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    不同鋁耐性小麥內(nèi)源磷再利用差異分析

    2021-09-26 02:18:10張曉龍陶燁朱曉芳馬建鋒沈仁芳
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2021年17期
    關(guān)鍵詞:細(xì)胞壁小麥

    張曉龍 陶燁 朱曉芳 馬建鋒 沈仁芳

    摘要:植物體內(nèi)磷的分配和再利用是植物對磷元素利用的具體表現(xiàn),磷和鋁是酸性土壤上限制作物生長的兩大主要因子,因此,對不同鋁耐性品種在磷再利用機(jī)制方面的研究具有重要意義。以小麥耐鋁品種Atlas 66和鋁敏感品種Scout 66為研究材料,研究有無磷供應(yīng)下品種間磷含量與細(xì)胞壁及其組分磷含量以及果膠甲酯酶(PME)活性的差異。結(jié)果表明,與Scout 66相比,Atlas 66在缺磷條件下鮮質(zhì)量和干質(zhì)量相對較低,全磷和可溶性磷含量也相對較低,但品種間差異不顯著。另一方面,在缺磷條件下,小麥耐鋁品種Atlas 66磷相關(guān)基因表達(dá)量大多顯著大于鋁敏感品種Scout 66,說明在缺磷條件下,Atlas 66對磷的需求明顯要高于Scout 66,以此來滿足自身的生長發(fā)育需求。缺磷條件下,Atlas 66的根部細(xì)胞壁磷含量以及地上部果膠磷含量大多顯著高于Scout 66,無論有無磷供應(yīng)下Atlas 66 與Scout 66的PME活性并沒有顯著差異,說明相比于Scout 66,Atlas 66在缺磷時細(xì)胞壁釋放的可供植物再利用的磷顯著減少,因而,Atlas 66對磷的需求提高,進(jìn)一步驗證了表達(dá)量的結(jié)果。綜上所述,耐鋁型小麥品種Atlas 66在整體磷含量上略低于鋁敏感型品種Scout 66,更多的磷固定在Atlas 66細(xì)胞壁中不能釋放,這可能也是其耐鋁機(jī)制之一。

    關(guān)鍵詞:小麥;耐鋁性;缺磷;細(xì)胞壁;磷再利用

    中圖分類號:Q945.12;S512.101? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

    文章編號:1002-1302(2021)17-0080-07

    收稿日期:2021-02-04

    基金項目:江蘇省杰出青年基金(編號:BK20190050);中國科學(xué)院青年創(chuàng)新促進(jìn)會(編號:2015250);國家重點(diǎn)基礎(chǔ)研究發(fā)展計劃(973)項目(編號:2014CB441000);中國科學(xué)院戰(zhàn)略性先導(dǎo)科技專項(編號:XDB15030302、XDB15030202)。

    作者簡介:張曉龍(1990—),男,安徽阜陽人,博士研究生,主要從事植物逆境生理的研究。E-mail:974588379@qq.com。

    通信作者:朱曉芳,博士,副研究員,主要從事植物逆境生理的研究。E-mail:xiaofangzhu@issas.ac.cn。

    磷是生物體內(nèi)不可缺少的大量營養(yǎng)元素,同時也是農(nóng)業(yè)生態(tài)系統(tǒng)中作物生長的主要限制因子[1]。植物吸收和代謝的磷主要是磷酸鹽形式的無機(jī)磷,盡管土壤中的磷含量豐富,但是由于磷在土壤中的特殊形式,導(dǎo)致可供植物吸收利用的量少之又少[2]。微生物的轉(zhuǎn)化固定、酸性土壤中磷鋁等的結(jié)合、堿性土壤中磷鈣等的結(jié)合以及徑流等過程限制著植物對磷的吸收[3-6]。因此,研究植物在缺磷、低磷條件下的機(jī)制已經(jīng)成為植物育種的主要目標(biāo)之一。

