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    5 個調(diào)色葡萄品種酚類物質(zhì)輪廓分析

    2021-08-31 02:34:38盧浩成成池芳李樹德王曉軍劉宗昭
    食品科學 2021年16期
    關(guān)鍵詞:黃酮醇調(diào)色酚類

    盧浩成,魏 巍,成池芳,陳 武,李樹德,王曉軍,劉宗昭,王 軍,*

    (1.中國農(nóng)業(yè)大學食品科學與營養(yǎng)工程學院,葡萄與葡萄酒研究中心,北京 100083;2.農(nóng)業(yè)農(nóng)村部葡萄酒加工重點試驗室,北京 100083;3.新疆中信國安葡萄酒業(yè)有限公司,新疆 瑪納斯 832200)

    顏色是評價葡萄酒質(zhì)量最重要的指標之一。紅葡萄酒的主要呈色物質(zhì)為花色苷,花色苷的含量、組成和比例,以及與其他類黃酮化合物的聚合作用都會影響紅葡萄酒的顏色[1]。我國葡萄酒產(chǎn)業(yè)近年發(fā)展較快,但葡萄酒顏色穩(wěn)定性差的問題也受到越來越多的關(guān)注,一些紅色葡萄品種釀造的新鮮葡萄酒的顏色較好,呈現(xiàn)深寶石紅和紫紅色的特點,但隨著陳釀的進行,會出現(xiàn)紅色色調(diào)下降和黃色色調(diào)上升速度過快的問題,嚴重影響了葡萄酒的感官質(zhì)量[2-3]。針對此問題,很多葡萄酒釀造企業(yè)采取的措施是將顏色表現(xiàn)好的葡萄酒混入目標基酒中,此方法是解決葡萄酒顏色穩(wěn)定性差的有效措施[4]。應用不同品種葡萄酒間的調(diào)配,可改善葡萄酒的顏色、香氣和口感,是葡萄酒企業(yè)保持其產(chǎn)品穩(wěn)定和開發(fā)新風格葡萄酒的重要措施[4-7]。

    在干紅葡萄酒生產(chǎn)過程中,為了改善其顏色及其穩(wěn)定性,有時加入顏色表現(xiàn)好的葡萄酒進行調(diào)色,常用來調(diào)色的葡萄品種被稱為調(diào)色品種,應用較多的有‘馬瑟蘭’、‘Dornfelder’等[8-9]。生產(chǎn)上有時也以染色葡萄作為調(diào)色品種,例如廣泛應用的‘Alicante Bouschet’[10]。與大多數(shù)歐亞種葡萄品種不同,染色葡萄不僅在果皮中合成花色苷,也在果肉中合成花色苷[11]。‘煙73’、‘煙74’、‘Kolor’和‘Tintorera’是國內(nèi)較常見的染色葡萄品種?!瓺ornfelder’原產(chǎn)于德國,雖然不是染色品種,但其所釀葡萄酒的顏色很深,是德國的主栽品種之一。關(guān)于調(diào)色品種的應用雖然已經(jīng)在國內(nèi)很多葡萄酒企業(yè)有所嘗試,但以經(jīng)驗為主,缺乏對調(diào)色品種酚類物質(zhì)輪廓的系統(tǒng)研究。

    調(diào)色葡萄品種不僅花色苷含量較高,還有很強的輔色效應。輔色效應是指葡萄酒中的花色苷與其他有機物或金屬離子發(fā)生輔色作用,形成呈色的輔色復合體,這種效應不僅可以增加溶液中呈色花色苷的比例,還可以通過改變花色苷分子的構(gòu)象,增加其在可見光光譜吸收(增色效應),和/或增加其最大吸收波長(紅移效應)[12]。黃酮醇和黃烷醇等酚類物質(zhì)作為常見的輔色素,其含量和輔色效應呈正相關(guān)[13]。黃酮醇作為應對環(huán)境脅迫的響應物質(zhì),可以吸收280~330 nm波長范圍的光,防止葡萄漿果組織受紫外線的損傷[14-16]。黃酮醇的輔色效果良好,被認為是最有效的輔色素[17]。黃烷醇在釀酒葡萄果皮和種子中均有存在,主要存在方式為游離單體和分子質(zhì)量大的單寧。單寧是賦予葡萄和葡萄酒收斂感的主要物質(zhì),對葡萄酒的感官有重要影響。黃烷醇能夠與花色苷形成輔色聚合體,雖其輔色效應弱于黃酮醇,但其在果實中的含量較高,對葡萄酒顏色穩(wěn)定同樣具有重要作用[18-20]。

