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    內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激在深靜脈血栓小鼠中的作用

    2021-09-14 15:20:32唐茂舜朱車甫陳東祥李建平
    中國醫(yī)藥科學(xué) 2021年15期
    關(guān)鍵詞:內(nèi)質(zhì)網(wǎng)下腔內(nèi)皮細胞

    唐茂舜 朱車甫 陳東祥 鄭 義 李建平

    1.中國科學(xué)院大學(xué)深圳醫(yī)院 (光明)神經(jīng)外科,廣東深圳 518106;2.中國科學(xué)院大學(xué)深圳醫(yī)院 (光明)介入手術(shù)室,廣東深圳 518106;3.中國科學(xué)院大學(xué)深圳醫(yī)院 (光明)醫(yī)學(xué)實驗中心,廣東深圳 518106;4.中國科學(xué)院大學(xué)深圳醫(yī)院 (光明)心血管內(nèi)科,廣東深圳 518106

    深靜脈血栓(deep venous thrombosis,DVT)是一種繼心腦血管疾病之后最為常見的外周血管疾病,多發(fā)生在下肢,可繼發(fā)于手術(shù)、創(chuàng)傷、惡性腫瘤、既往的深靜脈血栓史等[1-2]。目前DVT的診斷主要還是通過患者的臨床癥狀并借助輔助檢查實現(xiàn)的,治療上主要是采用抗凝藥物、溶栓及手術(shù)取栓等綜合手段,但這些措施并不能完全消除血栓形成后的一些癥狀[3-4]。年齡、肥胖、吸煙、靜脈曲張等是DVT形成的危險因素,這些危險因素互相作用,致使血流滯緩,血管內(nèi)皮缺氧缺血受損,血液凝度高,進而促使DVT發(fā)生[5-6]。而且目前研究認為靜脈內(nèi)皮細胞結(jié)構(gòu)和功能的紊亂是DVT形成的始動因素[7],特別是氧化應(yīng)激引起的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng)是血管內(nèi)皮損傷的重要原因[8]。因此探討內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激在DVT形成過程中的作用對于DVT的發(fā)病機制及治療將具有重要意義。

    1 材料與儀器

    1.1 實驗動物

    32只清潔級C57BL/6小鼠購于湖南斯萊克景達實驗動物有限公司,許可證號:SCXK(湘)2016-0002。

    1.2 實驗試劑與儀器

    蘇木素染液、伊紅染色液均購于武漢博士德生物科技有限公司,批號:AR11800-1、AR11800-2;Scott藍化液購于Solarbio公司,批號:G1865;Trizon Reagent購于北京康為世紀生物科技有限公司,批號:CW0580S;TUNEL檢測試劑盒購于碧云天生物技術(shù)有限公司,批號:C1088;放射免疫沉淀法(RIPA)細胞裂解液購于北京普利萊基因技術(shù)有限公司,批號C1053;兔抗糖調(diào)節(jié)蛋白78(GRP78)、X盒結(jié)合蛋白1(XBP1)、CCAAT增強子結(jié)合蛋白同源蛋白(CHOP)多克隆抗體購于Affinity公司,批號:DF6025、AF5110、AF5366,稀釋度均為1/1000;兔抗天冬氨酸水解蛋白酶3(cleaved caspase 3)多克隆抗體購于美國Abcam公司,批號:ab2302,稀釋度1/1000;辣根酶標記山羊抗兔IgG(H+L)購于北京中杉金橋生物科技有限公司,批號:ZB-2301。D1008E微型離心機購于SCJLOGEX;UV-1600PC紫外可見分光光度計購于上海美譜達儀器有限公司;TGL-16G低溫高速離心機購于常州中捷實驗儀器制造有限公司;Chemi DocTM XRS+超高靈敏度化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)購于伯樂生命醫(yī)學(xué)產(chǎn)品(上海)有限公司;DYY-6C蛋白垂直電泳儀購于北京市六一儀器廠。

    1.3 實驗分組及造模

    將32只小鼠隨機分為正常組、假手術(shù)組、模型組,正常組10只,假手術(shù)組及模型組各11只,其中各1只用于模型驗證。模型組:小鼠按0.08 ml/10 g腹腔注射麻醉劑(5%水合氯醛),小鼠麻醉起效后,腹部剃毛,小鼠仰臥位放置在手術(shù)操作臺上,消毒腹部,逐層開腹,將腸內(nèi)容物擠出位于操作者左側(cè)放置于生理鹽水潤濕的紗布上,暴露并分離下腔靜脈,將分離出的下腔靜脈與動脈同造模針頭(直徑0.3 mm,注射器針頭)一起用4-0醫(yī)用真絲編織縫合線結(jié)扎,迅速抽出針頭,并將下腔靜脈的可見分支進行結(jié)扎,關(guān)腹。假手術(shù)組:小鼠按0.08 ml/10 g腹腔注射麻醉劑(5%水合氯醛),小鼠麻醉起效后,腹部剃毛,小鼠仰臥位放置在手術(shù)操作臺上,消毒腹部,逐層開腹,將腸內(nèi)容物擠出位于操作者左側(cè)放置于生理鹽水潤濕的紗布上,暴露并分離下腔靜脈,關(guān)腹。正常組:小鼠不做任何處理。

