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    抗破傷風(fēng)類(lèi)毒素單克隆抗體的制備與鑒定①

    2021-09-25 10:07:58董國(guó)霞張華捷晁哲田霖侯啟明譚亞軍馬霄中國(guó)食品藥品檢定研究院百白破疫苗和毒素室衛(wèi)生部生物技術(shù)產(chǎn)品檢定方法及其標(biāo)準(zhǔn)化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室北京102629
    中國(guó)免疫學(xué)雜志 2021年18期
    關(guān)鍵詞:類(lèi)毒素單克隆效價(jià)

    董國(guó)霞 張華捷 晁哲 田霖 侯啟明 譚亞軍 馬霄(中國(guó)食品藥品檢定研究院百白破疫苗和毒素室,衛(wèi)生部生物技術(shù)產(chǎn)品檢定方法及其標(biāo)準(zhǔn)化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京102629)

    破傷風(fēng)疫苗是預(yù)防破傷風(fēng)的有效途徑,破傷風(fēng)類(lèi)毒素是破傷風(fēng)疫苗的主要有效組分,破傷風(fēng)疫苗效價(jià)檢測(cè)是疫苗有效的重要指標(biāo)。本研究擬通過(guò)抗破傷風(fēng)類(lèi)毒素單克隆抗體的制備為破傷風(fēng)疫苗效價(jià)檢測(cè)新方法的建立、低含量破傷風(fēng)類(lèi)毒素測(cè)定、吸附度測(cè)定等奠定基礎(chǔ),以提升我國(guó)破傷風(fēng)疫苗質(zhì)量控制水平。

    1 材料與方法

    1.1 材料破傷風(fēng)類(lèi)毒素由本室提供;HRP標(biāo)記的羊抗鼠二抗為Invitrogen產(chǎn)品;石蠟油為MP Bio‐medical產(chǎn)品;DMEM培養(yǎng)液、胎牛血清為Gibco產(chǎn)品;G蛋白柱為GE Healthcare產(chǎn)品;超濾管為Milli‐pore產(chǎn)品;96孔聚苯乙烯酶標(biāo)板為Greiner Bio-One GmbH產(chǎn)品;抗體亞類(lèi)鑒定試劑盒為Proteintech產(chǎn)品;其他常用試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純;SP2/0骨髓瘤細(xì)胞由本室保存;BALB/c小鼠、昆明小鼠由中國(guó)食品藥品檢定研究院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)與供應(yīng)室提供。3K30高速冷凍離心機(jī)為Sigma產(chǎn)品;5810R低速離心機(jī)為Eppendorf產(chǎn)品;AKTA層析系統(tǒng)為Amer‐sham pharmacia biotech產(chǎn) 品;Biacore T200為GE Healthcare產(chǎn)品;酶標(biāo)儀為Bio-Tek產(chǎn)品;電泳儀為Bio-Rad產(chǎn)品。

    1.2 方法

    1.2.1 抗破傷風(fēng)類(lèi)毒素單克隆抗體的制備及純化[1-2]選擇純度較好的破傷風(fēng)類(lèi)毒素抗原對(duì)BALB/c雌性小鼠進(jìn)行免疫,按常規(guī)方法將小鼠脾細(xì)胞與骨髓瘤細(xì)胞SP2/0融合,把篩選后獲得的陽(yáng)性雜交瘤細(xì)胞株進(jìn)行擴(kuò)種、保存。取BALB/c雌性小鼠,每只腹腔注射0.5 ml石蠟油,10 d后每只小鼠腹腔注射1×106個(gè)雜交瘤細(xì)胞,注射1周后收集腹水,3 000 r/min離心20 min,收集中間層,-20℃凍存。用AKTA層析系統(tǒng)和Protein G柱對(duì)收集的中間層進(jìn)行純化。

    1.2.2 單克隆抗體的效價(jià)檢測(cè)[3]用破傷風(fēng)類(lèi)毒素包被96孔酶標(biāo)板,4℃孵育過(guò)夜,洗板后第一行加入稀釋的單克隆抗體,倍比稀釋至第8行,37℃孵育1 h,洗板后加入過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗鼠二抗,37℃孵育1 h,洗板后加入OPD顯色液,孵育10 min,在波長(zhǎng)490 nm/630 nm處用酶標(biāo)儀檢測(cè)其OD值。以P/N≥2.1的抗體最大稀釋度作為其抗體效價(jià)。