    本研究對5 個常見的調(diào)色品種果實和所釀葡萄酒中的酚類物質(zhì)進行測定,探究每個調(diào)色品種的酚類物質(zhì)輪廓,以期為葡萄酒的調(diào)配提供基本參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    2013年栽植的‘煙73’、‘煙74’和2015年栽植的‘Kolor’、‘Tintorera’和‘Dornfelder’葡萄,樹體長勢均正常。葡萄園位于新疆昌吉州瑪納斯縣中信國安葡萄酒業(yè)有限公司自建基地(北緯44°14′,東經(jīng)86°15′)。植株行向為北偏東52°,株距1 m,行距2.8 m。整形方式為改良的VSP葉幕形,自根苗,主干高度60 cm。

    氫氧化鈉、酚酞、無水硫酸銅、磷酸、次甲基藍、甲醇、乙醇、醋酸、檸檬酸、檸檬酸鈉、乙酸鈉、間苯三酚、丙酮、抗壞血酸、鹽酸(均為分析純) 天津化工廠;甲醇、甲酸、乙腈(均為色譜級),二甲花翠素-3-O-葡萄糖、兒茶素、表兒茶素、表沒食子酸兒茶素、表兒茶素沒食子酯標準品 美國Sigma-Aldrich公司;果膠酶 澳大利亞Optivin公司;Lalvin D254酵母菌 法國Lallemand公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    FA2004電子分析天平 上海舜宇恒平科學儀器有限公司;PAL-1手持折光儀 日本Atago公司;PB-10 pH計德國Sartorius公司;TDL-5-A低溫離心機 上海飛鴿儀器有限公司;SG3200HBT超聲波清洗機 上海冠特超聲儀器有限公司;T6紫外分光光度計 上海普析通用儀器公司;FD-1A-50冷凍干燥機 北京必瑞克生物科技有限公司;1200系列高效液相色譜-三重四極桿質(zhì)譜聯(lián)用儀美國Agilent公司。

    1.3 方法

    1.3.1 葡萄果實樣品采集

    2018年9月4日采集‘Kolor’,9月5日采集‘煙73’和‘煙74’,9月11日采集‘Dornfelder’,9月19日采集‘Tintorera’。葡萄漿果的采集按對角線法[21],選取長勢一致的20 株葡萄,每次每個果穗采集5 粒漿果,果穗曝光面上部、中部、下部各采1 粒漿果,果穗背光面中部采集2 粒漿果,共3 次重復,每次重復采集約500 粒漿果,其中100 粒漿果用于分析理化指標,剩余樣品在液氮中冷凍后置于-80 ℃的冰箱中貯存,用于酚類物質(zhì)檢測。

    1.3.2 葡萄果實花色苷和黃酮醇的提取

    果皮或果肉中花色苷和黃酮醇提取方法如下[22]:準確稱取(0.100 0±0.000 2)g葡萄果皮(肉)凍干粉于2.5 mL離心管中,加入1 mL 50%甲醇溶液,20 ℃避光超聲萃取20 min后,4 ℃、8 000 r/min離心10 min,隨后轉(zhuǎn)移上清液于新的2.5 mL離心管中,殘渣再按照上述步驟重復提取一次,合并2 次提取的上清液,充分混合均勻,于-80 ℃冰箱保存待測。

    1.3.3 葡萄果實黃烷醇的提取

    參考Liang等[23]方法并進行優(yōu)化。

    游離黃烷醇的提?。簻蚀_稱取(0.100 0±0.000 2) g葡萄果皮凍干粉于5 mL離心管中,加入1 mL 70%丙酮溶液(含0.5%的抗壞血酸)。充分振蕩后在10 000 r/min、4 ℃離心15 min,取上清液于新的5 mL離心管中,殘渣重復提取3 次,將多次提取所得上清液合并。取400 μL提取液于1.5 mL離心管中,在常溫下進行氮吹,用200 μL含1% HCl的甲醇溶液溶解,再加入200 μL的乙酸鈉溶液(200 mmol/L)中和,于-80 ℃冰箱保存待測。

