彭 湃,楊 軍,羅 琴,邱 勇
神經膠質瘤是常見的顱內惡性腫瘤,易擴散至腦組織,具有高度異質性和侵襲性,單純手術難以根治性切除,放化療成為其常見治療方式;但放療不敏感可導致局部放療失敗,因此,研究神經膠質瘤放療不敏感機制,尋找提高放療敏感性藥物對該病的治療具有重要意義[1-2]。右美托咪定(DEX)是一種α2-腎上腺受體激動劑,具有抗腫瘤、抗炎、抗氧化等生物學活性作用[3]。蔡明林等[4]報道,DEX可抑制骨肉瘤細胞的增殖、侵襲、遷移, 作用機制可能與抑制第10號染色體缺失的磷酸酶及張力蛋白同源物基因(PTEN)/磷脂酰肌醇-3-激酶(PI3K)/蛋白激酶B(Akt)通路激活有關,但DEX對神經膠質瘤細胞的放療不敏感作用機制尚不清楚。
自噬是一種溶酶體依賴性降解途徑,在參與細胞生長分化、維持細胞內環(huán)境穩(wěn)定等過程中發(fā)揮重要作用。研究表明,激活腫瘤細胞自噬,可增強腫瘤細胞放療敏感性[5]。PTEN/Akt/哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)通路對腫瘤細胞增殖、遷移、自噬、放療耐受等具有重要作用[6-7]。楊永祥等[8]報道,抑制PTEN的表達,Akt、mTOR的磷酸化水平升高,可增加創(chuàng)傷性腦損傷大鼠海馬區(qū)神經干細胞增殖能力,表明PTEN/Akt/mTOR信號通路與神經細胞的增殖有關。本研究探究了DEX對神經膠質瘤U251細胞自噬與放療敏感性影響,明確分子作用機制,旨在為神經膠質瘤的放療增敏提供一定參考。
1.1實驗細胞、試劑及儀器 神經膠質瘤U251細胞(批號XLD-2020013)購自中國科學院生物化學與細胞生物學研究所;DEX(批號090119,規(guī)格2 ml:0.2 mg)購自江蘇恩華藥業(yè)股份有限公司;二甲基亞砜(DMSO,批號D8371)、膜聯(lián)蛋白V-異硫氰酸熒光素(Annexin V-FITC)/碘化丙啶(PI)細胞凋亡檢測試劑盒(批號CA1027)、四甲基偶氮唑藍(MTT)試劑盒(批號F5013)均購自北京索萊寶科技有限公司;DMEM培養(yǎng)液(批號G1037)、胎牛血清(批號G6113)均購自美國Gibco公司;BCA試劑盒(批號P0042)、ECL試劑盒(批號ST1297-10)、RIPA裂解液(批號P0125F)、硝酸纖維素膜(批號SF1917)均購自上海碧云天生物技術有限公司;小鼠抗人微管相關蛋白1輕鏈3(LC3,批號sc-430752)、自噬相關蛋白(Beclin-1,批號sc-141273)、PTEN(批號sc-305572)、Akt(批號sc-20983)、p-Akt,(批號sc-20987)、mTOR(批號sc-713395)、p-mTOR(批號sc-713340)、β-肌動蛋白(β-actin,批號sc-11004)抗體及兔抗人二抗(批號sc-10007)均購自美國Santa Cruz公司;371型二氧化碳(CO2)恒溫培養(yǎng)箱、Multiskan GO型酶標儀和E-Gel Imager型凝膠成像儀均購自美國Thermo公司;FACSCantoⅡ型流式細胞儀購自美國BD Biosciences公司。
1.2細胞培養(yǎng) 將神經膠質瘤U251細胞活化后,用含有10%胎牛血清、青霉素與鏈霉素各1×105U/L的DMEM培養(yǎng)液,在37℃恒溫、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),隔天換液1次,待80%細胞貼壁融合時,0.25%胰酶消化,取對數(shù)期細胞進行后續(xù)實驗。
1.3MTT法檢測DEX對細胞增殖的影響 取對數(shù)生長期U251細胞,調整細胞濃度為每毫升2×106個,將細胞接種于96孔板中,培養(yǎng)過夜,分別加入終濃度為5、10、25、50、100、200、500 ng/ml的DEX,另設對照組(不加DEX處理),每組均設6個復孔,繼續(xù)培養(yǎng)24、48 h。每孔加入20 μl的MTT溶液(濃度為0.5 mg/L),培養(yǎng)4 h后,加入200 μl的DMSO,用全自動酶標儀測量490 nm處的光密度(OD)值。