    1.2.3 單克隆抗體的亞類(lèi)鑒定用Proteintech抗體亞類(lèi)鑒定試劑盒按其說(shuō)明書(shū)操作步驟對(duì)單克隆抗體進(jìn)行亞類(lèi)檢測(cè)。

    1.2.4 單克隆抗體的親和力測(cè)定利用Biacore T200檢測(cè)單克隆抗體與破傷風(fēng)抗原的親和力數(shù)據(jù)。按Mouse Antibody Capture Kit說(shuō)明書(shū)通過(guò)氨基偶聯(lián)法固定鼠源抗體至CM5芯片上,加入合適濃度的破傷風(fēng)抗原,分別與不同單克隆抗體進(jìn)行結(jié)合再解離,所得傳感圖利用其分析軟件進(jìn)行擬合,獲得抗體與抗原的親和力數(shù)據(jù)。

    1.2.5 單克隆抗體的蛋白濃度測(cè)定用NanoDrop 2000分光光度計(jì)的Protein A280進(jìn)行單克隆抗體的蛋白濃度檢測(cè)。

    1.2.6 單克隆抗體的純度分析[4]將純化的單克隆抗體用SDS-PAGE電泳進(jìn)行純度分析。

    1.2.7 單克隆抗體的特異性分析[5-6]用破傷風(fēng)類(lèi)毒素(T)、白喉類(lèi)毒素(D)、百日咳毒素(PT)、百日咳絲狀血凝素(FHA)和百日咳黏附素(PRN)分別包被酶標(biāo)板,4℃孵育過(guò)夜,洗板后各包被抗原分別加入T1、T2、T3、T4、T5單克隆抗體,同時(shí)設(shè)陽(yáng)性對(duì)照、陰性對(duì)照,之后同1.2.2中操作。

    1.2.8 單克隆抗體的中和活性分析[7]按2015版藥典破傷風(fēng)抗毒素效價(jià)測(cè)定法測(cè)定單克隆抗體的中和活性。試驗(yàn)分別設(shè)樣品組、標(biāo)準(zhǔn)組、毒素組和空白組;樣品組中昆明小鼠注射T1、T2、T3、T4、T5單克隆抗體各稀釋度與毒素中和后的溶液及T1、T2、T3、T4、T5單克隆抗體混合后各稀釋度與毒素中和后的溶液(分別為T(mén)1樣品組、T2樣品組、T3樣品組、T4樣品組、T5樣品組和T6樣品組),樣品組分為3個(gè)不同的稀釋度;標(biāo)準(zhǔn)組中昆明小鼠注射破傷風(fēng)抗毒素標(biāo)準(zhǔn)品與毒素中和后的溶液;毒素組中昆明小鼠只注射稀釋后的毒素溶液;空白組中昆明小鼠只注射緩沖液;注射后連續(xù)5 d觀察小鼠存活情況。

    1.2.9 雜交瘤細(xì)胞株穩(wěn)定性檢測(cè)T1、T2、T3、T4、T5雜交瘤細(xì)胞株在液氮罐凍存2個(gè)月及13個(gè)月后各復(fù)蘇1次,檢測(cè)復(fù)蘇后細(xì)胞培養(yǎng)上清效價(jià);并在13個(gè)月解凍后連續(xù)培養(yǎng)傳至20代,每5代檢測(cè)1次細(xì)胞培養(yǎng)上清效價(jià),以檢測(cè)雜交瘤細(xì)胞的活性和分泌抗體的穩(wěn)定性。

    2 結(jié)果

    2.1 制備及純化抗破傷風(fēng)類(lèi)毒素單克隆抗體通過(guò)制備、純化獲得T1、T2、T3、T4、T5共5個(gè)抗破傷風(fēng)類(lèi)毒素單克隆抗體。