    聚合黃烷醇的裂解和提?。簻蚀_稱?。?.100 0±0.000 2)g葡萄果皮凍干粉于10 mL的離心管中,加入1 mL的間苯三酚緩沖液(含0.3 mol/L HCl、50 g/L間苯三酚和0.5%抗壞血酸的甲醇溶液),50 ℃水浴20 min后,加入1 mL乙酸鈉(200 mmol/L)終止反應,4 ℃、8 000 r/min離心15 min后,取出上清液置于新的10 mL離心管中,重復操作提取3 次,將上清液合并,于-80 ℃冰箱保存待測。

    1.3.4 葡萄果實酚類物質(zhì)檢測

    采用高效液相色譜儀,配備6410三重串聯(lián)四極桿質(zhì)譜儀(QqQ)。Poroshell 120 EC-C18色譜柱(150 mm×3.0 mm,2.7 μm)。果實提取液測定前經(jīng)0.22 μm有機相濾膜過濾,進樣量5 μL。洗脫流動相:0.1%甲酸溶液為A相,含0.1%甲酸的甲醇-乙腈(50∶50,V/V)溶液為B相。洗脫程序:90%~0% A,10%~100% B,持續(xù)15 min,后運行程序5 min。流動相流速為0.4 mL/min。柱溫箱溫度控制為55 ℃。質(zhì)譜采用AJESI離子源,正離子模式,噴霧電壓4 kV,離子源溫度150 ℃,干燥氣溫度350 ℃,流量12 L/h,霧化器壓力35 psi。檢測器為多反應監(jiān)測模式。

    葡萄果實非花色苷酚檢測所用儀器、色譜柱、流動相、過濾方法同上。梯度洗脫程序:0~28 min,90%~54% A,10%~46% B;28~29 min,54%~90% A,46%~10% B。洗脫結(jié)束后,維持10% B相沖洗5 min,平衡色譜柱。流速0.4 mL/min;進樣量5 μL。質(zhì)譜采用AJESI離子源,負離子模式,其余參數(shù)同上。

    酚類物質(zhì)的定性依據(jù)為本實驗室所建立的葡萄與葡萄酒酚類物質(zhì)HPLC-UV-MS指紋譜庫[24]。定量采用外標法,花色苷及其衍生物含量以含有相同花色素基元-3-O-葡萄糖苷單體含量計算,單位為mg/kg,以果實鮮質(zhì)量計。黃酮醇以槲皮素為外標物,黃烷醇以兒茶素、表兒茶素、表棓兒茶素和表兒茶素沒食子酸酯為外標物,單位為mg/kg,以果實鮮質(zhì)量計。

    1.3.5 規(guī)模發(fā)酵

    2018年9月4日采收‘Kolor’和‘Dornfelder’,9月5日采收‘煙73’和‘煙74’,9月19日采收‘Tintorera’。每個品種采樣30 kg果實(每個生物學重復10 kg果實),人工破碎除梗后入玻璃罐(10 L),入罐同時加入40 mg/L H2SO3和20 mg/L果膠酶。入罐24 h后添加活化好的Lalvin D254酵母。用干凈紗布蓋住罐口,每天早晚各壓帽一次,測定發(fā)酵液的密度和溫度。乙醇發(fā)酵結(jié)束(密度降到1.000以下且不再變化)后進行皮渣分離,自流汁和壓榨汁移至10 L密閉玻璃容器,添加乳酸菌進行蘋-乳發(fā)酵,水封隔絕氧氣。蘋-乳發(fā)酵結(jié)束后加入60 mg/L的H2SO3后裝瓶,置于公司酒窖瓶儲。

    1.3.6 果汁和葡萄酒樣品基本理化指標測定

    葡萄破碎后果汁的可溶性固形物含量用手持折光儀測定,pH值用pH計測定,總酸(以酒石酸計)含量參照GB/T 15038—2006《葡萄酒、果酒通用分析方法》測定[25]。

    葡萄酒乙醇體積分數(shù)、殘?zhí)?、總酸、揮發(fā)酸、SO2含量等測定參照GB/T 15038—2006《葡萄酒、果酒通用分析方法》[25],pH值用pH計測定。

    葡萄酒色度采用分光光度計法測定,取適量樣品分別在420、520 nm和620 nm波長下用1 mm比色杯測定其吸光度,色度值用3 種波長下的吸光度之和表示[26]。

    1.3.7 葡萄酒酚類物質(zhì)檢測

    葡萄酒樣品花色苷檢測同1.3.4節(jié),檢測前經(jīng)0.22 μm水系濾膜過濾;花色苷定性和定量同1.3.4節(jié),質(zhì)量濃度單位為mg/L。葡萄酒樣品非花色苷酚類物質(zhì)檢測、定性和定量同1.3.4節(jié),質(zhì)量濃度單位為mg/L。

