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    暹羅芽孢桿菌LW-1產(chǎn)γ-聚谷氨酸發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化

    2021-09-02 06:44:42蔡亞慧王文玉皇高峰張繼冉徐淑霞張世敏
    食品工業(yè)科技 2021年16期
    關(guān)鍵詞:谷氨酸鈉檸檬酸鈉氮源

    蔡亞慧,王 青,王文玉,皇高峰,張繼冉,徐淑霞,張世敏,吳 坤

    (河南農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河南鄭州 450002)

    γ-聚谷氨酸(γ-polyglutamic acid,γ-PGA)是由D-谷氨酸、L-谷氨酸單體通過(guò)γ-羧基與α-氨基間的γ-酰胺鍵聚合而成的一種天然同聚物,它的分子量為1~200萬(wàn)[1]。γ-PGA的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)使它具有可在水中溶解、可生物降解[2]、可吸附重金屬離子及對(duì)環(huán)境友好的性[3]質(zhì),因此在日化、食品、醫(yī)藥、環(huán)保、農(nóng)業(yè)等領(lǐng)域中被廣泛應(yīng)用[4?6]。

    目前,γ-PGA的生產(chǎn)以微生物發(fā)酵法為主,因其相對(duì)于化學(xué)合成法和提取法,具有周期短、生產(chǎn)條件簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn),但由于微生物發(fā)酵的產(chǎn)出率不高,這限制了γ-PGA的大規(guī)模使用[7?8]?,F(xiàn)階段主要通過(guò)基因工程的手段改造菌株和優(yōu)化發(fā)酵培養(yǎng)基條件來(lái)提高γ-PGA的產(chǎn)量,但因調(diào)控γ-PGA代謝的基因眾多,單個(gè)基因的敲除、敲入或過(guò)度表達(dá)時(shí)細(xì)胞內(nèi)的代謝易造成紊亂[9?11];而培養(yǎng)基成分、前體和培養(yǎng)條件明顯影響γ-PGA的產(chǎn)量,尤其是γ-PGA的產(chǎn)量和性質(zhì)都受到培養(yǎng)基成分的直接影響;因此優(yōu)化菌種發(fā)酵γ-PGA時(shí)的培養(yǎng)基是提高工業(yè)發(fā)酵中γ-PGA產(chǎn)量的重要手段[12?13];王德新、Kongklom、張超及張慧麗等人對(duì)Bacillus subtilis、Bacillus licheniformis的發(fā)酵培養(yǎng)基成分進(jìn)行優(yōu)化,使γ-PGA的產(chǎn)量得到大幅度的提高,甚至達(dá)到36.5 g/L[14?17]。應(yīng)用γ-PGA發(fā)酵培養(yǎng)基發(fā)酵的微生物多為枯草芽孢桿菌(Bacillus suhtilis)、解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)、地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis)[18],而關(guān)于暹羅芽孢桿菌(Bacillus siamese)發(fā)酵生產(chǎn)γ-PGA的文章目前較少。王德新等分別通過(guò)優(yōu)化培養(yǎng)條件和分批補(bǔ)料發(fā)酵的方法使Bacillus siamensisSB1001和Bacillus siamensisIR10發(fā)酵γ-PGA的產(chǎn)量分別達(dá)到了25.22 g/L和(41.40±2.01)g/L[19?20]。

    本實(shí)驗(yàn)室前期從污水中分離篩選得到一株γ-PGA的高產(chǎn)菌株,鑒定后將其命名為暹羅芽孢桿菌LW-1菌株,本實(shí)驗(yàn)用響應(yīng)面法系統(tǒng)的對(duì)暹羅芽孢桿菌產(chǎn)γ-PGA的發(fā)酵培養(yǎng)基成分進(jìn)行優(yōu)化,進(jìn)一步提高γ-PGA產(chǎn)量,為該菌株的工廠發(fā)酵及γ-PGA的大規(guī)模應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    暹羅芽孢桿菌(Bacillus siamese)LW-1由本實(shí)驗(yàn)室選育、保藏;MgSO4·7H2O、CaCl2、KH2PO4·3H2O、NaCl、FeCl3·6H2O、蔗糖、甘油、葡萄糖、麥芽糖、HCl、氯化銨、尿素、MnSO4、淀粉、牛肉膏、無(wú)水乙醇、蛋白胨、玉米芯 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;谷氨酸標(biāo)品Alfa Aesar(中國(guó))公司;胰蛋白胨粉、酵母浸粉、瓊脂粉 英國(guó)Oxoid公司;谷氨酸鈉 河南蓮花味精股份有限公司。

