2 荷瘤小鼠腫瘤T細(xì)胞浸潤(rùn)變化

    流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,相比荷瘤1周時(shí),總CD3+T細(xì)胞比例在荷瘤2周下降(P<0.05),荷瘤3周時(shí)顯著降低(P<0.000 1),荷瘤4周時(shí)有明顯回升(P>0.05)(圖2A);CD4+T細(xì)胞比例在荷瘤2~4周時(shí)均顯著上升(P<0.000 1,圖2B);CD8+T細(xì)胞比例在荷瘤2周及3周時(shí)顯著下降(P<0.01),荷瘤4周時(shí)下降極顯著(P<0.000 1)(圖2C)。相比荷瘤1周時(shí),單位體積腫瘤內(nèi)總CD3+細(xì)胞浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2周時(shí)保持平穩(wěn)(P>0.05),荷瘤3周和4周時(shí)均顯著降低(P<0.01)(圖2D);單位體積腫瘤內(nèi)CD4+細(xì)胞浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2~4周時(shí)均顯著上升(P<0.01,圖2E);單位體積腫瘤內(nèi)CD8+細(xì)胞浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2周時(shí)無(wú)明顯變化(P>0.05),荷瘤3周及4周時(shí)均降低(P<0.05)(圖2F)。

    2.3 荷瘤小鼠腫瘤NK細(xì)胞與DC浸潤(rùn)變化

    流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,相比荷瘤1周時(shí),NK細(xì)胞比例在荷瘤2周及3周時(shí)無(wú)顯著變化(P>0.05),荷瘤4周時(shí)下降(P<0.05),在荷瘤后總體呈現(xiàn)下降趨勢(shì)(圖3A);DC比例在荷瘤2周及3周時(shí)無(wú)顯著變化(P>0.05),荷瘤4周時(shí)顯著上升(P<0.01,圖3B)。相比荷瘤1周時(shí),單位體積腫瘤內(nèi)NK細(xì)胞浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2周時(shí)無(wú)顯著變化(P>0.05),荷瘤3周及4周時(shí)顯著下降(P<0.000 1,圖3C);單位體積腫瘤內(nèi)DC浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤后2周及3周時(shí)無(wú)明顯變化(P>0.05),荷瘤4周時(shí)下降(P<0.05,圖3D)。

    圖2荷瘤小鼠腫瘤浸潤(rùn)T細(xì)胞變化Figure2 Variationsin theproportion of infiltrating T cellsin thetumor

    2.4 荷瘤小鼠腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞浸潤(rùn)變化

    流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,相比荷瘤1周時(shí),總的巨噬細(xì)胞(用Mφ表示)比例在荷瘤1周~4周后無(wú)顯著變化(P>0.05,圖4A);Ⅰ型Mφ比例在荷瘤1周到4周無(wú)顯著變化(P>0.05,圖4B);Ⅱ型Mφ比例在荷瘤2周及3周時(shí)無(wú)顯著變化(P>0.05),但荷瘤4周時(shí)下降(P<0.05)(圖4C)。相比荷瘤1周時(shí),單位體積腫瘤內(nèi)總Mφ浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2周時(shí)顯著降低(P<0.05),荷瘤3周及4周時(shí)降低極顯著(P<0.000 1)(圖4D);單位體積腫瘤內(nèi)Ⅰ型Mφ浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2周時(shí)無(wú)顯著變化(P>0.05),荷瘤3周及4周時(shí)下降(P<0.05)(圖4E);單位體積腫瘤內(nèi)Ⅱ型Mφ浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2周及3周時(shí)無(wú)顯著變化(P>0.05),荷瘤4周時(shí)下降(P<0.05)(圖4F)。

    2.5 荷瘤小鼠腫瘤髓源性抑制細(xì)胞浸潤(rùn)變化

    流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,相比荷瘤1周時(shí),CD11b+細(xì)胞比例在荷瘤后總體未呈現(xiàn)明顯變化(P>0.05,圖5A);M-MDSC比例在荷瘤2周和3周時(shí)無(wú)明顯變化(P>0.05),荷瘤4周時(shí)明顯上升(P<0.05),整體呈增長(zhǎng)趨勢(shì)(圖5B);G-MDSC比例在荷瘤后2周及4周均明顯下降(P<0.05),整體呈下降趨勢(shì)(圖5C)。相比荷瘤1周時(shí),單位體積腫瘤內(nèi)CD11b+及M-MDSC細(xì)胞浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤1周到4周時(shí)無(wú)顯著變化(P>0.05,圖5D和5E);單位體積腫瘤內(nèi)G-MDSC浸潤(rùn)數(shù)在荷瘤2周及3周時(shí)無(wú)明顯變化(P>0.05),荷瘤4周時(shí)明顯下降(P<0.05),總體呈下降趨勢(shì)(圖5F)。