    1.4 數(shù)據(jù)處理及統(tǒng)計分析

    采用SPSS 22.0進行統(tǒng)計分析,采用Origin 8.5、Excel、SIMCA和R語言進行繪圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 葡萄果實中的酚類物質(zhì)

    2.1.1 花色苷含量測定

    如圖1所示,‘Kolor’、‘煙73’和‘煙74’果實的花色苷含量均超過3 000 mg/kg?!疅?3’果實的花色苷含量最高,達4 768.60 mg/kg,而‘Tintorera’(2 484.99 mg/kg)和‘Dornfelder’(1 599.79 mg/kg)的花色苷含量相對較低。雖然‘Dornfelder’的果肉中不含花色苷,但其果皮中的花色苷含量高于‘Tintorera’(1 351.12 mg/kg)。從果皮和果肉花色苷含量占花色苷總含量比例看,除‘Dornfelder’外,其余4 個品種果皮花色苷占比在50%~60%之間,略高于果肉花色苷含量(圖1)。

    圖1 5 個調(diào)色品種果皮和果肉花色苷含量(A)和比例(B)Fig. 1 Concentrations (A) and proportions (B) of anthocyanins in the berry skin and pulp of five blending grape varieties

    如表1所示,包括花青素、花翠素、二甲花翠素、甲基花青素和甲基花翠素的葡萄糖苷。每種花色苷均檢測到了非?;?、乙?;?ac)和香豆?;?co)單葡萄糖苷。除‘煙74’果皮中的甲基花青素類花色苷含量(245.59 mg/kg)高于甲基花翠素類花色苷外,其余品種各類花色苷含量大小順序均為二甲花翠素類>花翠素類>甲基花翠素>甲基花青素>花青素。二甲花翠素作為5 個品種果皮中含量最高的物質(zhì),其結(jié)構(gòu)中B環(huán)不含有鄰位羥基,對酶類和金屬離子的氧化并不敏感,因此具有較強的抗氧化力[27]。在果肉中,‘Kolor’和‘Tintorera’的甲基花青素類花色苷含量最高,且花青素類花色苷的含量高于花翠素類花色苷含量。與二甲花翠素類似,甲基花青素同樣不含有B環(huán)鄰位的羥基基團,也有較強的抗氧化能力[27]?!疅?3’和‘煙74’的二甲花翠素類花色苷含量最高,且花青素類花色苷的含量低于花翠素類花色苷的含量;4 個染色葡萄果肉的甲基花翠素類花色苷含量均為最低。

    表1 5 個調(diào)色品種果實花色苷含量Table 1 Concentrations of anthocyanins in grape berries from five blending grape varieities mg/kg

    在5 個調(diào)色葡萄的果皮和果肉中,未?;ㄉ账急壤罡撸▓D2),‘煙74’果皮和果肉的未?;ㄉ毡壤哂谄渌贩N。在果肉中,未酰化花色苷比例高于果皮。?;侵参矬w中酚類物質(zhì)最常見的修飾方式之一,未經(jīng)?;幕ㄉ找驗闆]有?;谋Wo很容易在中性或弱酸性條件下脫色。?;粌H對花色苷的顏色起到穩(wěn)定作用,還能夠促進花色苷顏色的加深[28]。根據(jù)B環(huán)羥基取代的不同,可以將花色苷分為兩類:F3’H羥基取代花色苷(包括花青素類花色苷和甲基花青素類花色苷)和F3’5’H羥基取代花色苷(包括花翠素類花色苷、甲基花翠素類花色苷和二甲花翠素類花色苷),兩者含量上的不同主要與類黃酮-3’,5’-羥基化酶基因(F3’5’H)和類黃酮-3’-羥化酶基因(F3’H)的相對表達量有關(guān)[29-30]。由圖2可以看出,在果皮中,F(xiàn)3’5’H羥基取代花色苷含量遠高于F3’H羥基取代花色苷含量,說明在果皮中F3’5’H基因表達量高于F3’H基因。在果肉中,F(xiàn)3’H羥基取代花色苷的比例明顯提高,甚至在‘Kolor’中超過了F3’5’H羥基取代花色苷含量。

