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    復(fù)方景川片對(duì)大鼠缺血性腦損傷的保護(hù)作用及對(duì)小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞極化的影響

    2021-08-26 08:03:12劉偉偉聶衛(wèi)崔曉雪王宏張婷劉慶煥王文彤
    天津醫(yī)藥 2021年8期
    關(guān)鍵詞:膠質(zhì)空白對(duì)照低劑量

    劉偉偉,聶衛(wèi),崔曉雪,王宏,張婷,劉慶煥,王文彤

    腦缺血可引起神經(jīng)元壞死,釋放炎癥介質(zhì),進(jìn)而誘導(dǎo)中樞小膠質(zhì)細(xì)胞及巨噬細(xì)胞為主的外周免疫細(xì)胞在缺血區(qū)域聚集并激活,介導(dǎo)腦組織炎癥瀑布效應(yīng)[1]。研究表明,小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞極化在卒中引起的腦損傷中起關(guān)鍵作用,尤其是M2型小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞在促進(jìn)腦修復(fù)過程中起重要作用[2-3]。復(fù)方景川片為在研的復(fù)方六類新藥,選用紅景天、川芎、延胡索、冰片為組方配伍,諸藥合用,共奏益氣活血、化瘀通絡(luò)之效。本課題組前期研究已建立了穩(wěn)定的復(fù)方景川片質(zhì)量評(píng)價(jià)標(biāo)準(zhǔn)[4],并證實(shí)其可明顯降低腦梗死的面積及神經(jīng)元凋亡程度[5]。但其神經(jīng)保護(hù)作用是否與小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞極化有關(guān),目前尚不明確。本研究采用大鼠大腦中動(dòng)脈閉塞模型,觀察復(fù)方景川片在大鼠腦缺血損傷中的神經(jīng)保護(hù)作用,并探討其治療作用與小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞極化的相互關(guān)系,旨在探究復(fù)方景川片治療缺血性腦損傷的作用機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料 SPF級(jí)雄性SD大鼠60只,體質(zhì)量160~180 g,購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)技術(shù)有限公司,動(dòng)物合格證號(hào)SCXK(京)2016-0006,購入后自由飲水,飼養(yǎng)環(huán)境溫度(25±2)℃。復(fù)方景川片由天津市醫(yī)藥科學(xué)研究所制劑中心提供,規(guī)格0.5 g/片,以紅景天苷計(jì)為3.35 mg/g;尼莫地平片,規(guī)格30 mg/片(天津市中央藥業(yè)有限公司,產(chǎn)品批號(hào):171102);2432-A4線栓(北京西濃科技有限公司)。兔抗CD86 多克隆抗體、兔抗精氨酸酶1(Arg1)多克隆抗體(武漢三鷹生物技術(shù)有限公司),小鼠β-actin 單抗、鏈霉親和素-生物素復(fù)合物(SABC)免疫組化染色試劑盒及DAB顯色劑(武漢博士德生物工程有限公司),蘇木素-伊紅(HE)染液(北京索萊寶科技有限公司);其他試劑均為國(guó)產(chǎn)或進(jìn)口分析純。ASP200S 全自動(dòng)組織脫水機(jī)、Leica EG1150H組織包埋機(jī)、Leica RM2255全自動(dòng)切片機(jī)(德國(guó)徠卡);尼康Ci-L 圖像采集顯微鏡、NIS-BRML圖像分析系統(tǒng)(日本尼康)。

    1.2 方法

    1.2.1 動(dòng)物分組和給藥 60 只大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分為空白對(duì)照組,模型組,尼莫地平組和復(fù)方景川片低、中、高劑量組,每組10 只。按成人等效劑量,尼莫地平給藥劑量為0.012 g/kg;復(fù)方景川片低、中、高劑量組分別給予復(fù)方景川片0.78、1.56、3.12 g/kg。造模前7 d 開始各給藥組灌胃給藥,1 次/d,給藥體積10 mL/kg,連續(xù)10 d。空白對(duì)照組和模型組灌胃等體積純凈水。