    圖3荷瘤小鼠腫瘤浸潤(rùn)自然殺傷(NK)細(xì)胞和樹(shù)突狀細(xì)胞(DC)變化Figure 3 Variations of the infiltrating natural killer(NK)cells and dendritic cells(DCs)in the tumor

    圖4荷瘤小鼠腫瘤中浸潤(rùn)的巨噬細(xì)胞(Mφ)變化比較Figure4 Comparison of variationsin theproportion of infiltrating macrophages(Mφ)in thetumor

    圖5荷瘤小鼠腫瘤中浸潤(rùn)的髓源抑制性細(xì)胞(MDSC)變化比較Figure 5 Comparison of changes in the proportion of infiltrating myeloid-derived suppressor cells(MDSC)in the tumor

    3 討論

    大多數(shù)腫瘤都有一個(gè)分步進(jìn)展的過(guò)程,包括一系列組織學(xué)、形態(tài)學(xué)和遺傳學(xué)的變化,這些變化隨著時(shí)間的推移而改變或累積[12]。腫瘤微環(huán)境與腫瘤細(xì)胞之間復(fù)雜的相互作用貫穿了腫瘤發(fā)展全過(guò)程。目前,關(guān)于癌癥免疫的研究主要集中在外周血、脾內(nèi)或淋巴結(jié),而對(duì)腫瘤內(nèi)部免疫細(xì)胞浸潤(rùn)的復(fù)雜情形尚知之甚少。本研究檢測(cè)幾種具有代表性的免疫細(xì)胞浸潤(rùn)水平在結(jié)腸癌發(fā)展進(jìn)程中的瘤內(nèi)變化景觀,旨在為結(jié)腸癌免疫學(xué)研究提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    本實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)顯示,CD8+T細(xì)胞水平穩(wěn)步下降至不可逆的水平,個(gè)別樣本浸潤(rùn)細(xì)胞數(shù)極低,而CD4+T細(xì)胞比例在荷瘤早期就已迅速增長(zhǎng)并持續(xù)累積,單位體積中浸潤(rùn)細(xì)胞數(shù)增長(zhǎng)了近8倍。T細(xì)胞浸潤(rùn)水平在荷瘤1周及2周時(shí)有增長(zhǎng)趨勢(shì),隨后快速下降,這與CD4+T細(xì)胞的飛速增長(zhǎng)保持一致,腫瘤浸潤(rùn)的T細(xì)胞幾乎都是CD4+表型。已有研究表明,Th1細(xì)胞主要分泌白細(xì)胞介素(interleukin)-2、干擾素γ(interferon-γ,IFN-γ)等,通過(guò)干擾內(nèi)皮細(xì)胞增殖來(lái)抑制腫瘤生長(zhǎng)。Th2細(xì)胞主要分泌IL-4等,誘導(dǎo)TAMs產(chǎn)生M2表型,并通過(guò)分泌抗炎細(xì)胞因子激活體液免疫,促進(jìn)腫瘤生長(zhǎng)。而調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cells,Tregs)通過(guò)直接表達(dá)抑制性細(xì)胞因子,或間接消耗IL-2,抑制CD8+T細(xì)胞的激活與增殖[13]。而腫瘤內(nèi)的Th2細(xì)胞浸潤(rùn)水平往往遠(yuǎn)高于Th1細(xì)胞,即產(chǎn)生了Th1/Th2漂移的現(xiàn)象[14]。本研究結(jié)果支持CD4+T細(xì)胞在腫瘤進(jìn)展中產(chǎn)生Th1/Th2漂移的假設(shè),所產(chǎn)生的免疫抑制狀態(tài)嚴(yán)重影響了CD8+T細(xì)胞和NK細(xì)胞的增殖和活化效率,并發(fā)現(xiàn)M-MDSC和CD4+T細(xì)胞的高水平浸潤(rùn)與CD8+T細(xì)胞和NK細(xì)胞水平的下降具有一定的相關(guān)性。另外,總T細(xì)胞比例在顯著降低后出現(xiàn)反彈,這可能與NC細(xì)胞在荷瘤3周及4周的顯著上升有關(guān),這也體現(xiàn)了機(jī)體免疫在腫瘤發(fā)展整個(gè)過(guò)程中的頑強(qiáng)抗衡。然而盡管腫瘤體積飛速增長(zhǎng),單位體積浸潤(rùn)DC細(xì)胞數(shù)也沒(méi)有表現(xiàn)出急劇下跌的趨勢(shì)。曾有報(bào)告稱(chēng),腫瘤相關(guān)樹(shù)突狀細(xì)胞(tumor-associated dendritic cells,TADC)在抗原提呈、誘導(dǎo)同種異體反應(yīng)性和分泌IL-2等方面的能力均顯著下降,其表面分子以及聯(lián)合轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白和抗原加工相關(guān)轉(zhuǎn)運(yùn)體的表達(dá)也明顯降低,相反它們具有促進(jìn)MDSC累積和促使髓系細(xì)胞分化為F4/80+TAM的作用[15]。事實(shí)上,大多數(shù)實(shí)體瘤都能通過(guò)產(chǎn)生IL-6、VEGF、CSF-1等細(xì)胞因子來(lái)抑制DC的分化和成熟,這種未成熟的TADC同樣高表達(dá)CD11c,并在腫瘤內(nèi)迅速累積,通過(guò)激活精氨酸酶1(arginase1,ARG1)和誘導(dǎo)型一氧化氮合成酶(inducible nitric oxide synthetase,iNOS),進(jìn)一步加深免疫抑制作用。

