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    BCG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞脂肪酸氧化對(duì)細(xì)胞自噬和促炎因子表達(dá)的調(diào)控作用

    2021-09-27 09:03:38徐金瑞王玉炯
    畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào) 2021年9期
    關(guān)鍵詞:溶酶體小體預(yù)處理

    駱 佳,徐金瑞,李 武,王玉炯*

    (1.西部特色資源保護(hù)與利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,銀川 750021;2.寧夏大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,銀川 750021)

    結(jié)核病(tuberculosis, TB)是由結(jié)核分枝桿菌(Mycobacteriumtuberculosis,Mtb)感染引起的慢性呼吸道傳染病,所造成的死亡是全球十大致死原因之一。巨噬細(xì)胞作為Mtb的主要宿主細(xì)胞和免疫細(xì)胞,通過調(diào)節(jié)自身死亡方式(凋亡、壞死、焦亡和自噬)決定Mtb感染的最終轉(zhuǎn)歸[1]。細(xì)胞凋亡促進(jìn)胞內(nèi)菌的清除,細(xì)胞壞死則加速胞內(nèi)滯留菌的擴(kuò)散,而自噬決定著胞內(nèi)菌的命運(yùn)(清除或滯留)[2]。

    Mtb感染導(dǎo)致巨噬細(xì)胞代謝進(jìn)程變化,致使脂滴和細(xì)胞器脂質(zhì)聚集在胞質(zhì)中而形成泡沫巨噬細(xì)胞(foamy macrophage)[3]。三酰甘油、膽固醇和脂肪酸是泡沫巨噬細(xì)胞中的主要脂質(zhì)成分,Mtb通過利用這些脂質(zhì)為其自身提供能源物質(zhì)從而維持在巨噬細(xì)胞中的復(fù)制和存活[4-5]。Mtb感染促進(jìn)肺泡巨噬細(xì)胞脂肪酸氧化(fatty acid oxidation, FAO),干預(yù)巨噬細(xì)胞脂肪酸氧化,抑制Mtb在巨噬細(xì)胞中繁殖[6]。此外,炎性介質(zhì)的產(chǎn)生也與脂肪酸代謝有著密切的聯(lián)系[7]。然而,Mtb感染過程中,F(xiàn)AO對(duì)巨噬細(xì)胞自噬以及促炎因子表達(dá)的調(diào)控作用還尚不明確。本研究采用牛分枝桿菌疫苗株卡介苗(bacillus Calmette-guérin, BCG)感染小鼠巨噬細(xì)胞RAW264.7,用乙莫克舍[8](etomoxir, Eto)抑制FAO,通過檢測(cè)自噬相關(guān)蛋白表達(dá)、自噬小體聚集、自噬流以及促炎因子IL-1β、IL-6和TNF-α的表達(dá)情況,揭示BCG感染巨噬細(xì)胞過程中,F(xiàn)AO途徑對(duì)巨噬細(xì)胞自噬和炎性反應(yīng)的調(diào)控作用,為基于代謝途徑的結(jié)核病免疫機(jī)制研究提供新的思路。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    小鼠巨噬細(xì)胞RAW264.7購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院細(xì)胞庫(kù);胎牛血清、DMEM-High Glucose購(gòu)自Gibco公司;細(xì)胞總RNA提取試劑盒購(gòu)自O(shè)MEGA公司;TransSciptAll-in One SuperMix for qPCR、PerfectStartGreen q-PCR SuperMix試劑盒購(gòu)自全式金公司;兔抗LC3、Beclin1、CPT-1A和GAPDH抗體購(gòu)自Cell Signal Technology(CST);兔抗Rab7抗體和游離脂肪酸定量試劑盒(free fatty acid quantification assay kit)購(gòu)自Abcam公司;熒光素偶聯(lián)山羊抗兔IgG和BODIPY-488購(gòu)自Invitrogen 公司;乙莫克舍(Etomoxir, Eto)購(gòu)自MedChemExpress公司;mRFP-GFP-LC3熒光雙標(biāo)腺病毒購(gòu)自漢恒生物科技有限公司;小鼠IL-1β、IL-6 和TNF-α ELISA試劑盒購(gòu)自博士德生物工程有限公司;相關(guān)引物由生工生物工程有限公司合成。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng)