1.4細胞放療處理 將培養(yǎng)板置于照射野(20 cm×20 cm)內,細胞板上放置1.5 cm硅膠補償膜,采用6 MV直線加速器X射線進行照射,直線加速器6 MV-X線照射,吸收劑量率為250 cGy/min,總照射劑量分別為 0、2、4、6、8 Gy。
1.5克隆形成實驗 放療組給予0、2、4、6、8 Gy劑量的X射線照射處理;DEX+放療組給予10 ng/ml DEX和0、2、4、6、8 Gy劑量的X射線照射處理。DEX+放療組在照射前采用DEX培養(yǎng)48 h,放射處理后,更換新鮮培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)10 d,每3天更換培養(yǎng)基,觀察克隆形成情況,當培養(yǎng)板中出現(xiàn)集落形成時,棄去培養(yǎng)液,PBS緩沖液洗滌,多聚甲醛固定,0.1%結晶紫染色,計算細胞克隆形成率,克隆形成率=(菌落形成數(shù)/接種細胞數(shù))×100%。
1.6流式細胞術檢測細胞凋亡 實驗分為對照組、放療組(6 Gy劑量射線處理)、DEX組(10 ng/ml DEX處理)、DEX+放療組(10 ng/ml DEX+6 Gy劑量射線聯(lián)合處理)。細胞照射前采用10 ng/ml DEX培養(yǎng)48 h,再用6 Gy劑量的X射線照射處理,各組細胞培養(yǎng) 48 h,采用Annexin V-FITC 和PI溶液避光染色10 min,上流式細胞儀檢測細胞凋亡。
1.7蛋白免疫印跡法檢測細胞自噬相關蛋白LC3、Beclin-1及PTEN/Akt/mTOR通路相關蛋白的表達 按照1.6的分組,細胞培養(yǎng)48 h后,4℃條件下加RIPA裂解液處理各組細胞,抽提總蛋白,BCA試劑盒檢測蛋白含量,取50 μg蛋白并加入5×上樣緩沖液,100℃沸水浴5 min,-20℃保存。聚丙烯酰胺凝膠電泳后,將凝膠上的目的蛋白轉移到硝酸纖維素膜上,50 g/L的脫脂牛奶室溫封閉1.5 h,加入一抗(LC3、Beclin-1、PTEN、Akt、p-Akt、mTOR、p-mTOR、β-actin)(稀釋比均為1∶1000),4 ℃孵育過夜,加入二抗(1∶3000),室溫孵育2 h,PBS緩沖液洗滌,ECL顯影液顯色,用凝膠成像系統(tǒng)拍照并分析各蛋白相對表達量。
2.1DEX對U251細胞增殖的影響 與DEX濃度0 ng/ml時比較,5、10、25、50、100、200、500 ng/ml DEX處理U251細胞24、48 h的OD值均降低(P<0.05)。經計算DEX處理U251細胞24 h半數(shù)抑制濃度(IC50)約為50 ng/ml,后續(xù)實驗采用20%×IC50為研究濃度,即10 ng/ml。見表1。
表1 不同濃度DEX處理后U251細胞不同時間點的OD值比較
2.2DEX對U251細胞放療克隆形成率的影響 與放療組0 Gy時比較,放射劑量2、4、6、8 Gy時U251細胞克隆形成率明顯降低,且與放療劑量增加相關(P<0.05)。與 DEX+放療組0 Gy比較,放射劑量2、4、6、8 Gy的U251細胞克隆形成率明顯降低,且與放療劑量增加相關(P<0.05)。DEX+放療組各放射劑量U251細胞克隆形成率均低于放療組同劑量,其中10 ng/ml DEX和6 Gy放射劑量聯(lián)用后,能夠明顯增加對U251細胞的放療敏感性(P<0.05)。見表2。因此,本研究采用10 ng/ml的DEX與6 Gy放射劑量聯(lián)合處理進行后續(xù)實驗。
表2 DEX對U251細胞放療克隆形成率影響