    MQL-61R立式全溫振蕩培養(yǎng)箱 上海宜電科學(xué)儀器有限公司;DH-500A電加熱恒溫培養(yǎng)箱 北京中興偉業(yè)儀器有限公司;2695XE高效液相色譜儀美國(guó)Waters公司;SJ-CJ-2FD雙人單面清潔工作臺(tái) 蘇杰集團(tuán)有限公司;YXQ-LS-50SII立式壓力蒸汽滅菌器 上海工業(yè)醫(yī)療設(shè)備廠;101-2A電加熱鼓風(fēng)干燥箱 天津市泰西儀器有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 培養(yǎng)基配制 種子培養(yǎng)基(g/L):酵母粉5,胰蛋白胨10,氯化鈉10;基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):谷氨酸鈉40,檸檬酸鈉12,MgSO4·7H2O 0.5,甘油30,(NH4)2SO49,KH2PO40.5,F(xiàn)eCl3·6H2O 0.06,MnSO40.1,CaCl20.15,上述培養(yǎng)基在p H7.5,121℃,0.1 MPa條件下滅菌20 min[21]。

    1.2.2 菌種的培養(yǎng)

    1.2.2.1 種子培養(yǎng) 甘油管中保藏的菌種接到種子培養(yǎng)基(10 mL/50 mL三角瓶)中,接種量為2%,在培養(yǎng)溫度為37℃的,轉(zhuǎn)速為180 r/min條件下激活并培養(yǎng)12 h;然后按相同的接種量將活化菌株接種到種子培養(yǎng)基(50 mL/250 mL)中,在相同的條件下擴(kuò)增培養(yǎng)12 h[20]。

    1.2.2.2 發(fā)酵培養(yǎng) 把種子液接種到基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基(60 mL /250 mL三角瓶)中,接種量為2%,在37℃的培養(yǎng)溫度,210 r/min的轉(zhuǎn)速下?lián)u瓶發(fā)酵48 h。

    1.2.3 發(fā)酵培養(yǎng)基單因素實(shí)驗(yàn) 葡萄糖、麥芽糖、淀粉、甘油和蔗糖分別被用作初始發(fā)酵培養(yǎng)基中的碳源,在2%接種量下發(fā)酵48 h。測(cè)定γ-PGA產(chǎn)量,確定最佳碳源,然后對(duì)最佳碳源的濃度(10、30、50、70、90、110、130 g/L)進(jìn)行考察;在最適碳源條件下,以氯化銨、尿素、牛肉膏、硫酸銨、蛋白胨、玉米芯、酵母粉分別作為氮源,確定最佳氮源;然后對(duì)最佳氮源的濃度(3、5、7、9、11、13、15 g/L)進(jìn)行考察;在最適碳氮源條件下對(duì)谷氨酸鈉的濃度(0、10、20、30、40、50、60、70 g/L)進(jìn)行優(yōu)化;在上述最適條件下對(duì)檸檬酸鈉的濃度(4、6、8、10、12 g/L)進(jìn)行優(yōu)化;接著分別對(duì)磷酸二氫鉀濃度(0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 g/L)、硫酸鎂濃度(0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0 g/L)、硫酸錳濃度(0、0.05、0.10、0.15、0.20、0.25 g/L)、氯化鈣濃度(0、0.075、0.150、0.225、0.300 g/L)和三氯化鐵濃度(0、0.02、0.04、0.06、0.08、0.10 g/L)進(jìn)行優(yōu)化。

