王 龍,王 芳,湯 蕾,童盼盼,張亞若,王江波,3*
(1.塔里木大學(xué) 植物科學(xué)學(xué)院,新疆 阿拉爾 843300;2.塔里木大學(xué) 南疆特色果樹高效優(yōu)質(zhì)栽培與深加工技術(shù)國(guó)家地方聯(lián)合工程實(shí)驗(yàn)室,新疆 阿拉爾843300;3.新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán) 塔里木盆地生物資源保護(hù)利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆 阿拉爾 843300)
紅肉蘋果(MalusniedzwetzkyanaDieck)為薔薇科蘋果屬果樹,是我國(guó)珍貴樹種,該果樹開花早,結(jié)果早,豐產(chǎn),抗逆性強(qiáng),其花、葉、果實(shí)等器官富含花青苷,且?guī)в胁煌潭鹊募t色[1]。新疆紅肉蘋果是一種果肉、果皮及果核均為紅色且擁有多種生物活性物質(zhì)的獨(dú)特蘋果屬果實(shí)[2]?;ㄇ嘬諏?duì)果實(shí)顏色的形成有著重要的作用,花青苷是新疆紅肉蘋果中多酚的一種,屬黃酮類化合物[3]。
花青苷為蘋果體內(nèi)重要的次生代謝產(chǎn)物,由葡萄糖代謝產(chǎn)生的苯丙氨酸為前體物質(zhì),一步步在各種酶的催化下合成而來[4]?;ㄇ嘬盏暮铣墒艿浇Y(jié)構(gòu)基因與轉(zhuǎn)錄因子的協(xié)同調(diào)控[5],其中部分對(duì)花青苷合成起調(diào)控作用的基因表達(dá)受環(huán)境因子的影響,比如溫度、光照和營(yíng)養(yǎng)狀況[6-7]。前人對(duì)花青苷合成協(xié)同作用的結(jié)構(gòu)基因的研究主要集中在與花青苷合成相關(guān)酶密切相關(guān)的結(jié)構(gòu)基因ANS、UFGT、F3H、PYL、DFR、CHS和對(duì)結(jié)構(gòu)基因具有調(diào)控作用的轉(zhuǎn)錄因子MYB、bHLH、TTG1等上[8-11]。
目前,有關(guān)紅肉蘋果花青苷合成所涉及到的酶和調(diào)控因子已有部分研究,但對(duì)于花青苷含量及其與相關(guān)基因表達(dá)量之間的關(guān)系尚未明確,因此,本研究以新疆紅肉蘋果克孜阿爾瑪、夏紅肉及國(guó)外引進(jìn)紅肉品種紅色之愛為試材,測(cè)定了其果實(shí)在不同發(fā)育時(shí)期果皮花青苷含量及相關(guān)基因的表達(dá)量,旨在進(jìn)一步了解花青苷合成機(jī)制,為培育紅肉蘋果新品種提供理論參考。
試驗(yàn)材料選取輪臺(tái)南疆特色果樹資源圃的紅肉品種夏紅肉、克孜阿爾瑪,以及第一師阿拉爾市十二團(tuán)從國(guó)外引進(jìn)的紅肉品種紅色之愛,在盛花后30、60、90、120、150 d(紅色之愛在盛花后30 d未采集樣品)在樹冠外圍中部的4個(gè)不同方向隨機(jī)選取無病蟲害、大小基本相同的10個(gè)果實(shí),各3次重復(fù),用泡沫冰盒帶回實(shí)驗(yàn)室,將果皮快速切成細(xì)小塊狀,用液氮處理后分別裝入提前準(zhǔn)備好的實(shí)驗(yàn)袋,放入-80 ℃超低溫冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1 花青苷提取及含量測(cè)定 花青素提取方法為pH示差法,并根據(jù)實(shí)際情況稍作調(diào)整[12]。