    用含10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基,于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)RAW264.7細(xì)胞。培養(yǎng)細(xì)胞至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,用于后繼試驗(yàn)。

    1.3 BCG培養(yǎng)

    牛結(jié)核分枝桿菌疫苗株BCG培養(yǎng)于添加Tween-80(0.5%)和增菌劑(OADC)的Middlebrook 7H9培養(yǎng)基中,37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)至菌液OD600 nm=1.5后進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

    1.4 試驗(yàn)分組設(shè)計(jì)

    試驗(yàn)共分3組,分別為對(duì)照組(Ctrl)、BCG感染組和Eto與BCG共處理組(Eto+BCG)。Ctrl組為不經(jīng)任何處理正常狀態(tài)下的RAW264.7細(xì)胞;BCG組用感染復(fù)數(shù)為(multiplicity of infection, MOI)10的BCG培養(yǎng)物感染細(xì)胞6 h;Eto+BCG組用Eto預(yù)處理RAW264.7細(xì)胞2 h后,用MOI=10的BCG培養(yǎng)物感染細(xì)胞6 h。

    1.5 Western blot檢測(cè)

    Eto預(yù)處理RAW264.7細(xì)胞2 h后,用MOI=10的BCG培養(yǎng)物感染細(xì)胞6 h,提取細(xì)胞總蛋白,BCA定量后進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳。PVDF膜轉(zhuǎn)印后,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,過夜孵育 CPT-1A(1∶1 000)、Beclin1(1∶1 000)、LC3-II(1∶1 000)以及Rab7(1∶1 000)抗體,次日TBST(Tween-20含量0.3%)洗膜6次(5 min·次-1),二抗室溫孵育1 h,TBST 洗膜6次后,化學(xué)發(fā)光檢測(cè)蛋白表達(dá)水平。

    1.6 游離脂肪酸定量試驗(yàn)

    用MOI=10的BCG懸液感染RAW264.7細(xì)胞6 h后收集細(xì)胞,用含1% Triton X-100的氯仿充分裂解細(xì)胞,13 000×g離心10 min,去除不可溶物質(zhì)并收集有機(jī)相。將收集的有機(jī)相置于50 ℃烘箱中至氯仿去除后,真空干燥30 min,從而提取細(xì)胞中游離脂肪酸(free fatty acid, FFA)。所提取的FFA根據(jù)說明書進(jìn)行定量并與細(xì)胞蛋白含量進(jìn)行歸一化處理。

    1.7 BODIPY檢測(cè)脂滴

    以3×105cell·mL-1細(xì)胞量接種于放有蓋玻片的12孔板中,MOI=10的BCG懸液感染RAW264.7細(xì)胞6 h后,PBS漂洗細(xì)胞3次(5 min·次-1),4%多聚甲醛固定20 min,BODIPY 染色15 min, PBS漂洗3次(5 min·次-1),用含DAPI封片劑封片。

    1.8 免疫熒光檢測(cè)自噬小體

    以3×105cell·mL-1的細(xì)胞量接種于放有蓋玻片的12孔板中,Eto預(yù)處理RAW264.7細(xì)胞2 h后,用MOI=10的BCG培養(yǎng)物感染細(xì)胞6 h,PBS漂洗感染后的細(xì)胞3次(5 min·次-1),4%多聚甲醛固定20 min,Triton X-100室溫通透20 min,5% 山羊血清室溫封閉30 min,LC3抗體(1∶200)37 ℃孵育2 h,熒光二抗(1∶1 000)37 ℃孵育30 min。用含DAPI的封片劑封片,激光共聚焦顯微鏡觀察細(xì)胞中自噬小體聚集情況。

    1.9 自噬流檢測(cè)

    將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的RAW264.7細(xì)胞以2×105cell·mL-1細(xì)胞量接種于放置有蓋玻片的12孔板中,過夜培養(yǎng)。mRFP-GFP-LC3熒光雙標(biāo)腺病毒以感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection,MOI)50感染6 h,更換新鮮完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24 h。Eto預(yù)處理2 h,BCG(MOI=10)感染6 h,PBS漂洗3次(5 min·次-1),4%多聚甲醛固定20 min,抗熒光淬滅封片劑封片,激光共聚焦顯微鏡觀察細(xì)胞中mRFP-LC3和mRFP-GFP-LC3點(diǎn)狀聚集。