    在長期應(yīng)對磷不足的過程中,植物本身進(jìn)化出一系列的應(yīng)對機(jī)制。對于植物而言,可通過自身形態(tài)的改變[7]、有機(jī)酸的分泌[8]、微生物共生[9]等方式促使根際范圍有效磷含量的提高。植物自身內(nèi)部通過磷轉(zhuǎn)運(yùn)基因的表達(dá)[10]、糖類代謝[11]、磷的再分配[12]等機(jī)制將吸收的磷再利用進(jìn)而緩解磷的缺乏以滿足自身的生長發(fā)育。近年來,對于植物體內(nèi)磷再利用的研究又有了新的認(rèn)識,即細(xì)胞壁中吸附的磷在植物磷不足時的再利用機(jī)制。果膠是細(xì)胞壁的主要成分,其可在植物磷缺乏時將細(xì)胞壁中吸附的磷酸鹽中的磷置換出來,進(jìn)而供植物再利用,而體外的磷解析試驗也證實了這一點(diǎn)[13-15]。因此,由于磷缺乏導(dǎo)致的細(xì)胞壁組分含量的改變可以影響植物內(nèi)源磷的再利用。

    小麥?zhǔn)俏覈匾募Z食作物,在南方酸性土壤上也多有種植,與其他作物一樣,鋁毒和磷缺乏也是限制酸性土壤小麥生產(chǎn)的2個主要因素[16]。已有的研究多是從單一方向?qū)α缀弯X進(jìn)行比較,結(jié)果一致認(rèn)為,耐鋁則磷高效,而磷高效則耐鋁[17-18]。而不同鋁耐性品種作物在內(nèi)源磷再利用機(jī)制方面是否存在差異還鮮有報道。因此,本研究以小麥耐鋁品種Atlas 66和鋁敏感品種Scout 66為研究材料,研究缺磷條件下磷再利用能力的差異,從而豐富不同鋁耐性小麥品種內(nèi)部的磷再利用機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 供試材料和培養(yǎng)條件

    本試驗于2019年12月至2020年9月于江蘇省南京市中國科學(xué)院南京土壤研究所溫室內(nèi)進(jìn)行。選取Atlas 66和Scout 66 2個小麥品種為試驗材料。

    將種子在10%的H2O2中浸泡消毒30 min,用蒸餾水沖洗干凈后,置于蒸餾水中浸泡2 h。然后將種子置于濕潤的濾紙上,26 ℃避光催芽。1 d后,將種子移至浮于0.5 mol/L的CaCl2(pH值為6.0)溶液的浮板上,26 ℃避光培養(yǎng)3 d,培養(yǎng)過程中每天更換CaCl2溶液。避光培養(yǎng)后,選取長勢一致的幼苗移至改良后的1/4 霍格蘭(Hoagland)營養(yǎng)液中繼續(xù)培養(yǎng),全營養(yǎng)液配方如下:2 mmol/L Ca(NO3)2·4H2O、650 μmol/L MgSO4·7H2O、250 μmol/L KH2PO4、750 μmol/L K2SO4、40 μmol/L Fe-EDTA、10 μmol/L MnSO4·H2O、0.1 μmol/L CuSO4·5H2O、1 μmol/L ZnSO4·7H2O、1 μmol/L H3BO3、0.05 μmol/L (NH4)6Mo7O24·4H2O、100 μmol/L KCl,pH值為6.0。培養(yǎng)和處理試驗均在光照培養(yǎng)間培養(yǎng),白天14 h/28 ℃和夜晚10 h/23 ℃,光照強(qiáng)度為400 μmol/(m2·s),相對濕度為60%,每天更換1次營養(yǎng)液。

    正常培養(yǎng)1周后,選取長勢一致的幼苗置于1.25 L的培養(yǎng)罐中進(jìn)行處理,處理1周后收樣。試驗設(shè)品種和磷供應(yīng)水平2個因素,小麥為耐鋁品種Atlas 66和鋁敏感品種Scout 66 2個品種,磷供應(yīng)水平設(shè)正常培養(yǎng)(+P)和缺P處理(-P)2個水平,共4個處理,分別標(biāo)記為A+P、A-P、S+P、S-P。