    TAMs是占比最大的腫瘤浸潤(rùn)免疫細(xì)胞,也是腫瘤進(jìn)展、轉(zhuǎn)移和抗治療的關(guān)鍵驅(qū)動(dòng)因素。本研究發(fā)現(xiàn),總Mφ的細(xì)胞比例始終維持在較高水平。通常認(rèn)為,M1型巨噬細(xì)胞高表達(dá)腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、主要組織相容性復(fù)合體Ⅱ(major histocompatibility complex-Ⅱ,MHCⅡ)分子等,發(fā)揮抗腫瘤作用;M2型巨噬細(xì)胞高表達(dá)ARG1和CD206等,發(fā)揮促腫瘤作用;然而腫瘤微環(huán)境中的Ⅰ型巨噬細(xì)胞往往可轉(zhuǎn)變?yōu)棰蛐停?6]。本研究結(jié)果中巨噬細(xì)胞浸潤(rùn)數(shù)整體下降,但Ⅰ型Mφ細(xì)胞數(shù)的下滑速度顯著快于于Ⅱ型Mφ,未發(fā)現(xiàn)巨噬細(xì)胞的顯著Ⅱ型漂移現(xiàn)象。實(shí)際上,TAMs完全不同于普通巨噬細(xì)胞,其具有抑制T細(xì)胞功能發(fā)揮、促進(jìn)巨噬細(xì)胞和單核細(xì)胞分化以及促腫瘤血管生成的作用,從而形成了促腫瘤生長(zhǎng)的旁分泌循環(huán)。

    MDSC與免疫逃逸機(jī)制密切相關(guān),可通過(guò)分泌炎性因子促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的存活和腫瘤血管生成,但由于其異質(zhì)性和非成熟性,目前對(duì)該細(xì)胞群的定義一直存在爭(zhēng)議[17]。本研究以CD11b+細(xì)胞標(biāo)志腫瘤內(nèi)浸潤(rùn)的MDSC,發(fā)現(xiàn)MDSC整體水平始終居高不下。于是本研究進(jìn)一步分析GMDSC和M-MDSC的浸潤(rùn)水平,發(fā)現(xiàn)G-MDSC浸潤(rùn)水平穩(wěn)步下降,這可能是腫瘤內(nèi)的趨化因子CXC缺失引起。值得注意的是,M-MDSC的浸潤(rùn)水平穩(wěn)定上升,且占比遠(yuǎn)高于G-MDSC。由于G-MDSC和M-MDSC抑制T細(xì)胞生長(zhǎng)增殖的途徑是相互獨(dú)立的,筆者推測(cè)浸潤(rùn)的單核細(xì)胞和粒細(xì)胞主要是Ly6C+表型,M-MDSC可能是促瘤免疫和免疫逃逸的主角。

    綜上所述,筆者推測(cè),癌細(xì)胞一旦接種于小鼠,機(jī)體迅速做出抗腫瘤和促腫瘤的免疫應(yīng)答;腫瘤組織內(nèi)免疫細(xì)胞浸潤(rùn)水平整體下降,CD8+T細(xì)胞和NK細(xì)胞水平的下降不斷削弱機(jī)體抗腫瘤免疫效應(yīng)。TADC和TAMs在促腫瘤免疫應(yīng)答中發(fā)揮了重要作用,CD4+T細(xì)胞和M-MDSC可能是促腫瘤效應(yīng)的關(guān)鍵點(diǎn),促腫瘤免疫逐漸占據(jù)主導(dǎo)地位,從而促進(jìn)結(jié)腸癌的發(fā)展。

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