取出部分所需樣品,快速用液氮研磨充分后準(zhǔn)確稱取0.4 g,分別用2 mL的pH=1的緩沖液(含50 mmol/L KCl和150 mmol/L HCl)和pH=4.5的緩沖液(含400 mmol/L NaCH3CO2和240 mmol/L HCl)在低溫下抽提4 h,直至樣品基本呈白色;抽提完成后,在12000 r/min,4 ℃條件下離心15 min;取上清液測(cè)量其在510 nm的吸光度值(酶標(biāo)儀)?;ㄇ嗨貪舛扔?jì)算公式為:花青素濃度(μg/g FW)=(ApH 1-ApH 4.5)×1000×484.8/24825×6。在本研究中0.4 g鮮樣近似為0.4 mL體積。
1.2.2 引物設(shè)計(jì) 在NCBI上查詢花青苷合成相關(guān)的候選基因,并參考An[13]和孫曉紅[14]等報(bào)道的基因序列,設(shè)計(jì)花青苷合成相關(guān)基因的實(shí)時(shí)熒光定量PCR(quantitative Real Time PCR, qRT-PCR)引物。引物名稱及序列見表1。
表1 qRT-PCR的引物
1.2.3 果皮RNA提取及qRT-PCR分析 按照上海生工SK8661柱式植物總RNA抽提純化試劑盒的說明書進(jìn)行樣品果皮RNA的提取,實(shí)驗(yàn)步驟稍作變動(dòng)[19]。用NanoDrop One核酸蛋白分析儀測(cè)定OD260、OD280,計(jì)算檢測(cè)RNA的純度和濃度。同時(shí)將提取的RNA樣品分別加入溴酚藍(lán),混勻后用含有EB的1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA完整性,在紫外投射儀上觀察RNA分子的大小、完整性、電泳譜帶的清晰度;用反轉(zhuǎn)錄試劑盒HiScript?Ⅲ 1st Strand cDNA Synthesis Kit(+gDNA wiper)(cat.Z005163,Vazyme)合成cDNA,稀釋備用。
以Md-Actin作為qRT-PCR內(nèi)參基因,對(duì)蘋果花青苷合成相關(guān)基因的相對(duì)表達(dá)量進(jìn)行比較。定量PCR于美國(guó)ABI 型Q5熒光定量qPCR儀上進(jìn)行,反應(yīng)體系按SYBR?Green PCR Master Mix(cat. #RR820A,TaKaRa)說明書進(jìn)行。PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性30 s;94 ℃ 5 s,60 ℃保持30 s,95 ℃延伸15 s,60 ℃ 1 min,95 ℃ 15 s,42個(gè)循環(huán)。在默認(rèn)條件下讀取CT值。計(jì)算2-△△CT值,進(jìn)行相對(duì)表達(dá)量分析,每個(gè)發(fā)育期樣品基因表達(dá)量為3種生物學(xué)重復(fù)的平均值。
1.2.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析 實(shí)驗(yàn)所得數(shù)據(jù)用DPS數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)和Excel進(jìn)行整理、統(tǒng)計(jì)、分析和繪圖。