    1.2 可溶性磷的提取與含量測定

    將處理后的小麥樣品用蒸餾水沖洗干凈,用吸水紙吸干水分后分別稱取根和地上部鮮質(zhì)量。將樣品用液氮充分研磨,根和地上部樣品分別依次加入400 μL 5 mol/L H2SO4、4 mL去離子水和800 μL 5 mol/L H2SO4、8 mL的去離子水,充分混勻后轉(zhuǎn)入10 mL離心管。室溫靜置4 h后,4 000 r/min離心 5 min。吸取100 μL上清液或100 μL磷標(biāo)準(zhǔn)液(0、5、10、15、20、25、30 mg/L),100 μL鉬銻抗試劑(含15%維生素C),800 μL去離子水于1.5 mL離心管中。混勻后于37 ℃靜置顯色30 min,在880 nm處測定吸光度。

    1.3 全磷的提取與含量測定

    將處理后的小麥樣品用蒸餾水沖洗干凈,吸水紙吸干水分后分別稱取根和地上部鮮質(zhì)量。將稱好的樣品塞入信封并于烘箱中105 ℃殺青30 min,然后70 ℃烘至恒質(zhì)量。將烘干的樣品粉碎,稱取0.5 g放入20 mL消煮管中,而后向消煮管中加入 5 mL 濃H2SO4,于消煮爐上180 ℃消煮至無色。消煮結(jié)束后,置于室溫條件下,待溫度降至室溫后定容。吸取100 μL上清液或100 μL磷標(biāo)準(zhǔn)液(0、5、10、15、20、25、30 mg/L),100 μL鉬銻抗試劑(含15%抗壞血酸),800 μL去離子水于1.5 mL離心管中,混勻后于37 ℃靜置顯色30 min,在880 nm下測定吸光度。

    1.4 RNA的提取及相關(guān)基因表達(dá)量的測定

    試驗處理完成后,將小麥根系剪下沖洗干凈,迅速用吸水紙吸干水分并放入1.5 mL滅菌后的離心管中,于液氮中冷凍,每個處理3次重復(fù)。將樣品用液氮充分研磨,加入 300 μL裂解液,充分混勻后65 ℃裂解2 min,15 000 r/min、4 ℃條件下離心 3 min。取 200 μL 上清液,用 TGuide 核酸自動提取儀(TIANGEN M16,中國)提取總RNA。然后用 NanoDrop(Thermo Fisher,美國)檢測 RNA 的濃度和質(zhì)量,并用 1% 瓊脂糖電泳檢測其完整性。

    用 ReverTra Ace qPCR RT Kit(TOYOBO,日本)試劑盒進(jìn)行RNA反轉(zhuǎn)錄,共20 μL體系,即4 μL 5×RT Buffer、1 μL Enzyme Mix、1 μL Primer Mix、14 μL RNA和無菌水混合液(RNA總量為 1 μg)。反轉(zhuǎn)錄程序:37 ℃ 15 min,98 ℃ 5 min,4 ℃ 終止反應(yīng),得到 cDNA。

    實時熒光定量 PCR(RT-PCR)用 SYBR Green Realtime PCR Master Mix(TOYOBO,日本)試劑盒及實時熒光定量 PCR儀(LightCycler 480Ⅱ,Roch,瑞士)進(jìn)行試驗。反應(yīng)體系共10 μL體系,即5 μL SYBR Green,4.5 μL 無菌水,0.2 μL 正向引物,0.2 μL 反向引物,0.1 μL cDNA(稀釋后)。反應(yīng)條件:95 ℃ 預(yù)變性1 min,95 ℃ 變性15 s,55 ℃ 退火10 s,72 ℃ 延伸20 s,40個循環(huán)。每個樣品3次平行,用公式 2-ΔΔCT 來計算基因的相對表達(dá)量。反應(yīng)的引物序列見表1。