    2.2 效價(jià)檢測(cè)檢測(cè)T1、T2、T3、T4、T5單克隆抗體的腹水效價(jià)為1∶1.60×106~1∶1.28×107,純化后其效價(jià)為1∶3.20×106~1∶1.28×107,見(jiàn)表1。

    表1 腹水及純化單克隆抗體效價(jià)(McAbs)Tab.1 Titer of ascites and purified monoclonal antibodies(McAbs)

    2.3 抗破傷風(fēng)類(lèi)毒素單克隆抗體的亞類(lèi)鑒定用抗體亞類(lèi)鑒定試劑盒對(duì)5株單抗進(jìn)行鑒定,結(jié)果表明5株單抗分別為IgG1、IgG2b亞類(lèi),輕鏈均為к型,如表2所示。

    表2 抗體亞類(lèi)鑒定Tab.2 Identification of antibody subclass

    2.4 單克隆抗體的親和力測(cè)定通過(guò)Biacore檢測(cè)單克隆抗體與破傷風(fēng)類(lèi)毒素的親和力,見(jiàn)圖1~5,T1、T2、T3、T4、T5單克隆抗體與破傷風(fēng)類(lèi)毒素的親和力數(shù)據(jù)分別為5.455E-9 M、2.074E-8 M、2.050E-9 M、2.021E-9 M和1.295E-9 M。

    圖1 T1單抗結(jié)合動(dòng)力學(xué)曲線Fig.1 Binding dynamics curve of T1 McAb

    2.5單克隆抗體的蛋白濃度測(cè)定通過(guò)NanoDrop 2000分光光度計(jì)Protein A280檢測(cè)抗破傷風(fēng)類(lèi)毒素單克隆抗體T1、T2、T3、T4、T5的蛋白濃度分別為:15.126 mg/ml、5.772 mg/ml、12.278 mg/ml、12.58 mg/ml和16.301 mg/ml。

    圖2 T2單抗結(jié)合動(dòng)力學(xué)曲線Fig.2 Binding dynamics curve of T2 McAb

    圖3 T3單抗結(jié)合動(dòng)力學(xué)曲線Fig.3 Binding dynamics curve of T3 McAb

    2.6 單克隆抗體的純度分析將純化的單克隆抗體用SDS-PAGE電泳進(jìn)行純度分析,電泳結(jié)果顯示各單克隆抗體具有較好的純度,分子量在預(yù)期范圍內(nèi),見(jiàn)圖6。

    圖4 T4單抗結(jié)合動(dòng)力學(xué)曲線Fig.4 Binding dynamics curve of T4 McAb

    圖5 T5單抗結(jié)合動(dòng)力學(xué)曲線Fig.5 Binding dynamics curve of T5 McAb

    圖6 單克隆抗體的SDS-PAGE電泳Fig.6 SDS-PAGE electrophoresis of McAbs

    2.7 單克隆抗體的特異性分析采用ELISA法對(duì)T1、T2、T3、T4、T5單克隆抗體的特異性進(jìn)行分析,檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)表3,從表中可以看出T1、T2、T3、T4、T5單克隆抗體與T抗原具有較好的反應(yīng),而與百白破疫苗中的D抗原、PT抗原、FHA抗原和PRN抗原無(wú)交叉反應(yīng),說(shuō)明T1、T2、T3、T4、T5單克隆抗體均具有較好的特異性。