    1.2.2 動(dòng)物模型制備 采用Longa線栓法制備大鼠大腦中動(dòng)脈閉塞模型[6-7]??瞻讓?duì)照組只分離血管,不結(jié)扎不插栓線。模型組、尼莫地平組和復(fù)方景川片中劑量組各有1只大鼠在實(shí)驗(yàn)過程中死亡,予以舍棄。

    1.2.3 神經(jīng)行為學(xué)評(píng)價(jià) (1)神經(jīng)功能評(píng)分:造模48 h 后采用Longa 評(píng)分法[8]對(duì)各組大鼠神經(jīng)功能缺損情況進(jìn)行評(píng)定,分值0~4分,得分越高,神經(jīng)功能越差。(2)橫木行走實(shí)驗(yàn):取長(zhǎng)1.2 m、寬和高均為2.5 cm的橫木,水平放置于距地面0.6 m處,在末次給藥1 h 后,進(jìn)行橫木行走實(shí)驗(yàn)[7],并對(duì)其腦缺血損傷后運(yùn)動(dòng)行為能力進(jìn)行評(píng)定,橫木行走實(shí)驗(yàn)滿分為6分,得分越高表示運(yùn)動(dòng)能力越差。

    1.2.4 腦組織處理 造模48 h后,10%水合氯醛(3.5 mL/kg)腹腔注射麻醉大鼠,迅速斷頭取腦組織,部分新鮮組織低溫凍存,余固定于4%多聚甲醛。固定24 h后冠狀面取材,切取包括大腦皮質(zhì)和海馬區(qū)在內(nèi)的組織塊,進(jìn)行常規(guī)脫水、透明、浸蠟、包埋、切片,切片厚度為3 μm。

    1.2.5 HE染色觀察腦組織病理改變 切片依次經(jīng)二甲苯脫蠟,梯度乙醇水化,放入蘇木素染液4 min,鹽酸乙醇分化,氨水返藍(lán),伊紅染色1 min,梯度乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹脂封片。光學(xué)顯微鏡下觀察腦組織病理改變。

    1.2.6 免疫組化染色檢測(cè)大腦皮質(zhì)CD86和Arg1的定位及表達(dá) 常規(guī)石蠟切片脫蠟至水,滴加體積分?jǐn)?shù)為3%的H2O2,室溫孵育10 min 以阻斷內(nèi)源性過氧化物酶;微波加熱修復(fù)抗原,用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為50 g/L的牛血清白蛋白封閉20 min;滴加兔抗CD86多克隆抗體或兔抗Arg1多克隆抗體(1∶100),4 ℃過夜;磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗后加入生物素化山羊抗兔IgG抗體,37 ℃孵育20 min;PBS 沖洗后加入SABC,37 ℃孵育20 min;PBS 沖洗后加入二氨基聯(lián)苯胺顯色;蘇木素復(fù)染,乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片。每張切片于光學(xué)顯微鏡下隨機(jī)讀取3 個(gè)視野,采用NIS-BRML 圖像分析系統(tǒng)采集圖像并分析,記錄灰度平均值。

    1.2.7 Western blot 檢測(cè)腦組織CD86 和Arg1 的蛋白表達(dá)水平 各組取3 只大鼠,將缺血皮質(zhì)腦組織切成小塊,加入RIPA 裂解液勻漿、裂解 30 min,4 ℃下 12 000 r/min 離心5 min,提取樣品中總蛋白,并檢測(cè)總蛋白含量。蛋白變性后在10%SDS-PAGE中進(jìn)行電泳后采用半干法轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,封閉2 h,加入一抗CD86(1∶1 000),Arg1(1∶5 000),置于4 ℃條件下孵育過夜。加入HRP 標(biāo)記二抗(1∶50 000),使PVDF 膜浸泡于二抗孵育液,室溫?fù)u床孵育2 h 后洗膜,除去游離二抗。添加ECL 工作液,待熒光帶明顯后,吸去多余的底物液,覆上保鮮膜,X線片壓片后依次放入顯影液顯影、定影液定影,沖洗晾干后掃描膠片。用Imageproplus 軟件分析膠片光密度值,以CD86、Arg1 與β-actin 的光密度比值反映其蛋白表達(dá)水平。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 17.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析,組間多重比較采用LSD-t法。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 神經(jīng)行為學(xué)改變 與空白對(duì)照組比較,模型組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分、橫木行走評(píng)分均顯著增高(P<0.05),大鼠出現(xiàn)明顯的神經(jīng)功能損傷和行為能力下降。與模型組比較,各給藥組神經(jīng)功能評(píng)分、橫木行走評(píng)分均顯著降低(P<0.05);與低劑量組比較,高劑量組神經(jīng)功能評(píng)分明顯降低(P<0.05),見表1。