    1.5 根系果膠甲酯酶(PME)活性測定

    處理后的根系樣品于1.5 mL離心管中經(jīng)液氮冷凍后充分研磨,加入 500 μL PME提取液(1 mol/L NaCl,10 mmol/L Tris-HCl,pH值=7.5),靜置冰浴 30 min后,15 000 r/min 離心 5 min。吸取 100 μL 上清液和甲醇標(biāo)準(zhǔn)液(0、10、20、30、40、50、75、100 μmol/L)于1.5 mL離心管中,加入200 μL 200 mmol/L 磷酸緩沖液{其中包含0.64 mg/mL果膠[酯化度(DE)=90%,Sigma]、0.01 units/μL 乙醇氧化酶(AO),pH值為7.5}。振蕩混勻,30 ℃孵育 10 min后加入 400 μL 5 g/L的巰基拉曼染料,振蕩混勻,30 ℃ 孵育 30 min,在550 nm 處測定吸光度。

    1.6 細(xì)胞壁的提取及細(xì)胞壁有效磷含量測定

    試驗處理完成后,將樣品用蒸餾水沖洗干凈,用吸水紙擦干水分。將樣品分根和地上部2個部分分別于研缽中用液氮充分研磨,然后加入5 mL 75%的乙醇,混勻后倒入10 mL離心管,室溫靜置20 min后,4 000 r/min 離心10 min,去上清。分別依次加入 5 mL 丙酮,1 ∶1的甲醇和三氯甲烷混合液以及甲醇,重復(fù)靜置、離心、去上清等步驟。最終得到的殘渣即為細(xì)胞壁粗提物,用冷凍干燥儀冷凍干燥后,于4 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    稱取5 mg左右細(xì)胞壁樣品于1.5 mL離心管中,加入1 mL 2 mol/L HCl溶液,渦旋振蕩24 h 后,15 000 r/min離心5 min。取100 μL上清液測定磷含量,測定方法同“1.2”節(jié)。

    1.7 果膠的提取及其磷含量測定

    稱取3 mg左右細(xì)胞壁樣品于1.5 mL離心管中,加入1 mL去離子水,100 ℃水浴1 h后13 200 r/min離心10 min,然后將上清液轉(zhuǎn)移至5 mL離心管中。重復(fù)2次水浴步驟后,將3次所得到的上清液混勻即為提取的果膠溶液。取100 μL上清液測定磷含量,測定方法同“1.2”節(jié)。

    1.8 數(shù)據(jù)處理

    試驗所得數(shù)據(jù)采用Excel 2007 和 SPSS 16.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,并用最小顯著性差異法(LSD)檢驗處理間的差異顯著性(P<0.05)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同品種不同處理條件下生物量比較

    Atlas 66和Scout 66 2個品種在不同處理條件下的生物量見圖1,結(jié)果表明,缺磷處理后,2個品種的鮮質(zhì)量和干質(zhì)量均有所降低,但只有Atlas 66缺磷處理根部鮮質(zhì)量顯著降低。此外,除正常培養(yǎng)條件下,Scout 66的根部干質(zhì)量顯著小于Atlas 66且鮮質(zhì)量略低外,其他各處理無論供磷水平如何Scout 66的鮮質(zhì)量和干質(zhì)量均大于Atlas 66,但品種間差異沒達(dá)到顯著水平(圖1-B)。

    2.2 不同品種不同處理條件下磷含量的差異

    2個小麥品種在正常培養(yǎng)和缺磷培養(yǎng)條件下全磷和可溶性磷含量有所差異(圖2)。Atlas 66在正常培養(yǎng)條件下根和地上部的全磷和可溶性磷含量大多大于Scout 66,但是品種間差異均未達(dá)到顯著水平。而缺磷條件下,品種間差異趨勢則相反,全磷和可溶性磷含量大多表現(xiàn)為Atlas 66小于Scout 66,但品種間差異不顯著。