    1.4 取樣

    造模后24 h取各組小鼠下腔靜脈組織,正常組和假手術(shù)組將左腎靜脈至髂總靜脈分叉處之間的下腔靜脈段剪下,模型組小鼠取成血栓及其相應(yīng)的下腔靜脈組織,每組取3個樣本置于10%福爾馬林溶液中固定用于HE染色,Tunnel染色檢測,每組取4樣本置于-80℃中保存用于western blot檢測。

    1.5 HE染色

    石蠟標本經(jīng)流水沖洗數(shù)小時后,經(jīng)梯度乙醇溶液脫水,二甲苯Ⅰ、Ⅱ脫蠟至透明。蒸餾水洗滌后,蘇木精染色液進行染色,流水洗去染色液,1%鹽酸乙醇進行分化,稍水洗,促藍液返藍,流水沖洗,伊紅染色,蒸餾水稍洗,梯度乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片,顯微鏡下觀察,細胞核染藍色,細胞漿染紅色。

    1.6 TUNEL染色

    石蠟切片置于65℃烤箱烘烤2 h,二甲苯Ⅰ、Ⅱ脫蠟,梯度乙醇脫水。按TUNEL檢測試劑盒說明書操作:切片置于濕盒中,加入Proteinase K工作液,37℃反應(yīng)30 min。磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌干凈,吸水紙吸干PBS,滴加TUNEL檢測液,45℃避光孵育2 h,PBS洗滌,封片顯微鏡下觀察,綠色熒光為凋亡細胞,藍色熒光為細胞核。

    1.7 western blot檢測細胞中蛋白表達

    收集細胞,加入細胞裂解液于4℃搖床上作用細胞30 min,后用移液槍反復(fù)的吹打細胞20次左右,4℃、12 000 r/min離心10 min,收集上清液。配置濃縮膠及分離膠,2,2-聯(lián)喹啉-4,4-二甲酸二鈉(BCA)試劑盒檢測蛋白濃度并定量,30 μg蛋白樣品上樣,進行十二烷基苯磺酸鈉凝膠電泳直至目的蛋白分離,轉(zhuǎn)聚偏氟乙烯膜30 min。5%脫脂奶粉室溫下封閉1 h,一抗溶液4℃過夜孵育,次日室溫孵育二抗,將化學(xué)發(fā)光試劑加于膜上,于凝膠成像系統(tǒng)中曝光,并分析目的蛋白條(GRP78、XBP1、CHOP 及cleaved caspase 3)帶灰度值。

    1.8 統(tǒng)計學(xué)方法

    應(yīng)用SPSS 20.0統(tǒng)計學(xué)軟件進行統(tǒng)計分析,計量資料以(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,多組間的兩兩比較采用SNK法,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組小鼠HE染色結(jié)果

    正常組及假手術(shù)組小鼠下腔靜脈無血栓形成,血管內(nèi)膜表面光滑、平整。模型組下腔靜脈有混合血栓,主要為均勻分布的紅細胞,紅細胞之間有纖維素網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),并有白細胞、血小板散在;血管內(nèi)皮細胞不連續(xù),靜脈周圍有大量炎癥細胞聚集。見圖1。

    圖1 各組小鼠靜脈組織HE染色結(jié)果(×200)

    2.2 各組小鼠TUNEL實驗結(jié)果

    與正常組(2.35±0.13)%及假手術(shù)組(2.76±0.11)%比較,模型組小鼠靜脈內(nèi)皮細胞凋亡率(32.58±0.43)%上升,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=12 776.949,P=0.000)。見圖2。

    圖2 各組小鼠靜脈組織TUNEL染色結(jié)果(×200)

    2.3 各組小鼠靜脈組織中GRP78、XBP1、CHOP及cleaved caspase 3表達測定結(jié)果

    與正常組及假手術(shù)組比較,模型組小鼠靜脈組織中GRP78、XBP1、CHOP及cleaved caspase 3蛋白表達量上升,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見圖3、表1。

    圖3 各組小鼠靜脈組織中GRP78、XBP1、CHOP及cleaved caspase 3表達測定結(jié)果

    表1 各組小鼠靜脈組織中GRP78、XBP1、CHOP及cleaved caspase 3表達測定結(jié)果(±s)

    表1 各組小鼠靜脈組織中GRP78、XBP1、CHOP及cleaved caspase 3表達測定結(jié)果(±s)