    1.2.4 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    1.2.4.1 Plackett-Burman設(shè)計(jì) 基于前期單因素實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,以γ-PGA(g/L)產(chǎn)量為響應(yīng)值,考察發(fā)酵培養(yǎng)基中的九個(gè)組分對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響。利用軟件Design-Expert 10.0設(shè)計(jì)試驗(yàn),每個(gè)因素選取高低(+1,?1)兩種水平,各因素水平見(jiàn)表1。

    表1 Plackett-Burman試驗(yàn)的因素與水平Table 1 Factors and levels of Plackett-Burman design

    1.2.4.2 最陡爬坡實(shí)驗(yàn) 主效應(yīng)基于PBD的結(jié)果,系數(shù)估計(jì)值為正的因子選高值,系數(shù)估計(jì)值為負(fù)的因子選低值[22];響應(yīng)面分析的中心點(diǎn)為γ-PGA產(chǎn)量(g/L)最高的組。

    1.2.4.3 Box-Behnken試驗(yàn) 使用響應(yīng)面方法進(jìn)一步優(yōu)化PBD確定的三個(gè)最值得注意的因素,其他因子的濃度與單因素實(shí)驗(yàn)的結(jié)果一致。利用軟件Design-Expert 10.0設(shè)計(jì)三因素三水平的響應(yīng)面試驗(yàn),總共由17個(gè)實(shí)驗(yàn)組成,包括有5個(gè)中心點(diǎn)。自變量為谷氨酸鈉、檸檬酸鈉和硫酸鎂,響應(yīng)值為γ-PGA(g/L)產(chǎn)量,實(shí)驗(yàn)因素的水平見(jiàn)表2。

    表2 Box-Behnken實(shí)驗(yàn)因素水平Table 2 Factors and levelsof Box-Behnken design

    1.2.5γ-PGA含量的測(cè)定 把搖瓶里發(fā)酵液的p H調(diào)至3左右,8000 r/min離心30 min,收集上清液將其調(diào)回原pH;取適量的上清液,加入4倍體積的無(wú)水乙醇并混勻,在4℃下靜置過(guò)夜(12 h);6000 r/min離心15 min,得到沉淀,加入適量的超純水使沉淀復(fù)溶,透析脫鹽后,置于?80℃下冷凍干燥,最后對(duì)提取物稱(chēng)重即得γ-PGA的產(chǎn)量[21]。

    1.3 數(shù)據(jù)分析

    使用Microsoft Excel 2016和SPSS 20.0來(lái)處理分析試驗(yàn)數(shù)據(jù),利用Design-Expert 10處理PB實(shí)驗(yàn)和Box-Behnken實(shí)驗(yàn)的結(jié)果繪制出相關(guān)圖表,并使用Origin·Pro 9.0進(jìn)行制圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    2.1.1 不同碳源及碳源濃度對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響微生物自身的生長(zhǎng)及產(chǎn)物的積累與培養(yǎng)基中碳源的種類(lèi)與濃度密切相關(guān),因此合適的碳源對(duì)于γ-PGA的積累起著正向作用[23]。在初始發(fā)酵培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,比較不同種類(lèi)的碳源對(duì)暹羅芽孢桿菌LW-1發(fā)酵生產(chǎn)γ-PGA的影響,結(jié)果如圖1所示,從圖中可知,當(dāng)甘油作為碳源時(shí),γ-PGA產(chǎn)量最高為24.52 g/L,和其它碳源相比存在顯著性差異(P<0.05)。

    圖1 不同碳源對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響Fig.1 Effects of carbon sources on the yield of γ-PGA