    Tab.1 Comparison of scores of nerve function and crossbar walking test between the six groups表1 各組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分和橫木行走實(shí)驗(yàn)評(píng)分比較(分,)

    Tab.1 Comparison of scores of nerve function and crossbar walking test between the six groups表1 各組大鼠神經(jīng)功能評(píng)分和橫木行走實(shí)驗(yàn)評(píng)分比較(分,)

    **P<0.01;a與空白對(duì)照組比較,b與模型組比較,c與復(fù)方景川片低劑量組比較,P<0.05

    組別空白對(duì)照組模型組復(fù)方景川片低劑量組復(fù)方景川片中劑量組復(fù)方景川片高劑量組尼莫地平組F n 10 9 10 9 10 9神經(jīng)功能評(píng)分0.00±0.00 3.22±0.67a 2.60±0.70ab 2.44±0.73ab 1.90±0.57abc 2.11±0.60ab 33.504**橫木行走評(píng)分0.00±0.00 4.67±0.87a 3.30±0.82ab 2.89±0.78ab 2.60±0.97ab 3.00±0.87ab 36.571**

    2.2 大腦皮質(zhì)病理改變 HE 染色結(jié)果顯示,空白對(duì)照組大腦皮質(zhì)神經(jīng)元、膠質(zhì)細(xì)胞及毛細(xì)血管形態(tài)正常,結(jié)構(gòu)完整,核仁清晰,胞漿無紅染。模型組缺血側(cè)大腦皮質(zhì)神經(jīng)元大片消失,錐體細(xì)胞明顯減少,細(xì)胞間隙增寬,排列紊亂,胞體變小,尼氏小體消失,變性壞死后形成大量空泡,同時(shí)可見小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞增生較明顯。各給藥組缺血側(cè)大腦皮質(zhì)病變減輕,壞死神經(jīng)元減少,正常錐體細(xì)胞數(shù)量增多,形態(tài)結(jié)構(gòu)趨于正常,細(xì)胞核較規(guī)則,仍見小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞增生,水腫較輕,尤以高劑量組和尼莫地平組減輕較明顯,其次為中劑量組和低劑量組,見圖1。

    Fig.1 Pathological changes on cerebral cortex of rats in six groups(HE staining,×200)圖1 各組大鼠大腦皮質(zhì)病理改變(HE染色,×200)

    2.3 各組免疫組化染色結(jié)果

    2.3.1 大腦皮質(zhì)CD86表達(dá)及定位 CD86陽性表達(dá)為棕黃色或褐色,定位于細(xì)胞膜,陽性細(xì)胞為小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞??瞻讓?duì)照組大腦皮質(zhì)可見CD86少量表達(dá)。與空白對(duì)照組比較,模型組及各給藥組CD86 表達(dá)水平明顯增加(P<0.05)。與模型組比較,各給藥組CD86 表達(dá)水平降低,其中復(fù)方景川片高劑量組相比中、低劑量組降低較為明顯(P<0.05),見圖2、表2。

    Fig.2 The expressions of CD86 on cerebral cortex in six groups of rats(immunohistochemical staining,×400)圖2 各組大鼠大腦皮質(zhì)CD86表達(dá)(免疫組織化學(xué)染色,×400)

    2.3.2 大腦皮質(zhì)Arg1 表達(dá)及定位 Arg1 陽性表達(dá)亦為棕黃色或褐色,定位于細(xì)胞漿,陽性細(xì)胞為小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞??瞻讓?duì)照組僅見極少量小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞表達(dá)Arg1。與空白對(duì)照組比較,模型組Arg1 表達(dá)水平明顯升高(P<0.05)。各給藥組與模型組比較,Arg1 表達(dá)均有所增加,其中尼莫地平組、復(fù)方景川片高劑量組Arg1 表達(dá)增加明顯(P<0.05);復(fù)方景川片不同劑量組間比較發(fā)現(xiàn)高劑量組較中、低劑量組陽性表達(dá)明顯增加(P<0.05),見圖3、表2。