    1.10 qRT-PCR檢測(cè)IL-1β、IL-6、TNF-α mRNA表達(dá)

    Eto預(yù)處理RAW264.7細(xì)胞2 h后,用MOI=10的BCG培養(yǎng)物感染細(xì)胞6 h,用細(xì)胞總RNA提取試劑盒提取細(xì)胞總RNA,并根據(jù)反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將提取到的RNA反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以cDNA作為模板進(jìn)行qRT-PCR操作。qRT-PCR試驗(yàn)數(shù)據(jù)用2-ΔΔCt法分析各試驗(yàn)組中IL-1β、IL-6、TNF-αmRNA的相對(duì)表達(dá)水平。鼠IL-1β、IL-6、TNF-α及GAPDH上下游引物見表1。

    表1 qRT-PCR引物序列

    1.11 ELISA檢測(cè)IL-1β、IL-6和TNF-α含量

    Eto預(yù)處理RAW264.7細(xì)胞2 h后,用MOI=10的BCG培養(yǎng)物感染細(xì)胞6 h,收集細(xì)胞培養(yǎng)上清,1 000 r·min-1離心20 min,用小鼠IL-1β、IL-6和TNF-α ELISA試劑盒檢測(cè)上清中IL-1β、IL-6和TNF-α含量。

    1.12 胞內(nèi)菌存留試驗(yàn)

    Eto預(yù)處理RAW264.7細(xì)胞2 h后,用MOI=10的BCG培養(yǎng)物感染細(xì)胞2 h,PBS漂洗細(xì)胞3次清除胞外菌,繼續(xù)培養(yǎng)細(xì)胞6 h,0.5% Triton X-100 裂解細(xì)胞;待巨噬細(xì)胞全部裂解后,將裂解產(chǎn)物10倍稀釋并均勻涂布在含有OADC的Middlebrook7H10 瓊脂培養(yǎng)基上,培養(yǎng)3周后,進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。

    1.13 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    所有試驗(yàn)數(shù)據(jù)均經(jīng)過3次獨(dú)立試驗(yàn)的驗(yàn)證,試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用GraphPad Prism 9.0中T-test或One Way ANOVA進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,數(shù)據(jù)用平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤(x±sx)表示。

    2 結(jié) 果

    2.1 BCG感染促進(jìn)RAW264.7細(xì)胞脂肪酸氧化

    BODIPY標(biāo)記脂質(zhì)檢測(cè)BCG感染前后細(xì)胞中脂滴含量,結(jié)果顯示:BCG感染引起RAW264.7細(xì)胞中脂滴積累(圖1A、B),而游離脂肪酸含量顯著下調(diào)(P<0.05)(圖1C);且BCG感染促進(jìn)了肉毒堿棕櫚?;D(zhuǎn)移酶1A(carnitine palmitoyltransferase 1A, CPT-1A)表達(dá)(圖1D),并在BCG感染4 h 時(shí)其表達(dá)量達(dá)到最高。

    A、B.BODIPY標(biāo)記脂質(zhì),激光共聚焦觀察BCG感染前后RAW264.7細(xì)胞脂滴聚集情況,BODIPY為綠色,DAPI為藍(lán)色;C.吸光光度法檢測(cè)BCG感染前后,RAW264.7細(xì)胞細(xì)胞中游離脂肪酸含量; D.Western blot檢測(cè)BCG感染不同時(shí)間點(diǎn)CPT-1A表達(dá)水平。*.P<0.05,**.P<0.01

    2.2 抑制BCG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞FAO抑制RAW264.7細(xì)胞中BCG存留量

    CFU試驗(yàn)檢測(cè)Eto預(yù)處理后,BCG感染的RAW264.7細(xì)胞中BCG存活量。結(jié)果顯示:Eto預(yù)處理后的細(xì)胞中BCG存留量較BCG組顯著減少(圖2)(P<0.01)。說明抑制BCG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞FAO抑制RAW264.7細(xì)胞中BCG存活。