    圖2 5 個調(diào)色品種果實酰化(A)和羥基取代(B)類型花色苷的比例Fig. 2 Proportions of anthocyanins with different acylations (A) and hydroxyl substitutions (B) in grape berries from five blending grape varieties

    2.1.2 非花色苷酚類物質(zhì)

    如圖3所示,‘煙74’的黃酮醇含量最高(121.24 mg/kg),其次為‘Kolor’(115.50 mg/kg),‘Dornfelder’黃酮醇含量為105.57 mg/kg,3 個品種果實黃酮醇含量均達到100 mg/kg以上,高含量的黃酮醇對花色苷的輔色效應有積極作用。而‘煙73’(59.6 mg/kg)和‘Tintorera’(43.99 mg/kg)的黃酮醇含量較低。各品種果實的槲皮素類占黃酮醇總量比例最高,其次為楊梅酮類,異鼠李素類所占比例最低,且此類物質(zhì)在‘Tintorera’果實中未檢測到。

    圖3 5 個調(diào)色品種果實黃酮醇含量Fig. 3 Concentrations of flavonols in grape berries from five blending grape varieties

    如表2所示,游離單元檢測到兒茶素和表棓兒茶素2 種物質(zhì);末端單元檢測到兒茶素、表兒茶素和表棓兒茶素3 種物質(zhì);延伸單元檢測到兒茶素、表兒茶素、表棓兒茶素和表兒茶素沒食子酸4 種物質(zhì),其中延伸單元占絕大部分比例?!甂olor’果皮中的黃烷醇含量最高,‘煙73’次之,‘Dornfelder’的黃烷醇含量最少。對釀酒葡萄黃烷醇類物質(zhì)進行分析時,平均聚合度通常作為重要的分析指標,用以反映葡萄酒體的收斂性和結(jié)構(gòu)感,一般來說,隨著平均聚合度的升高,葡萄酒體的苦味減少而澀味有所增強[31-32]。平均聚合度=(延伸單元物質(zhì)的量+起始單元物質(zhì)的量)/起始單元物質(zhì)的量,其中起始單元物質(zhì)的量為游離單元減去末端單元物質(zhì)的量。5 個調(diào)色葡萄品種中,‘煙73’(47.85)的平均聚合度最高,其次為‘Dornfelder’(33.81),‘Kolor’、‘Tintorera’和‘煙74’平均聚合度接近。

    表2 5 個調(diào)色品種果皮黃烷醇含量Table 2 Concentrations of flavanols in berry skin of five blending grape varieties

    2.2 果實花色苷的PCA和差異物質(zhì)篩選

    為了探究各調(diào)色品種果實中各花色苷含量的差異,對其進行主成分分析(principal component analysis,PCA),結(jié)果如圖4所示。PCA提取到的前2 個PC解釋了總方差的85.7%,能夠較好地代表原始數(shù)據(jù)。PC1解釋了總方差的64.7%。從x軸方向看,‘煙73’和‘Kolor’位于x軸的正半軸,‘Tintorera’和‘Dornfelder’位于x軸的負半軸,‘煙74’位于坐標原點附近,PC1能夠?qū)⒄?、負半軸和原點附近的3 個區(qū)域很好區(qū)分開。結(jié)合圖4B可知,所有的花色苷物質(zhì)均位于x軸正半軸部分,對3 部分的區(qū)分均有貢獻,這說明這些物質(zhì)在‘煙73’和‘Kolor’果實中的含量高于其他3 個品種,且在‘Tintorera’和‘Dornfelder’中的含量較低。PC2解釋了總方差的21%。從y軸方向看,‘煙73’、‘Tintorera’和‘Dornfelder’位于y軸的正半軸部分,‘煙74’和‘Kolor’位于y軸的負半軸部分,PC2能將這兩部分很好區(qū)分開。結(jié)合圖4B,位于y軸正半軸部分的3 個品種果實中含量較高的均為二甲花翠素、花翠素、甲基花翠素和甲基花青素的乙?;咸烟擒?;位于y軸負半軸的2 個品種果實中含量較高的有花青素-3-葡萄糖苷、花青素-3-香豆酰葡萄糖苷、花翠素-3-香豆酰葡萄糖苷、甲基花青素-3-葡萄糖苷和甲基花青素-3-香豆酰葡萄糖苷等物質(zhì)。

    圖4 5 個調(diào)色品種果實花色苷含量的PCA得分圖(A)和載荷圖(B)Fig. 4 PCA score pots (A) and loading pots (B) of anthocyanin concentrations in grape berries from five blending grape varieties