    對(duì)甘油的最適濃度進(jìn)行研究,結(jié)果如圖2所示,甘油濃度小于30 g/L時(shí),隨著甘油濃度的升高,γ-PGA的產(chǎn)量增加,甘油濃度處于30 g/L時(shí),γ-PGA產(chǎn)量最高為24.82 g/L,而后隨著甘油濃度的增加,γ-PGA的產(chǎn)量降低;這可能是高濃度的碳源導(dǎo)致了發(fā)酵液的滲透壓上升,從而抑制了菌體的生長(zhǎng)與代謝,進(jìn)而抑制了γ-PGA的合成[24]。因此選取濃度為30 g/L的甘油作為碳源。

    圖2 甘油濃度對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響Fig.2 Effects of glycerol concentration on the yield of γ-PGA

    2.1.2 不同氮源及氮源濃度對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響在最適碳源的條件下,比較不同種類(lèi)的氮源對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響,結(jié)果如圖3所示,從圖中可知,當(dāng)無(wú)機(jī)類(lèi)的氮作為氮源時(shí),如:(NH4)2SO4、尿素,γ-PGA產(chǎn)量顯著高于有機(jī)類(lèi)的氮(牛肉膏、酵母粉、蛋白胨)作為氮源時(shí)的產(chǎn)量(P<0.05),這與Wan-Tack Ju研究的B.subtilisMJ80的結(jié)果相似,表明暹羅芽孢桿菌LW-1利用無(wú)機(jī)氮源的能力強(qiáng),可能因無(wú)機(jī)氮源的結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單更易被菌體利用[25];當(dāng)(NH4)2SO4作為氮源時(shí),γ-PGA的產(chǎn)量達(dá)到最高為24.53 g/L。

    圖3 不同氮源對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響Fig.3 Effects of different nitrogen sources on the yield of γ-PGA

    (NH4)2SO4的濃度對(duì)暹羅芽孢桿菌合成γ-PGA時(shí)的影響,結(jié)果如圖4所示,從圖中可知:γ-PGA的產(chǎn)量隨(NH4)2SO4濃度的增加而增加,(NH4)2SO4濃度為13 g/L時(shí),γ-PGA的產(chǎn)量最大為26.10 g/L,此后γ-PGA的產(chǎn)量變化不大;可能由于在發(fā)酵初期,菌體濃度較大,氮源濃度加大時(shí),菌體與氮源接觸較充分,發(fā)酵反應(yīng)比較充分,但隨著反應(yīng)的進(jìn)行,菌體進(jìn)入衰亡期,即使增加(NH4)2SO4,發(fā)酵反應(yīng)程度也會(huì)降低[26],因此選取13 g/L的(NH4)2SO4較為合適。

    圖4 (NH4)2SO4濃度對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響Fig.4 Effects of (NH4)2SO4 concentration on the yield of γ-PGA

    2.1.3 不同濃度的谷氨酸鈉對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響因大多數(shù)產(chǎn)γ-PGA的菌株為谷氨酸依賴(lài)型菌株,谷氨酸鈉的濃度對(duì)γ-PGA產(chǎn)量有著重要的作用[21]。從圖5可以看出,谷氨酸鈉的濃度在10~60 g/L時(shí),γ-PGA的產(chǎn)量隨著谷氨酸鈉含量的增加而增大,谷氨酸鈉的濃度為60 g/L時(shí),γ-PGA的產(chǎn)量最大為30.42 g/L,此后γ-PGA的產(chǎn)量開(kāi)始降低,這說(shuō)明谷氨酸鈉的濃度過(guò)高時(shí)不利于γ-PGA的合成;可能由于谷氨酸鈉與γ-PGA的結(jié)構(gòu)類(lèi)似,當(dāng)濃度過(guò)高時(shí)會(huì)對(duì)γ-PGA合成酶系產(chǎn)生反饋?zhàn)瓒?,從而抑制了?PGA的合成[27]。

    圖5 谷氨酸鈉濃度對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響Fig.5 Effectsof sodium glutamate concentration on the yield of γ-PGA