    **.P<0.01

    2.3 BCG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞FAO參與調(diào)控細(xì)胞自噬

    Western blot檢測(cè)自噬相關(guān)蛋白Beclin1和LC3-Ⅱ以及溶酶體蛋白R(shí)ab7表達(dá)變化。結(jié)果顯示,BCG感染促進(jìn)了Beclin1、LC3-Ⅱ和 Rab7的表達(dá);Eto預(yù)處理進(jìn)一步上調(diào)Beclin1、LC3-Ⅱ和Rab7的表達(dá),且差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖3A~D)。激光共聚焦結(jié)果也顯示,與BCG組相比,Eto預(yù)處理后的細(xì)胞中聚集大量自噬小體(圖4A、B)。

    Eto預(yù)處理2 h,BCG感染RAW264.7細(xì)胞6 h后,Western blot檢測(cè)Beclin1、LC3-Ⅱ和Rab7表達(dá)水平。*.P<0.05,**.P<0.01

    A.激光共聚焦觀察細(xì)胞中自噬小體的聚集情況,LC3-Ⅱ?yàn)榫G色,DAPI為藍(lán)色; B.每個(gè)細(xì)胞中自噬小體含量定量結(jié)果。**.P<0.01

    2.4 抑制BCG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞FAO促進(jìn)自噬流

    激光共聚焦檢測(cè)Eto預(yù)處理后,BCG感染的RAW264.7細(xì)胞中自噬體(mRFP-GFP-LC3)和自噬溶酶體(mRFP-LC3)聚集情況。結(jié)果顯示:BCG感染的RAW264.7細(xì)胞中出現(xiàn)自噬體mRFP-GFP-LC3和自噬溶酶體mRFP-LC3點(diǎn)狀聚集,且經(jīng)Eto處理后,RAW264.7細(xì)胞中自噬體和自噬溶酶體含量均出現(xiàn)顯著上調(diào)(P<0.05,圖5)。說明抑制BCG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞FAO途徑促進(jìn)了自噬流發(fā)生。

    *.P<0.05,**.P<0.01

    2.5 抑制BCG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞FAO下調(diào)IL-1β、IL-6和TNF-α表達(dá)

    qRT-PCR檢測(cè)促炎因子IL-1β、IL-6和TNF-αmRNA表達(dá)情況。結(jié)果顯示,Eto預(yù)處理抑制BCG感染引起的IL-1β、IL-6和TNF-αmRNA表達(dá)(圖6A~C),且差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。為了進(jìn)一步探究BCG誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞FAO對(duì)促炎因子IL-1β、IL-6和TNF-α表達(dá)的影響,收集細(xì)胞培養(yǎng)上清,用ELISA方法檢測(cè)上清中IL-1β、IL-6和TNF-α含量,試驗(yàn)結(jié)果與qRT-PCR結(jié)果一致,即Eto預(yù)處理后,上清中IL-1β、IL-6和TNF-α含量較BCG感染組顯著下調(diào)(P<0.05,圖6D~F)。

    A、B、C.Eto預(yù)處理2 h,BCG感染RAW264.7細(xì)胞6 h后,qRT-PCR檢測(cè)促炎因子IL-1β、IL-6和TNF-α mRNA表達(dá)水平;D、E、F.Eto預(yù)處理2 h,BCG感染RAW264.7細(xì)胞6 h后,收集細(xì)胞培養(yǎng)上清,ELISA 檢測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)上清中促炎因子IL-1β、IL-6和TNF-α含量。*.P<0.05,**.P<0.01

    3 討 論

    早期研究顯示,Mtb利用宿主細(xì)胞脂肪酸作為碳源維持其在胞內(nèi)生長(zhǎng)繁殖[9-12]。Podinovskaia等[13]應(yīng)用熒光脂肪酸轉(zhuǎn)運(yùn)試驗(yàn)觀察到細(xì)胞中Mtb內(nèi)存在宿主細(xì)胞來源的脂肪酸,說明Mtb攝取并利用了宿主脂肪酸[14]。在巨噬細(xì)胞、小鼠以及人肺組織Mtb感染模型中,參與脂肪酸利用相關(guān)基因表達(dá)上調(diào)[15-17]。本研究用BODIPY染色標(biāo)記脂滴,發(fā)現(xiàn)BCG感染的RAW264.7細(xì)胞中出現(xiàn)大量脂滴聚集,而細(xì)胞中游離脂肪酸含量減少,且參與FAO的關(guān)鍵酶——CPT-1A表達(dá)上調(diào)。此結(jié)果說明:BCG感染促進(jìn)了巨噬細(xì)胞FAO。