    為了進一步捕捉到果皮和果肉花色苷中特征差異物質(zhì),利用果皮和果肉各種花色苷的含量進行有監(jiān)督的正交偏最小二乘判別分析,所得到的模型可以將果皮和果肉很好區(qū)分開(圖5A),其中模型的R2X、R2Y和Q2值分別為0.956、0.968和0.936,具有較好的判別分析能力,經(jīng)過200 次置換檢驗后,R2和Q2的縱截距分別為0.222和-0.742,無過擬合現(xiàn)象。通過變異權(quán)重參數(shù)值(variable importance in projection,VIP)預測值分布圖(圖5B),篩選出VIP大于1的物質(zhì)作為果皮和果肉的特征差異化合物,其中貢獻度從高到低的物質(zhì)依次為二甲花翠素-3-香豆酰葡萄糖苷、甲基花青素-3-葡萄糖苷、甲基花翠素-3-香豆酰葡萄糖苷、甲基花翠素-3-葡萄糖苷、花翠素-3-葡萄糖苷、花翠素-3-香豆酰葡萄糖苷、甲基花翠素-3-乙酰葡萄糖苷。除甲基花青素-3-葡萄糖苷外,其余皆為F3’5’H羥基取代花色苷,推測果皮和果肉在F3’5’H路徑上可能存在差異。

    圖5 5 個調(diào)色葡萄果皮和果肉花色苷含量的正交偏最小二乘判別分析(A)和差異物質(zhì)篩選(B)Fig. 5 OPLS-DA analysis (A) and screening of differential anthocyanin concentrations (B) between berry skin and pulp of five five blending grape varieties

    2.3 入罐時葡萄汁和發(fā)酵結(jié)束葡萄酒的基本理化指標

    如表3所示,采收前對各品種的成熟進程進行監(jiān)測,以可溶性固形物含量基本不再上升、種子完全變?yōu)楹稚⒐麑崒⒁櫩s為標準進行采收[33]。采收時‘Kolor’的可溶性含量最高(24.3 °Brix),其次為‘Dornfelder’(21.2 °Brix),‘煙73’和‘煙74’的可溶性固形物含量接近,均在18 °Brix左右,‘Tintorera’的可溶性固形物含量最低,僅為13.3 °Brix。入罐時可滴定酸質(zhì)量濃度由高到低依次為‘Tintorera’(8.25 g/L)>‘煙73’(7.31 g/L)>‘煙74’(6.75 g/L)>‘Kolor’(4.88 g/L)>‘Dornfelder’(4.87 g/L)。各品種葡萄汁和葡萄酒的pH值差異較大,其中‘Tintorera’和‘Kolor’的pH值相差可達0.6以上。色度方面,除‘Dornfelder’的色度較低外,其余4 個品種入罐時的色度均達到40以上,可見這4 個染色葡萄果肉中的花色苷在破碎的同時就被葡萄汁浸出,而‘Dornfelder’的花色苷只存在于果皮中,隨著發(fā)酵的進行,果皮中的花色苷逐漸被浸出,蘋-乳發(fā)酵完成后,色度值大幅度增加(30.26)。入罐時,4 個染色葡萄的色度值差異并不大,而蘋-乳發(fā)酵結(jié)束后,‘Tintorera’的色度值(61.06)高于其余品種,可能原因是‘Tintorera’發(fā)酵完成的葡萄酒的pH值較低,較低的pH值有利于葡萄酒中花色苷等呈色物質(zhì)的呈色和輔色效應[34]。

    表3 入罐時葡萄汁和蘋-乳發(fā)酵結(jié)束時葡萄酒的基本理化指標Table 3 Physicochemical indicators of musts and wines

    2.4 葡萄酒中的酚類物質(zhì)

    2.4.1 花色苷含量測定結(jié)果

    如表4所示,‘煙73’的花色苷質(zhì)量濃度最高(1 827.87 mg/L),其次為‘煙74’(1 411.13 mg/L),‘Kolor’、‘Tintorera’和‘Dornfelder’葡萄酒中的花色苷含量相近。5 種葡萄酒的二甲花翠素類花色苷含量最高,在‘Kolor’和‘Tintorera’葡萄酒中,甲基花青素類花色苷含量高于花翠素類,而在其余3 個品種中,甲基花青素類花色苷含量低于花翠素類花色苷,花青素類花色苷含量最低。5 種葡萄酒的未?;ㄉ蘸孔罡?,其次為乙酰化花色苷,香豆?;ㄉ蘸孔畹?。5 種葡萄酒的F3’5’H羥基取代花色苷含量顯著高于F3’H羥基取代花色苷含量。