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    3 討論

    本研究通過小鼠下腔靜脈狹窄法構(gòu)建小鼠DVT模型,造模24 h后,發(fā)現(xiàn)模型組小鼠腹腔內(nèi)腸系膜靜脈明顯擴張,管壁顏色變暗,結(jié)扎處下方血管明顯腫脹,管壁顏色變暗,血管內(nèi)有血凝塊,HE染色發(fā)現(xiàn)模型組小鼠管內(nèi)充滿血栓,血管內(nèi)皮細胞不連續(xù),靜脈周圍有大量炎癥細胞聚集,這些研究結(jié)果與文獻報道基本一致[9],也符合人體DVT急性期的病理表現(xiàn)[10],說明本研究的造模成功。接著通過TUNEL實驗發(fā)現(xiàn)模型組小鼠下腔靜脈TUNEL陽性率高于正常組及假手術(shù)組,說明內(nèi)皮細胞的凋亡在小鼠DVT的形成過程中發(fā)揮重要作用,但具體是由何機制所誘導(dǎo)的,本研究將進一步探討。

    內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(endoplasmic reticulum,ER)是真核細胞中重要的細胞器,對膜蛋白、分泌蛋白的折疊與加工,鈣的儲存與釋放具有重要調(diào)節(jié)作用,因此對細胞正常功能的維持至關(guān)重要。所以當內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中蛋白的折疊、加工過程受阻,鈣離子穩(wěn)態(tài)被打破后會使細胞發(fā)生致死性的損害。缺血缺氧、鈣超載、氧化應(yīng)激等外界刺激均會使內(nèi)質(zhì)網(wǎng)功能發(fā)生障礙,進而觸發(fā)內(nèi)質(zhì)ERS[11-13]。適度的ERS有助于未折疊蛋白或錯誤折疊蛋白的清除,并促進鈣穩(wěn)態(tài)的恢復(fù),而過度的ERS導(dǎo)致未折疊蛋白或錯誤折疊蛋白聚集、鈣穩(wěn)態(tài)平衡被打破,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)超負荷,并引起細胞凋亡。ERS主要通過激酶R樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(PERK)、需肌醇酶1(IRE1)、活化轉(zhuǎn)錄因子6(ATF6)等3條信號通路發(fā)揮作用。在正常生理條件下,糖調(diào)節(jié)蛋白78(glucose regulated protein 78,GRP78)通過與PERK、IRE1、ATF6結(jié)合形成復(fù)合物,阻斷這些信號通路的傳遞。但在應(yīng)激條件下,GRP78從復(fù)合物中解離出來,與未折疊或錯誤折疊蛋白結(jié)合,使得這些蛋白無法從ER中輸出,同時這些信號通路被激活。其中激活的IRE1活化X盒結(jié)合蛋白1(X-box binding protein 1,XBP1),活化的XBP1激活CCAAT增強子結(jié)合蛋白同源蛋白(CCAAT-enhancer-binding protein homologous protein,CHOP)凋亡途徑,最終將信號傳遞給Caspase家族,誘導(dǎo)細胞凋亡。而且非晶態(tài)二氧化硅納米顆粒(SiNPs)處理的人臍靜脈內(nèi)皮細胞(HUVECs),線粒體腫脹,內(nèi)皮細胞凋亡,ER染色加強,GRP78、XBP1、CHOP、Capase-12表達量均上調(diào),繼而提示內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激誘導(dǎo)的凋亡途徑可能是SiNPs誘導(dǎo)內(nèi)皮細胞凋亡的機制之一[14]。所以說GRP78從跨膜蛋白上解離是ERS啟動的第一步,因此GRP78在細胞內(nèi)的高表達提示ERS的開始[15]。本研究通過western blot實驗發(fā)現(xiàn)模型組較正常組及假手術(shù)組靜脈組織中GRP78蛋白表達量上調(diào),預(yù)示著ERS的開始促進了DVT的形成。另外本研究western blot實驗結(jié)果還發(fā)現(xiàn)模型組中XBP1、CHOP蛋白表達量均上調(diào),western blot實驗結(jié)果表明DVT小鼠靜脈組織中cleaved caspase 3蛋白表達量較正常組及假手術(shù)組上調(diào),說明GRP78、XBP1、CHOP、cleaved caspase 3介導(dǎo)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激反應(yīng)所誘導(dǎo)的小鼠內(nèi)皮細胞凋亡是小鼠DVT形成的重要原因。

    綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激介導(dǎo)的內(nèi)皮細胞凋亡是小鼠DVT形成的重要原因,且此過程是通過GRP78、XBP1、CHOP、cleaved caspase 3信號進行傳導(dǎo)的,但具體是如何進一步的調(diào)控有待于本課題組下一步研究。

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