    Mtb感染導(dǎo)致的巨噬細(xì)胞代謝變化將影響吞噬體與溶酶體的融合[18-19],從而為Mtb在宿主細(xì)胞中長(zhǎng)期滯留提供了良好的條件。由此可見,改變Mtb與巨噬細(xì)胞代謝間的平衡機(jī)制可抑制胞內(nèi)病原菌存活[20]。肉芽腫是結(jié)核病的主要病理特征,感染了Mtb的巨噬細(xì)胞在其胞漿區(qū)域積聚脂質(zhì),并分化形成泡沫巨噬細(xì)胞[21-22],構(gòu)成了肉芽腫主要成分之一。泡沫巨噬細(xì)胞在Mtb感染擴(kuò)散中發(fā)揮著重要作用。因此,調(diào)控巨噬細(xì)胞脂代謝進(jìn)程可以控制結(jié)核病的發(fā)生與發(fā)展。目前,基于宿主細(xì)胞代謝的宿主導(dǎo)向治療(host-directed therapy, HDT)方法在人結(jié)核病的治療中,尤其在感染多重耐藥結(jié)核分枝桿菌患者的治療中取得了顯著效果[23-24]。自噬作為一種溶酶體清除機(jī)制,在調(diào)控巨噬細(xì)胞對(duì)Mtb的清除中發(fā)揮著重要的作用[25]。多種因素調(diào)控細(xì)胞自噬,代謝途徑改變所導(dǎo)致的能量變化則是其中因素之一[26-28]。FAO作為細(xì)胞供能方式之一,其變化也將影響巨噬細(xì)胞自噬清除作用。CPT-1A通過介導(dǎo)長(zhǎng)鏈脂肪酸進(jìn)入線粒體,進(jìn)而進(jìn)行FAO。Eto通過與CPT-1A結(jié)合,進(jìn)而抑制FAO的進(jìn)行[29]。為探究BCG誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞FAO對(duì)細(xì)胞自噬和促炎因子的表達(dá)調(diào)控作用,本研究用Eto抑制FAO并檢測(cè)BCG感染后自噬相關(guān)蛋白Beclin1和LC3-II以及炎性因子IL-1β、IL-6和TNF-α的表達(dá)情況,結(jié)果顯示,Beclin1和LC3-II的表達(dá)均顯著上調(diào),且細(xì)胞中出現(xiàn)大量自噬小體;而IL-1β、IL-6和TNF-α的表達(dá)卻受到抑制。Rab7是自噬體與溶酶體融合進(jìn)程中重要調(diào)節(jié)分子之一[30],參與調(diào)控自噬溶酶體的成熟過程,敲除Rab7將導(dǎo)致自噬小體聚集[31]。結(jié)果顯示,Eto預(yù)處理不僅上調(diào)了自噬相關(guān)蛋白的表達(dá),同時(shí)促進(jìn)了Rab7的表達(dá),說明抑制FAO可以促進(jìn)自噬小體和溶酶體融合,并且自噬流檢測(cè)結(jié)果也進(jìn)一步顯示干預(yù)FAO后,細(xì)胞中自噬溶酶體數(shù)量增多,胞內(nèi)存留BCG也顯著下調(diào)。由此可見,BCG誘導(dǎo)FAO參與調(diào)控巨噬細(xì)胞自噬,抑制FAO可以激活RAW264.7自噬途徑清除細(xì)胞中滯留的病原菌,并且可以防止因?yàn)檫^度炎性反應(yīng)所致的炎性損傷。然而,F(xiàn)AO調(diào)控巨噬細(xì)胞自噬的具體機(jī)制將是本課題接下來要探究的問題。

    4 結(jié) 論

    BCG感染促進(jìn)RAW264.7細(xì)胞FAO,且此代謝途徑參與調(diào)控RAW264.7細(xì)胞自噬:抑制BCG誘導(dǎo)的RAW264.7細(xì)胞FAO促進(jìn)了細(xì)胞自噬從而抑制胞內(nèi)菌的存活,且抑制了促炎因子IL-1β、IL-6和TNF-α的表達(dá)和分泌。說明FAO途徑在巨噬細(xì)胞抗結(jié)核分枝桿菌感染中發(fā)揮著雙重調(diào)控作用。

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