    Fig.3 The expressions of Arg1 on cerebral cortex in six groups of rats(immunohistochemical staining,×400)圖3 各組大鼠大腦皮質(zhì)Arg1表達(dá)(免疫組織化學(xué)染色,×400)

    Tab.2 Comparison of expression levels of CD86 and Arg1 between six groups of rats表2 各組大鼠CD86和Arg1表達(dá)水平比較(灰度值,)

    Tab.2 Comparison of expression levels of CD86 and Arg1 between six groups of rats表2 各組大鼠CD86和Arg1表達(dá)水平比較(灰度值,)

    **P<0.01;a與空白對(duì)照組比較,b與模型組組比較,c與復(fù)方景川片低劑量組比較,d與復(fù)方景川片中劑量組比較,P<0.05

    組別空白對(duì)照組模型組復(fù)方景川片低劑量組復(fù)方景川片中劑量組復(fù)方景川片高劑量組尼莫地平組F n 10 9 10 9 10 9 CD86 132.98±8.40 97.75±6.14a 105.26±3.29a 118.59±10.38abc 117.42±5.66abc 112.58±9.60abc 24.639**Arg1 129.04±5.98 113.51±6.35a 110.24±8.18a 110.88±5.49a 100.42±7.01abcd 105.37±6.32ab 21.296**

    2.4 各組腦組織CD86、Arg1表達(dá)水平比較 Western blot結(jié)果顯示,與空白對(duì)照組比較,模型組及各給藥組大鼠缺血皮質(zhì)腦組織中CD86、Arg1的蛋白表達(dá)水平顯著增高(P<0.05)。與模型組比較,尼莫地平組及復(fù)方景川片高、中劑量組CD86蛋白表達(dá)水平顯著降低,各給藥組Arg1 的蛋白表達(dá)水平均顯著增高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。復(fù)方景川片高、中劑量組CD86 蛋白表達(dá)水平低于低劑量組(P<0.05),高劑量組Arg1的蛋白表達(dá)水平較中、低劑量組明顯增高(P<0.05),見圖4、表3。

    Fig.4 Protein expression levels of CD86 and Arg1 in ischemic cortex of rats圖4 各組大鼠缺血皮質(zhì)CD86、Arg1蛋白表達(dá)

    Tab.3 Comparison of the protein expression levels of CD86 and Arg1 in ischemic cortex of rats表3 各組大鼠缺血皮質(zhì)CD86、Arg1蛋白表達(dá)水平比較(n=3,)

    Tab.3 Comparison of the protein expression levels of CD86 and Arg1 in ischemic cortex of rats表3 各組大鼠缺血皮質(zhì)CD86、Arg1蛋白表達(dá)水平比較(n=3,)

    **P<0.01;a與空白對(duì)照組比較,b與模型組組比較,c與復(fù)方景川片低劑量組比較,d與復(fù)方景川片中劑量組比較,P<0.05

    組別空白對(duì)照組模型組復(fù)方景川片低劑量組復(fù)方景川片中劑量組復(fù)方景川片高劑量組尼莫地平組F CD86/β-actin 0.071±0.006 0.619±0.029a 0.591±0.019a 0.237±0.014abc 0.232±0.017abc 0.301±0.032ab 9.423**Arg1/β-actin 0.083±0.006 0.354±0.011a 0.584±0.009ab 0.483±0.017ab 0.805±0.008abcd 0.728±0.021ab 7.984**

    3 討論

    缺血性腦損傷屬中醫(yī)學(xué)“中風(fēng)”范疇,多為氣虛血滯、脈絡(luò)瘀阻所致,其中缺血性腦卒中占85%左右,發(fā)病急,病死率高,給患者家庭帶來沉重的負(fù)擔(dān)。目前西醫(yī)治療缺血性腦損傷尚缺乏切實(shí)可行的方法,而中醫(yī)藥用于腦損傷的防治具有獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)[9]。復(fù)方景川片以“益氣活血,化瘀通絡(luò)”為原則,對(duì)缺血性腦損傷具有一定的治療作用,可有效改善缺血性腦損傷大鼠的神經(jīng)行為學(xué)功能,減少壞死神經(jīng)元,且隨著給藥劑量的增加,療效更加明顯。