    2.3 不同處理條件下根部磷相關(guān)基因表達(dá)量

    分析結(jié)果表明,2個小麥品種在磷含量上存在著差異,那么在體內(nèi)調(diào)控磷吸收轉(zhuǎn)運(yùn)的機(jī)制方面是否也存在著差異,我們對磷吸收轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)基因進(jìn)行表達(dá)量的測定。由圖3可知,正常培養(yǎng)條件下,除TaPHT1;6基因外,Atlas 66的磷相關(guān)基因表達(dá)量均小于Scout 66,尤其是TaPHT1;1a/b、TaPHT1;2a/b、TaPHT1;8,品種間差異達(dá)到顯著水平。缺磷條件下,除Scout66的TaPHT1;8基因略微下調(diào)外,2個供試品種的磷相關(guān)基因表達(dá)量均有所上調(diào),且個別基因在不同磷供應(yīng)水平下的表達(dá)量顯著上調(diào)。另一方面,Atlas 66在缺磷條件下的各基因表達(dá)量均大于Scout 66,說明在缺磷條件下,Atlas 66對磷的需求明顯要高于Scout 66,以此來滿足自身的生長發(fā)育需求。

    2.4 不同處理條件下細(xì)胞壁中有效磷含量

    植物吸收磷以滿足自身生長發(fā)育,而所吸收的磷相當(dāng)一部分量儲存于細(xì)胞壁中,基于本試驗中2個品種在磷含量上存在著差異,因此對細(xì)胞壁的磷含量進(jìn)行分析。結(jié)果(圖4)表明,不同處理條件下Atlas 66的根和地上部分細(xì)胞壁的磷含量均大于Scout 66,尤其是在缺磷條件下品種間差異顯著。說明相比于Scout 66,Atlas 66在缺磷時會有更多的磷作用于細(xì)胞壁中。

    2.5 不同處理條件下果膠中的磷含量

    果膠是細(xì)胞壁的重要組成成分,本試驗處理條件下,根和地上部果膠中磷的含量差異趨勢與細(xì)胞壁磷的差異趨勢一致, 均表現(xiàn)為Atlas 66大于Scout66(圖5)。

    2.6 不同處理條件下根部果膠甲酯酶(PME)活性

    果膠甲酯酶(PME)在細(xì)胞壁果膠去甲酯化這一過程中起重要作用,從圖6可以看出,缺磷處理后,Scout 66根中的PME活性提高相比于Atlas 66較為明顯,去甲酯化后裸露的羧基將結(jié)合陽離子進(jìn)而釋放更多的磷酸根用以磷的再利用。此外,2種磷供應(yīng)水平下,Atlas 66的PME活性均高于Scout 66,但品種間差異不顯著。

    3 討論與結(jié)論

    磷是作物生長發(fā)育所必需的營養(yǎng)元素,植物對無機(jī)磷的吸收和代謝過程多伴有陽離子的參與,其中也包括植物不需要的陽離子,如Al3+、Cd2+等[19]。由于磷酸根的特性而導(dǎo)致可供植物吸收利用的無機(jī)磷非常少,所以在酸性土壤上,磷和鋁2種元素同時限制植物的生長發(fā)育[20]。本試驗所用供試材料Atlas 66和Scout 66是2個鋁耐性不同的小麥品種,Atlas 66的耐鋁性顯著高于Scout 66[21]。近年來關(guān)于磷和鋁之間關(guān)系的研究報道很多,一致認(rèn)為耐鋁則磷高效、而磷高效則耐鋁[17-18,22]。那么在缺磷條件下,耐鋁性不同的作物對磷的再利用能力是否存在差異?基于這一問題,本研究在正常條件下對鋁耐性不同的2種小麥的磷含量進(jìn)行了測定,發(fā)現(xiàn)Atlas 66地上部和根的可溶性磷和全磷含量大多高于Scout 66;進(jìn)一步缺磷處理后,Atlas 66根和地上部分的可溶性磷和全磷含量大多低于Scout 66,而造成這一趨勢的原因可能是由于缺磷后的生物量差異造成的。