2.3DEX對U251細胞放療凋亡的影響 4組細胞凋亡率分別為:對照組(3.63±0.09)%、放療組(15.64±1.58)%、DEX組(24.32±1.69)%、DEX+放療組(36.35±2.18)%。放療組細胞凋亡率高于對照組(P<0.05);DEX+放療組細胞凋亡率高于放療組(P<0.05)。見圖1。
圖1 流式細胞儀檢測4組U251細胞凋亡情況
2.4DEX對自噬蛋白LC3、Beclin-1蛋白表達的影響 與對照組比較,放療組、DEX組和DEX+放療組LC3、Beclin-1蛋白表達水平均升高(P<0.05);與放療組比較,DEX+放療組LC3、Beclin-1蛋白表達水平均升高(P<0.05)。見圖2、表3。
圖2 4組細胞LC3、Beclin-1蛋白免疫印跡圖
表3 DEX對U251細胞自噬蛋白LC3、Beclin-1蛋白表達的影響
2.5DEX對神經膠質瘤細胞PTEN/Akt/mTOR通路相關蛋白的影響 與對照組比較,放療組、DEX組和DEX+放療組PTEN蛋白水平升高,Akt、mTOR蛋白磷酸化水平均降低(P<0.05)。與放療組比較,DEX+放療組PTEN蛋白水平升高,Akt、mTOR蛋白磷酸化水平均降低(P<0.05)。見圖3、表4。
圖3 4組神經膠質瘤細胞PTEN/Akt/mTOR通路相關蛋白免疫印跡圖
表4 DEX對神經膠質瘤細胞PTEN/Akt/mTOR通路相關蛋白的影響
DEX具有鎮(zhèn)靜、鎮(zhèn)痛、抗焦慮、抗交感及減弱應激等多重作用,臨床上常用于神經系統(tǒng)的鎮(zhèn)定[9]。近年研究表明,DEX能夠抑制腫瘤細胞增殖、遷移,誘導細胞凋亡[10]。本研究結果顯示,5~500 ng/ml的DEX對神經膠質瘤U251細胞的增殖均有抑制作用,且隨DEX濃度增大,對U251細胞抑制作用增強,經計算DEX對U251細胞IC50約為50 ng/ml。文獻報道,放射增敏劑較小劑量即有放射增敏的作用,但增敏劑本身對腫瘤組織作用不強[11],因此選用IC50的20%進行增敏實驗。本試驗發(fā)現(xiàn),分別使用放射劑量為2、4、6、8 Gy的X射線處理U251細胞后,細胞克隆形成率降低,與DEX聯(lián)合處理后,U251細胞克隆形成率明顯降低;與放療組比較,DEX與6 Gy放射劑量聯(lián)合處理,細胞克隆形成率明顯降低,細胞凋亡率增加,能夠明顯增加對U251細胞的放療敏感性,然而其具體作用機制尚不清楚。
自噬廣泛存在于真核生物中,維持細胞內穩(wěn)態(tài)和生長發(fā)育,對腫瘤細胞有雙刃劍的作用,具有促存活及凋亡的作用,并且能夠影響腫瘤的抗放療損傷能力[12]。LC3是自噬小體標志蛋白,Beclin-1 是抑癌基因表達的產物,二者均是自噬相關標志物[13-14]。本研究結果顯示,與對照組比較,放療組LC3、Beclin-1蛋白水平均顯著升高,提示放療能誘導U251細胞的自噬;與放療組比較,DEX+放療組LC3、Beclin-1蛋白水平均顯著升高,提示DEX可增加放療對神經膠質瘤細胞自噬作用。
PI3K/Akt通路是細胞內重要的信號傳導通路,PTEN通過調控PI3K/Akt通路去磷酸化,發(fā)揮抑制腫瘤的功能[15]。Akt/mTOR通路是調控自噬的經典通路,mTOR是一種自噬激活劑,抑制mTOR途徑可激活自噬,Akt是其上游的調控分子,Akt磷酸化可激活下游通路[16-17]。研究表明,在放射低敏感性食管鱗狀細胞癌中,抑制Akt的磷酸化,可增加腫瘤細胞放療敏感性[18]。何娟等[19]報道DEX能夠抑制膠質瘤細胞內Akt信號通路抑制膠質瘤細胞U251體外惡性生長和侵襲。本研究結果顯示,與對照組比較,放療組PTEN蛋白水平顯著升高,Akt、mTOR蛋白磷酸化水平均顯著降低;與放療組比較,DEX+放療組PTEN蛋白水平顯著升高,Akt、mTOR蛋白磷酸化水平均顯著降低,提示DEX與放療聯(lián)合作用時可抑制PTEN/Akt/mTOR信號通路的活化。
綜上所述,DEX可能通過抑制PTEN/Akt/mTOR通路,誘導神經膠質瘤U251細胞發(fā)生自噬,增加U251細胞放療的敏感性。