    2.1.4 不同濃度的檸檬酸鈉對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響谷氨酸依賴(lài)型菌株一般為多碳源形式[28],因此研究檸檬酸鈉的濃度對(duì)暹羅芽孢桿菌LW-1合成γ-PGA時(shí)的影響,從圖6可以看出,當(dāng)檸檬酸鈉的濃度小于10 g/L時(shí),隨著檸檬酸鈉濃度的增加,γ-PGA的產(chǎn)量增大,檸檬酸鈉濃度為10 g/L時(shí),γ-PGA的產(chǎn)量達(dá)到最大為31.61 g/L,此后γ-PGA的產(chǎn)量開(kāi)始降低,因此確定檸檬酸鈉的最適濃度為10 g/L。

    圖6 檸檬酸鈉的濃度對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響Fig.6 Effects of concentration of sodium citrate on the yield of γ-PGA

    2.1.5 無(wú)機(jī)鹽離子濃度優(yōu)化結(jié)果 無(wú)機(jī)鹽離子和微生物的生命活動(dòng)相關(guān),任何生命活動(dòng)的進(jìn)行都離不開(kāi)無(wú)機(jī)鹽離子,同樣無(wú)機(jī)鹽離子的濃度影響著γ-PGA的合成[29]。進(jìn)一步優(yōu)化基礎(chǔ)培養(yǎng)基中無(wú)機(jī)鹽離子的濃度,優(yōu)化結(jié)果見(jiàn)圖7A~圖7E。從圖中可知,無(wú)機(jī)鹽離子總體對(duì)γ-PGA產(chǎn)量影響的大致趨勢(shì)為γ-PGA的產(chǎn)量隨著無(wú)機(jī)鹽離子濃度的增加先升高后降低,最適濃度分別為:MgSO41.2 g/L、KH2PO41.0 g/L、CaCl20.075 g/L、FeCl30.06 g/L、MnSO40.1 g/L。

    圖7 無(wú)機(jī)鹽離子濃度對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響Fig.7 Effects of inorganic salt concentration on the yield of γ-PGA

    2.2 PIackett-Burman試驗(yàn)設(shè)計(jì)結(jié)果及分析

    基于單因素實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,采用Plackett-Burman設(shè)計(jì)(N=9)進(jìn)行試驗(yàn),響應(yīng)值為γ-PGA的產(chǎn)量(g/L)。PB實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及響應(yīng)值見(jiàn)表3(每組試驗(yàn)有3個(gè)重復(fù),取平均值)。試驗(yàn)水平、各因素的顯著性方差分析及效果分析見(jiàn)表4。該試驗(yàn)?zāi)P蚉=0.0044<0.01,這說(shuō)明該試驗(yàn)?zāi)P陀绊憳O顯著,決定系數(shù)R2=0.9990;校正系數(shù)R2Adj=0.9946,這表明該模型對(duì)于實(shí)驗(yàn)的重復(fù)是高度可靠的,各因素水平的設(shè)計(jì)較合理。谷氨酸鈉(A)和檸檬酸鈉(B)的P值分別為0.0006、0.0053(<0.01),說(shuō)明它們對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響極顯著;硫酸鎂(F)的P值為0.0210(<0.05),說(shuō)明它對(duì)γ-PGA產(chǎn)量有顯著影響。此外谷氨酸鈉、檸檬酸鈉和硫酸鎂的估計(jì)值均為正值,說(shuō)明它們對(duì)γ-PGA產(chǎn)量為顯著的正效應(yīng),且影響順序?yàn)楣劝彼徕c>檸檬酸鈉>硫酸鎂。因此選取谷氨酸鈉、檸檬酸鈉、硫酸鎂進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

    表3 Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 3 Design and resultsof Plackett-Burman experiments

    表4 Plackett-Burman實(shí)驗(yàn)水平及效果分析Table 4 Plackett-Burman experimental level and effect analysis