    腦卒中后可導(dǎo)致繼發(fā)性腦損傷和多器官功能障礙,而炎癥介質(zhì)失控性釋放是這種改變的基礎(chǔ)[10]。炎癥反應(yīng)在腦缺血病理生理過程中作用復(fù)雜,是一個(gè)動(dòng)態(tài)變化過程。在炎癥反應(yīng)早期或急性期,誘導(dǎo)促炎基因表達(dá),加重組織損傷;炎癥反應(yīng)晚期或亞急性和慢性期,可表現(xiàn)為損傷修復(fù)。從有害作用轉(zhuǎn)變?yōu)橛幸孀饔玫年P(guān)鍵在于損傷程度和持續(xù)時(shí)間,這也成為決定藥物治療時(shí)間窗的核心[11]。炎癥微環(huán)境會(huì)極大地影響小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞的表型變化,從而表現(xiàn)出不同的生物學(xué)功能。M1型小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞通過 TLR2-Sphk1、Janus 激酶 1/2(JAK1/JAK2)等信號(hào)通路,引起白細(xì)胞介素(IL)-1β、IL-17、IL-23和腫瘤壞死因子(TNF)-α 釋放,加重腦組織損傷[12];而IL-4、IL-13等細(xì)胞因子可通過激活信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)與轉(zhuǎn)錄激活因子(STAT)-6等信號(hào)通路促進(jìn)M2型巨噬細(xì)胞表達(dá)[13]。M2 型巨噬細(xì)胞在大腦恢復(fù)過程中起促進(jìn)作用,包括神經(jīng)發(fā)生、軸突再生、血管生成、少突膠質(zhì)細(xì)胞前體細(xì)胞生成和髓鞘再生等[14]。因此,小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞的極化狀態(tài)在卒中引起的腦損傷中起關(guān)鍵作用,也是藥物治療的靶點(diǎn)。

    CD86是M1型巨噬細(xì)胞的分子標(biāo)志物[15]。本研究發(fā)現(xiàn),模型組及各給藥組CD86蛋白表達(dá)水平與空白對(duì)照組比較明顯增加,表明大腦中動(dòng)脈閉塞后可觸發(fā)炎性機(jī)制,促進(jìn)M1 型小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞的活化。各給藥組CD86 蛋白表達(dá)水平明顯低于模型組,表明藥物干預(yù)后可降低M1 型小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞活化的程度,減輕了炎性損傷。M2型極化的特征在于高表達(dá) Arg1、CD206、IL-4 等[3]。本研究發(fā)現(xiàn),模型組及各給藥組Arg1蛋白表達(dá)水平與空白對(duì)照組比較明顯增加,表明大腦中動(dòng)脈閉塞后亦可引起M2型小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞活化;但不同于CD86的表達(dá),模型組中Arg1 蛋白表達(dá)水平低于各給藥組,說明藥物干預(yù)后增加了M2 型小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞活化的程度。結(jié)合形態(tài)學(xué)觀察,壞死神經(jīng)元數(shù)量減少,正常神經(jīng)元數(shù)目增加,表明藥物干預(yù)促進(jìn)了M2 型活化,發(fā)揮其抗炎功能,增強(qiáng)神經(jīng)保護(hù)作用。尤其復(fù)方景川片高劑量組和尼莫地平組Arg1 蛋白表達(dá)水平較模型組和空白對(duì)照組明顯增強(qiáng),表明此兩組M2型小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞活化顯著,與HE染色顯示的腦組織病理改變結(jié)果一致,證實(shí)復(fù)方景川片對(duì)缺血性腦損傷具有神經(jīng)保護(hù)作用,且作用的發(fā)揮與其對(duì)小膠質(zhì)細(xì)胞/巨噬細(xì)胞極化的調(diào)控有關(guān),可在一定劑量范圍內(nèi)抑制M1型極化,促進(jìn)M2型極化。

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