在果實(shí)不同發(fā)育時(shí)期果皮花青苷含量變化結(jié)果如圖1,在花后150 d時(shí)的外觀表型見圖2。紅肉蘋果夏紅肉果皮花青苷含量在盛花后30 d達(dá)到最高,其含量為135.732 mg/g,隨后開始下降,在90 d時(shí)降至最低,然后持續(xù)上升,在盛花后150 d時(shí)其花青苷含量再次有明顯升高;克孜阿爾瑪果皮花青苷含量變化趨勢(shì)與夏紅肉相同;紅色之愛果皮花青苷含量在盛花后60 d達(dá)到最高,其含量為88.840 mg/g,而后持續(xù)降低,在120 d時(shí)達(dá)到最低,在150 d時(shí)有所回升。在盛花后30 d時(shí),夏紅肉與克孜阿爾瑪花青苷含量存在顯著差異;盛花后60 d,紅色之愛與夏紅肉、克孜阿爾瑪?shù)幕ㄇ嘬蘸看嬖陲@著差異;盛花后90、120 d這3個(gè)品種之間互相存在顯著差異;盛花后150 d夏紅肉、紅色之愛與克孜阿爾瑪存在顯著性差異。
圖1 3種蘋果品種不同發(fā)育時(shí)期果皮花青苷含量
圖2 3種紅肉蘋果品種花后150 d時(shí)的外觀表型
對(duì)3種蘋果不同發(fā)育時(shí)期果皮花青苷合成結(jié)構(gòu)基因進(jìn)行qRT-PCR分析,結(jié)果(圖3)表明:在6個(gè)結(jié)構(gòu)基因中F3H在3種蘋果盛花后90 d和120 d的表達(dá)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于其他5個(gè)結(jié)構(gòu)基因的表達(dá)量。結(jié)構(gòu)基因CHI在夏紅肉果實(shí)發(fā)育的后4個(gè)時(shí)期表達(dá)量都高于其他品種,其次是紅色之愛、克孜阿爾瑪。結(jié)構(gòu)基因CHS在各紅肉蘋果發(fā)育的各個(gè)時(shí)期表達(dá)量呈升高、降低再回升的趨勢(shì),總體上,在盛花后60 d表達(dá)量達(dá)到最高,在盛花后120 d表達(dá)量最低。結(jié)構(gòu)基因UFGT、DFR、F3H在紅色之愛盛花后120 d的表達(dá)量都大幅度高于其他各品種,同時(shí)這3個(gè)基因在夏紅肉盛花后90 d的表達(dá)量都高于其他時(shí)期,其中結(jié)構(gòu)基因DFR在紅色之愛盛花后150 d表達(dá)量最高。結(jié)構(gòu)基因F3H在夏紅肉盛花后90 d表達(dá)量最高,約為紅色之愛、克孜阿爾瑪?shù)?~73倍。在6個(gè)結(jié)構(gòu)基因中除UFGT、DFR、CHS外,其他3個(gè)基因在紅肉蘋果克孜阿爾瑪果實(shí)發(fā)育的后3個(gè)時(shí)期的表達(dá)量都低于其他兩種紅肉蘋果。
圖3 3種蘋果品種果實(shí)不同發(fā)育時(shí)期果皮花青苷合成結(jié)構(gòu)基因的相對(duì)表達(dá)量
對(duì)3種蘋果不同發(fā)育時(shí)期果皮花青苷合成轉(zhuǎn)錄因子進(jìn)行qRT-PCR分析,結(jié)果(圖4)表明,轉(zhuǎn)錄因子MYB10的表達(dá)量遠(yuǎn)高于其他轉(zhuǎn)錄因子。在各紅肉蘋果盛花后60 d與150 d轉(zhuǎn)錄因子bLHL3與TTG1的表達(dá)量整體低于其他3個(gè)時(shí)期,這兩種轉(zhuǎn)錄因子在紅色之愛盛花后120 d的表達(dá)量達(dá)到最高,大幅度高于其他品種和其它時(shí)期;紅色之愛盛花后90 d轉(zhuǎn)錄因子bHLH33的表達(dá)量達(dá)到最高且大幅度高于其他各品種。在克孜阿爾瑪與夏紅肉發(fā)育全部時(shí)期4種轉(zhuǎn)錄因子的變化趨勢(shì)都呈先降低再升高再降低的趨勢(shì),在紅色之愛發(fā)育的各個(gè)時(shí)期呈先升高再降低的趨勢(shì)。
圖4 3種蘋果品種果實(shí)不同發(fā)育時(shí)期果皮花青苷合成相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子的相對(duì)表達(dá)量