    2.3 最陡爬坡試驗(yàn)結(jié)果與分析

    基于Plackett-Burman實(shí)驗(yàn)的結(jié)果分析,選取谷氨酸鈉、檸檬酸鈉、硫酸鎂這三個(gè)因素進(jìn)行最陡爬坡試驗(yàn),由于谷氨酸鈉、檸檬酸鈉、硫酸鎂均對(duì)γ-PGA的合成起積極作用,因此取高水平,爬坡試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果見(jiàn)表5。從表中可看出,第八組實(shí)驗(yàn)γ-PGA的產(chǎn)量達(dá)到最高為45.71 g/L,因此將第八組每個(gè)因子的水平作為響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)的中心點(diǎn),即谷氨酸鈉84 g/L,檸檬酸鈉18 g/L,硫酸鎂2.1 g/L。

    表5 最陡爬坡實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 5 Steep climbing experimental design and results

    2.4 響應(yīng)面試驗(yàn)

    2.4.1 響應(yīng)面設(shè)計(jì)及結(jié)果 以谷氨酸鈉、檸檬酸鈉、硫酸鎂這三個(gè)因素的濃度為自變量,γ-PGA產(chǎn)量(g/L)為響應(yīng)值,以最陡爬坡實(shí)驗(yàn)的結(jié)果為依據(jù)設(shè)計(jì)一個(gè)三因素三水平的Box-Behnken實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果見(jiàn)表6,回歸模型系數(shù)的顯著性結(jié)果見(jiàn)表7。根據(jù)表6結(jié)果,運(yùn)用Design-Expert 10.0軟件對(duì)其進(jìn)行二次回歸分析,可得到的擬合回歸方程為:γ-PGA產(chǎn)量(g/L)= ?842.43099+4.62321X1+69.2414X2+63.00469X3+0.022478X1X2+0.40344X1X3?0.4015X2X3?0.033888X12?1.96048X22?21.5451X32。

    表6 Box-Behnken 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table6 Design and resultsof Box-Behnken experiments

    由表7可知,這個(gè)回歸模型的P值為0.003(<0.01),模型的失擬項(xiàng)P=0.0857(>0.05),表明該模型的誤差小、可信性高、數(shù)據(jù)擬合度較好;模型的決定系數(shù)R2=0.9283和校正系數(shù)R2Adj=0.8361,表明該模型的預(yù)測(cè)值與實(shí)際值吻合度較高,且83.61%的暹羅芽孢桿菌發(fā)酵產(chǎn)γ-PGA的模型可用該模型來(lái)解釋?zhuān)灰虼嗽撃P涂捎脕?lái)分析及預(yù)測(cè)暹羅芽孢桿菌產(chǎn)γ-PGA的最大值;此外該模型的一次項(xiàng)X1和二次項(xiàng)X12、X22都極顯著(P<0.01),表明各因素間對(duì)γ-PGA的影響并不是簡(jiǎn)單的線性關(guān)系。

    表7 Box-Behnken 結(jié)果的統(tǒng)計(jì)分析Table 7 Statistical analysis of Box-Behnken design experiments

    2.4.2 各因素交互作用分析 借助Design-Expert 10.0軟件繪制出相應(yīng)的響應(yīng)曲面圖與等高線圖(圖8~圖10),兩因素間交互作用的情況可用等高線圖直觀地表現(xiàn)出,等高線之間的輪廓越接近圓形,表明兩因素間的相互作用越不明顯,輪廓越接近橢圓形,表明兩因素間的相互作用越明顯[24]。在谷氨酸鈉、檸檬酸鈉和硫酸鎂選取的范圍內(nèi),γ-PGA產(chǎn)量存在最大值,由響應(yīng)曲面圖可知,隨著各因素濃度的增加,γ-PGA的產(chǎn)量先增加后減小,由圖8和圖9可知,谷氨酸鈉引起的響應(yīng)曲面坡度比檸檬酸鈉和硫酸鎂的更陡峭,表明谷氨酸鈉對(duì)暹羅芽孢桿菌LW-1發(fā)酵產(chǎn)γ-PGA的影響比檸檬酸鈉和硫酸鎂更大,從圖10可知,檸檬酸鈉引起的響應(yīng)曲面坡度比硫酸鎂的陡峭,表明檸檬酸鈉對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響比硫酸鎂更大;該響應(yīng)曲面圖(圖8~圖10)說(shuō)明了兩兩因素之間存在著交互作用,它們共同影響著γ-PGA的合成,但兩兩因素間的交互作用對(duì)γ-PGA產(chǎn)量的影響沒(méi)有顯著性。