    在磷不足時,植物會誘導(dǎo)磷相關(guān)基因的表達(dá)來增加其對磷的吸收,并將吸收的磷利用以滿足代謝及生長發(fā)育所需[10]。作為磷酸鹽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,PHT家族在磷的吸收和轉(zhuǎn)運(yùn)方面的功能也已經(jīng)非常清楚,其家族所包含的大多數(shù) PHT1 基因表達(dá)定位于植物根系且受到磷饑餓響應(yīng)上調(diào),然后負(fù)責(zé)增加土壤中磷的吸收和植物體內(nèi)磷的遷移[23-25]。本研究也得到同樣的結(jié)論,缺磷時2種材料的磷相關(guān)基因表達(dá)量顯著上調(diào)。此外,在正常培養(yǎng)條件下Atlas 66的磷相關(guān)基因表達(dá)量大多小于Scout 66,而在缺磷時各基因的表達(dá)量大多顯著大于Scout 66,說明在缺磷條件下,Atlas 66對磷的需求要明顯高于Scout 66,以此來滿足自身的生長發(fā)育需求。

    植物吸收的磷90%以上都儲存于細(xì)胞質(zhì)中,而缺磷時細(xì)胞質(zhì)中磷遷移的研究已經(jīng)明確。近年來,新的觀點(diǎn)認(rèn)為,細(xì)胞壁中吸附的磷在植物磷不足時也可以進(jìn)行再利用。在此之前,由于植物的細(xì)胞壁主要由纖維素、半纖維素、果膠等構(gòu)成,其在幫助植物抵抗重金屬脅迫中已有大量研究[14,26]。耐鋁水稻品種Nipponbare在鋁處理后根系細(xì)胞壁中果膠主要為高度甲酯化果膠,從而減少了對外界鋁的吸附,緩解植物鋁毒[27]。由于果膠帶有負(fù)電荷的特性,其可在植物磷缺乏時將細(xì)胞壁中吸附的磷酸鹽中的磷置換出來,進(jìn)而供植物再利用,而同時體外的磷解析試驗也證實了這一點(diǎn)[13-14]?;诒驹囼?種材料在鋁耐性上的差異,我們對其細(xì)胞壁的磷含量進(jìn)行了分析,Atlas 66的根和地上部細(xì)胞壁的磷含量均大于Scout 66,尤其是在缺磷條件下品種間差異顯著,而地上部果膠中磷的含量差異趨勢與細(xì)胞壁中磷的含量差異趨勢一致,說明Atlas 66將更多的磷固定在細(xì)胞壁中,細(xì)胞壁不能釋放的磷導(dǎo)致Atlas 66的磷再利用能力降低。

    已有研究結(jié)果表明,高爾基體中合成的果膠具有高度的甲酯化,在果膠甲酯酶(PME)的催化下將甲酯基水解可以增加對細(xì)胞壁中陽離子的吸附,進(jìn)而釋放出無機(jī)磷[28]。本研究前期結(jié)果表明,缺磷條件下Scout 66具有相對較高的可溶性磷含量,而后面的結(jié)果表明,其細(xì)胞壁中的可溶性磷含量卻相對較低,那么2種材料細(xì)胞壁果膠甲酯酶活性的差異是否是導(dǎo)致這一結(jié)果出現(xiàn)的原因呢?經(jīng)試驗發(fā)現(xiàn),在缺磷處理后,2個品種根中的PME活性均提高。此外,我們發(fā)現(xiàn)在正常條件下Atlas 66的PME活性比Scout 66高出31.62%,而缺磷后Atlas 66的PME活性比Scout 66高出6.65%,說明缺磷處理后Scout 66的PME活性的提高幅度大于Atlas 66,這可能也是2種材料耐鋁性差異的原因之一。

    耐鋁性小麥品種Atlas 66的鮮質(zhì)量和干質(zhì)量比鋁敏感性小麥品種Scout 66低,全磷和可溶性磷含量也相對較低。但在缺磷條件下,Atlas 66的根和地上部細(xì)胞壁中的磷含量顯著高于Scout 66;另一方面,缺磷后Scout 66的PME活性的提高幅度要大于Atlas 66,說明相比于Atlas 66,Scout 66細(xì)胞壁中的果膠在缺磷時會保持一個相對較低的甲酯化度,即釋放更多的細(xì)胞壁磷,這可能也是2種材料耐鋁性差異的原因之一。

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