花青苷作為植物重要的色素之一,對(duì)果皮色澤影響重大[15]。夏紅肉果皮和克孜阿爾瑪?shù)墓ぴ谑⒒ê?0 d花青苷含量達(dá)到最高,其次是紅色之愛果皮在盛花后60 d花青苷含量達(dá)到最高;隨著果實(shí)的生長(zhǎng)發(fā)育,各個(gè)品種的花青苷含量開始下降,下降至最低后持續(xù)上升,至150 d再次大幅度增高。孫曉紅[16]研究發(fā)現(xiàn)紅肉蘋果果實(shí)在盛花后30 d花青苷含量達(dá)到最高,隨著紅肉蘋果成熟度的增加果實(shí)中花青苷含量開始降低,但部分品種在120 d和150 d果實(shí)花青苷含量有所回升,這與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果基本一致。
花青苷在植物特定位置上的表達(dá)水平是由結(jié)構(gòu)基因和調(diào)控基因共同控制的,經(jīng)過試驗(yàn)、數(shù)據(jù)等分析發(fā)現(xiàn),新疆紅肉蘋果夏紅肉花青苷含量在盛花后150 d時(shí)有明顯升高,而結(jié)構(gòu)基因在克孜阿爾瑪、夏紅肉盛花后120 d與150 d時(shí)表達(dá)量有明顯升高。結(jié)構(gòu)基因除F3H外,其他基因UFGT、ANS、DFR、CHI、CHS的表達(dá)量在各個(gè)處理之間差異較小,結(jié)構(gòu)基因F3H在夏紅肉盛花后90 d的表達(dá)量遠(yuǎn)高于其他品種,在盛花后120 d在紅色之愛中的表達(dá)量遠(yuǎn)高于其他品種。結(jié)構(gòu)基因轉(zhuǎn)錄因子MYB10在克孜阿爾瑪和紅色之愛盛花后120 d的表達(dá)量遠(yuǎn)高于其他品種。轉(zhuǎn)錄因子bHLH33在紅色之愛盛花后90 d的表達(dá)量遠(yuǎn)高于其他品種;bLHL3在紅色之愛盛花后120 d的表達(dá)量達(dá)到最高。因此,紅色之愛果皮花青苷含量與結(jié)構(gòu)基因F3H以及轉(zhuǎn)錄因子MYB10、bLHLH33的高水平表達(dá)有關(guān),說明新疆紅肉蘋果花青苷的合成與其結(jié)構(gòu)基因F3H、CHI關(guān)系密切,而其調(diào)控可能是由轉(zhuǎn)錄因子MYB10起主導(dǎo)作用,轉(zhuǎn)錄因子bHLH33和TTG1為主要協(xié)助,bHLH3轉(zhuǎn)錄因子作為次要協(xié)助。然而宋楊等[17]在研究中發(fā)現(xiàn)澤西越桔果皮中花青苷含量與CHS、F3H和UFGT的關(guān)系更為密切,在越桔花青苷合成過程中可能起更加重要的作用。而孫曉紅等[18]的研究結(jié)果認(rèn)為導(dǎo)致紅勛5號(hào)和新疆1號(hào)紅肉蘋果花青苷含量高的主要原因可能是具有R6R6啟動(dòng)子基因型和高水平表達(dá)的ANS、UFGT基因及MYB10、TTG1、bHLH33轉(zhuǎn)錄因子。前人對(duì)花青苷的研究結(jié)果都存在著多多少少的差異,也正是這些差異說明果皮紅色性狀的調(diào)控機(jī)制非常復(fù)雜,具體機(jī)制的明確則需要更專業(yè)更深入的研究和實(shí)踐。
本試驗(yàn)研究結(jié)果表明:夏紅肉果皮和克孜阿爾瑪果皮中的花青苷含量變化趨勢(shì)相同,在盛花后30 d花青苷含量均達(dá)到最高,然后持續(xù)下降至最低,在盛花后150 d其含量再次有明顯升高;紅色之愛果皮花青苷含量在盛花后60 d達(dá)到最高;結(jié)構(gòu)基因F3H、CHI與轉(zhuǎn)錄因子MYB10、bLHLH33的高水平表達(dá)對(duì)花青苷合成有促進(jìn)作用。