    表3 ELISA法對(duì)單抗的特異性分析Tab.3 Specific analysis of monoclonal antibodies by ELISA

    2.8 單克隆抗體的中和活性分析注射后小鼠存活情況如表4(表中T1-1為低稀釋度,T1-2為中稀釋度,T1-3為高稀釋度,下同)。標(biāo)準(zhǔn)組小鼠在注射后24 h均存活,無(wú)發(fā)病癥狀,24 h之后開(kāi)始發(fā)病,第5天時(shí)全部死亡??瞻捉M和T6樣品組各稀釋度小鼠在注射后5 d內(nèi)均存活,且無(wú)癥狀。毒素組和T2樣品組小鼠在注射后16 h全部死亡。T1、T3、T4、T5樣品組在注射16 h后均有小鼠存活,T1-1有1只小鼠存活,T1-2、T1-3小鼠均死亡,由于T1-1僅有1只小鼠存活,不能確定其是否為中和性抗體;T3-1組的3只小鼠均存活,T3-2、T3-3小鼠均死亡,判斷其為中和性抗體;T4樣品組低、中稀釋度無(wú)小鼠存活,而高稀釋度有1只小鼠存活,但發(fā)病癥狀明顯;T5樣品組各稀釋度均有小鼠存活,T5-1、T5-2、T5-3的小鼠分別存活3只、2只、1只,隨稀釋度由低到高小鼠存活呈一定梯度,24 h時(shí)T5-1的3只小鼠仍存活,T5-2、T5-3的小鼠均死亡,判斷其為中和性抗體。

    表4 各組小鼠存活情況Tab.4 Survival numbers of mice in each group

    2.9 雜交瘤細(xì)胞株穩(wěn)定性檢測(cè)穩(wěn)定性檢測(cè)如表5,結(jié)果顯示雜交瘤細(xì)胞株在凍存2個(gè)月、13個(gè)月后復(fù)蘇及連續(xù)培養(yǎng)20代后,細(xì)胞上清效價(jià)未見(jiàn)明顯變化,表明其均能分泌特異性抗體,且分泌能力基本保持不變。

    表5 雜交瘤細(xì)胞株分泌抗體穩(wěn)定性檢測(cè)Tab.5 Stability test of antibodies secretion by hybridoma cell strains

    3 討論

    辛酸-硫酸銨鹽析和G蛋白親和層析是純化單克隆抗體時(shí)常用的兩種方法,本課題組曾用兩種方法分別對(duì)單克隆抗體進(jìn)行純化,辛酸-硫酸銨鹽析法成本低,一次可進(jìn)行大量樣品的純化,但回收率遠(yuǎn)低于文獻(xiàn)報(bào)道的39%~90%[2,8-10],可能與不同抗體類(lèi)型及不同來(lái)源的樣品有關(guān),G蛋白親和層析法純化后單克隆抗體的回收率和純度均較好,因此本研究采用G蛋白親和層析柱進(jìn)行純化。

    本研究純化的T3、T5單克隆抗體對(duì)破傷風(fēng)毒素具有中和作用,當(dāng)把5個(gè)單克隆抗體混合后顯示了更強(qiáng)的毒素中和作用,其與破傷風(fēng)毒素的作用有待進(jìn)一步研究。

    破傷風(fēng)疫苗效價(jià)是保證疫苗能有效預(yù)防疾病的重要指標(biāo),當(dāng)前我國(guó)吸附破傷風(fēng)疫苗效價(jià)檢測(cè)采用的是小鼠和豚鼠攻毒法[7],所用動(dòng)物量較大,檢測(cè)結(jié)果易受動(dòng)物個(gè)體差異影響,且檢測(cè)成本高、工作量大、有接觸毒素的生物安全風(fēng)險(xiǎn),不符合“減少、替代、優(yōu)化”的3R動(dòng)物使用原則。針對(duì)當(dāng)前效價(jià)檢測(cè)方法的不足,本研究擬通過(guò)破傷風(fēng)單克隆抗體的制備,將其用于破傷風(fēng)抗體體外結(jié)合ELISA檢測(cè)方法中,為建立破傷風(fēng)疫苗效價(jià)檢測(cè)新方法奠定基礎(chǔ),實(shí)現(xiàn)用同一批動(dòng)物血清同時(shí)檢測(cè)破傷風(fēng)、白喉等多種抗體,尤其是隨著越來(lái)越多多聯(lián)多價(jià)聯(lián)合疫苗的出現(xiàn),將大大減少動(dòng)物的使用量、工作量和實(shí)驗(yàn)成本,提升我國(guó)吸附破傷風(fēng)疫苗效價(jià)檢測(cè)水平。本研究成功制備了5個(gè)破傷風(fēng)單克隆抗體,其可用于破傷風(fēng)疫苗效價(jià)檢測(cè)新方法的建立、破傷風(fēng)類(lèi)毒素含量測(cè)定和吸附度測(cè)定等。

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