    表4 5 個調(diào)色品種所釀葡萄酒的花色苷質(zhì)量濃度Table 4 Concentrations of anthocyanins in wines made from five blending grape varieties mg/L

    2.4.2 非花色苷酚類物質(zhì)含量測定結(jié)果

    如圖6所示,‘煙74’葡萄酒的黃酮醇質(zhì)量濃度最高(101.07 mg/L),其次為‘Dornfelder’(88.52 mg/L),‘Kolor’(54.14 mg/L)和‘煙73’(51.73 mg/L)的黃酮醇質(zhì)量濃度相近,‘Tintorera’葡萄酒的黃酮醇質(zhì)量濃度最低,僅為19.87 mg/L。‘Kolor’葡萄酒的黃烷醇質(zhì)量濃度(98.28 mg/L)明顯高于其余4 個品種,‘Tintorera’葡萄酒的黃烷醇質(zhì)量濃度(35.34 mg/L)最低,其余3 個品種葡萄酒的黃烷醇含量介于二者之間,且差異不大?!疅?4’葡萄酒中酚酸質(zhì)量濃度(94.89 mg/L)最高,其余4 個品種含量依次為‘Dornfelder’(89.58 mg/L)>‘煙73’(72.32 mg/L)>‘Kolor’(62.75 mg/L)>‘Tintorera’(43.77 mg/L),‘Tintorera’葡萄酒的酚酸質(zhì)量濃度仍最低。

    圖6 5 個調(diào)色品種所釀葡萄酒的非花色苷酚類物質(zhì)含量Fig. 6 Concentrations of non-anthocyanin phenols in wines made from five blending grape varieties

    2.5 葡萄與葡萄酒的酚類物質(zhì)相關(guān)性分析

    通常來說,葡萄的品質(zhì)決定所釀葡萄酒的品質(zhì),這已經(jīng)成為葡萄酒釀造行業(yè)普遍接受的觀點。挖掘葡萄和葡萄酒中次級代謝產(chǎn)物的聯(lián)系,利用所有酚類物質(zhì)含量構(gòu)建Pearson相關(guān)系數(shù)模型,并對葡萄和葡萄酒的相同物質(zhì)進行相關(guān)系數(shù)計算,結(jié)果如圖7所示。葡萄的酚類物質(zhì)含量與葡萄酒的酚類物質(zhì)含量大部分呈正相關(guān),一般認為兩者的相關(guān)系數(shù)大于0.5或者小于-0.5具有較強的相關(guān)性[35]。對花色苷來說,葡萄和葡萄酒中相同的15 種單體花色苷中,有11 種具有較強的相關(guān)性;在225(15(葡萄)×15(葡萄酒))個組合中,有68 個組合表現(xiàn)出了較強的正相關(guān)。對黃酮醇而言,在葡萄和葡萄酒中9 種相同的黃酮醇中,有6 種達到了較強的正相關(guān);在99(9(葡萄酒)×11(葡萄))個組合中,有40 個組合表現(xiàn)出了較強的正相關(guān)。對黃烷醇來說,在葡萄和葡萄酒相同的3 種物質(zhì)中,有2 種達到了較強的正相關(guān);在24(6(葡萄酒)×4(葡萄))個組合中,有12 個組合達到了較強的相關(guān)性。

    圖7 基于葡萄和葡萄酒花色苷(A)和非花色苷酚類物質(zhì)(B)濃度的相關(guān)性分析Fig. 7 Correlation analysis of concentrations of anthocyanins (A) and non-anthocyanin phenols (B) between grape berriess and wines from five blending grape varieties

    總體來說,在葡萄和葡萄酒所有27 種相同的酚類物質(zhì)中,共有19 種達到了較強的相關(guān)性,相關(guān)性達到了70.37%,其中花色苷的相關(guān)性為73.33%,黃酮醇的相關(guān)性為66.67%,黃烷醇的相關(guān)性為66.67%。除此之外,在花色苷、黃酮醇和黃烷醇所有相同物質(zhì)和不同物質(zhì)的共348 個組合中,120 個組合達到了較強的相關(guān)性,相關(guān)性為34.48%。這說明,在不同的酚類物質(zhì)組合中,相關(guān)性并不高。