    圖8 谷氨酸鈉和檸檬酸鈉對(duì)暹羅芽孢桿菌LW-1發(fā)酵產(chǎn)γ-PGA的影響Fig.8 Effects of sodium glutamateand sodium citrateon γ-PGA production from Bacillus siamese LW-1

    圖9 谷氨酸鈉和硫酸鎂對(duì)暹羅芽孢桿菌LW-1發(fā)酵產(chǎn)γ-PGA的影響Fig.9 Effects of sodium glutamate and magnesium sulfate on γ-PGA production from Bacillus siamese LW-1

    圖10 檸檬酸鈉和硫酸鎂的對(duì)暹羅芽孢桿菌LW-1發(fā)酵產(chǎn)γ-PGA的影響Fig.10 Effectsof sodium citrate and magnesium sulfate on γ-PGA production from Bacillus siamese LW-1

    2.4.3 最優(yōu)培養(yǎng)基的確定及驗(yàn)證 對(duì)擬合回歸方程中的自變量進(jìn)行分析求極值,可得到該模型中三因素的最佳值分別為:谷氨酸鈉86.709 g/L,檸檬酸鈉17.941 g/L,硫酸鎂2.107 g/L,在該發(fā)酵培養(yǎng)基中γ-PGA產(chǎn)量的理論最大值為45.91 g/L。

    為了驗(yàn)證預(yù)測(cè)值及回歸方程的精確性,按得出的最佳培養(yǎng)基配方:谷氨酸鈉86.71 g/L,檸檬酸鈉17.94 g/L,MgSO4·7H2O 2.11 g/L,甘油 25 g/L,KH2PO41.4 g/L,(NH4)2SO414 g/L,MnSO40.075 g/L,CaCl20.1 g/L,F(xiàn)eCl3·6H2O 0.04 g/L,進(jìn)行5次重復(fù)實(shí)驗(yàn),得到γ-PGA的產(chǎn)量為(44.78±0.62)g/L,與模型預(yù)測(cè)出來(lái)的產(chǎn)量吻合度達(dá)97.54%,比在初始培養(yǎng)基中的產(chǎn)量(23.26 g/L),提高了1.93倍。

    3 結(jié)論

    本文通過(guò)單因素試驗(yàn)與PBD試驗(yàn)確定了培養(yǎng)基中對(duì)γ-PGA產(chǎn)量影響顯著的因子,并通過(guò)響應(yīng)面法對(duì)顯著因子進(jìn)行優(yōu)化,得出顯著因子的最佳添加量為:谷氨酸鈉 86.71 g/L,檸檬酸鈉 17.94 g/L,MgSO4·7H2O 2.11 g/L,經(jīng)過(guò)驗(yàn)證,在最佳培養(yǎng)基條件下γ-PGA的產(chǎn)量為44.78 g/L,產(chǎn)量比優(yōu)化前(23.26 g/L)相比提高了1.93倍。因此用響應(yīng)面法得到γ-PGA的最佳發(fā)酵培養(yǎng)基是合理的、可行的,此外這為γ-PGA工業(yè)化大量發(fā)酵提供了一種新型菌株。但目前γ-PGA的提取方法有有機(jī)溶劑沉淀法、化學(xué)沉淀法和膜分離沉淀法,這些提取方法成本較高、工藝復(fù)雜,γ-PGA的提取方法還需進(jìn)一步改進(jìn);此外目前對(duì)于生產(chǎn)特定分子量的γ-PGA一般用溫度、超聲波等方式對(duì)高分子量γ-PGA進(jìn)行降解,用菌株發(fā)酵生產(chǎn)特定分子量的γ-PGA也需進(jìn)一步探究[30?32]。

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