    3 討 論

    顏色作為葡萄酒感官評價的一項重要指標,對葡萄酒的品質(zhì)至關(guān)重要。如何改善葡萄酒的顏色和提高其穩(wěn)定性是現(xiàn)在越來越多研究的重點方向,尤其是針對西部溫暖產(chǎn)區(qū)葡萄酒顏色穩(wěn)定性差的問題[3]。干紅葡萄酒中花色苷質(zhì)量濃度一般在185~895 mg/L范圍內(nèi)[36],在本研究中,5 個調(diào)色品種葡萄和葡萄酒中均具有較高的花色苷含量,其中葡萄酒中花色苷質(zhì)量濃度均高于1 000 mg/L,高于一般干紅葡萄酒的花色苷含量,均為合適的調(diào)色葡萄品種。5 個品種中,‘煙73’葡萄果實和葡萄酒中的花色苷含量均為最高,是作為提高待調(diào)配葡萄酒中花色苷含量最有效的品種。從蘋-乳發(fā)酵結(jié)束葡萄酒的色度方面看,‘Tintorera’葡萄酒中的色度最高,在顏色方面表現(xiàn)最好,雖然其花色苷含量低于‘煙73’,但較低的pH值使其具有最強的輔色效應。葡萄酒的顏色與pH值的關(guān)系密切,花色苷物質(zhì)在不同pH值下存在著平衡和轉(zhuǎn)化機制,當葡萄酒pH值在3.0左右時,輔色效應最強,隨著pH值的升高,部分花色苷轉(zhuǎn)變?yōu)闊o色的甲醇假堿,減色效應加劇[12]。

    調(diào)配不僅使葡萄酒有更好的顏色,調(diào)配時也應考慮風味物質(zhì)的變化。這就決定了進行以顏色為目的的調(diào)配時,不僅要考慮到供調(diào)色品種的花色苷含量,還要兼顧基本理化指標的變化,如乙醇體積分數(shù)和pH值;輔色素的多少,如非花色苷酚類物質(zhì)的含量;口感的變化,如丹寧的強弱以及調(diào)配后香氣的協(xié)調(diào)性等。本研究基本探明了各品種的基本理化指標和酚類物質(zhì)輪廓特點?!甌intorera’葡萄酒中乙醇體積分數(shù)和pH值均最低,可以平衡乙醇體積分數(shù)偏高,酸度偏低的葡萄酒,但‘Tintorera’非花色苷酚類物質(zhì)含量較低,對輔色效應的貢獻會低于其他品種?!疅?3’有最高的花色苷含量,pH值也處于較低的水平,也可以起到調(diào)酸的效果;‘煙73’葡萄酒中的平均聚合度最高,有最強的澀度和收斂感,調(diào)配時對口感的影響最大,也是擬用其進行調(diào)配時需要注意的地方。‘煙74’、‘Kolor’和‘Dornfelder’都有較高的非花色苷酚含量,對葡萄酒的輔色效應有較強的貢獻?!瓺ornfelder’雖然為非染色品種,但果皮中的花色苷含量較高,只選擇其皮渣進行混合發(fā)酵也是避免調(diào)色品種對目標葡萄基酒風味影響的一種方案。

    4 結(jié) 論

    本研究以調(diào)色品種‘煙73’、‘煙74’、‘Kolor’、‘Tintorera’和‘Dornfelder’為材料,利用高效液相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜聯(lián)用方法檢測成熟果實和蘋-乳發(fā)酵結(jié)束后葡萄酒的花色苷及非花色苷酚類物質(zhì)的組成和含量。結(jié)果表明,‘Kolor’和‘煙73’果實總花色苷含量較高,‘Tintorera’和‘煙73’果實黃酮醇含量較低,‘Dornfelder’果皮黃烷醇含量最低。在5 個調(diào)色葡萄所釀的葡萄酒中,‘煙73’花色苷含量最高,‘Tintorera’黃酮醇、黃烷醇和酚酸的含量都低于其他品種。從顏色上看,5 個調(diào)色品種都可以用于調(diào)配葡萄酒的顏色?;诨ㄉ蘸康腜CA可以對不同品種的果皮和果肉區(qū)分,正交偏最小二乘判別分析可以將5 個品種的果皮和果肉區(qū)分。在Pearson相關(guān)模型中,葡萄和葡萄酒中70.37%的相同酚類物質(zhì)具有較強的相關(guān)性。

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