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    超高效液相色譜-三重四極桿/線性離子阱復合質(zhì)譜法測定雞蛋中黏菌素殘留的研究

    2021-08-13 02:42:16王亦琳孫紅洋王鶴佳
    中國獸藥雜志 2021年7期
    關(guān)鍵詞:菌素定性雞蛋

    尹 暉,王亦琳,葉 妮,孫紅洋,孫 雷,王鶴佳

    (中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,北京 100081)

    近期,貴州首例雞蛋被查出禁用藥氟苯尼考案宣判,雞蛋中的獸藥殘留問題和隨之引發(fā)的食品安全問題再度引起社會關(guān)注。黏菌素(Colistin)屬于多肽類抗生素,是30多種成分的混合物,主要成分為黏菌素A和黏菌素B[1-2],其結(jié)構(gòu)為由七環(huán)和末端的三肽組成的十肽菌素,對革蘭氏陰性桿菌具有較強的抗菌作用,廣泛應用于治療豬及禽類腸道大腸桿菌感染,曾經(jīng)作為飼料添加劑還有促進動物生長作用[3]。大量使用黏菌素會對動物的腎和神經(jīng)系統(tǒng)造成較大的毒害性[4],并以藥物原形或其代謝產(chǎn)物形式在動物可食性組織(如蛋、奶)中形成藥物殘留,影響食品質(zhì)量安全,進而影響人類健康,因此歐盟制定了黏菌素在動物可食用組織中的最高殘留限量標準[5],我國食品安全國家標準GB 31650-2019中規(guī)定的黏菌素最高殘留限量與歐盟一致,其中雞蛋中黏菌素的殘留標志物為黏菌素A和黏菌素B之和,最大殘留限量(MRL)為300 μg/kg[6]。目前雞蛋中黏菌素殘留檢測方法的報道較少[7],文獻報道多為對其他動物組織、牛奶、飼料中黏菌素殘留檢測方法[8-11]。我國也尚未發(fā)布動物性食品中黏菌素殘留量測定的國家標準和行業(yè)標準。本研究應用三重四極桿/線性離子阱復合質(zhì)譜技術(shù)(QTRAP),在四極桿的高靈敏度基礎上,增加了線性離子阱增強子離子掃描的定性功能,可以得到能夠二次定性的EPI指紋圖,進一步提高了獸藥殘留檢測中痕量分析定性的準確度[12]。本研究擬建立一種檢測雞蛋中黏菌素殘留的UPLC-MS/MS方法,應用最新的三重四極桿/線性離子阱復合質(zhì)譜技術(shù)(QTRAP),以為雞蛋的食品安全監(jiān)控提供科學依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 儀器和設備 Shimadzu 30A-6500 QTRAP液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀,日本島津公司-美國AB SCIEX公司; XS105DU分析天平,Mettler Toledo公司;AE260電子天平,Mettler Toledo公司;Biofuge Strators高速冷凍離心機,賀利氏公司;SIR4渦旋混合器,IKA公司;氮吹儀,Jnc公司。

    1.2 藥品和試劑 黏菌素A、黏菌素B,純度均>98%。來自日本明治制果藥業(yè)株式會社;甲酸、乙腈為色譜純,均購自MERCK公司;所用水為超純水。

    1.3 空白雞蛋 從超市購買不同批次的雞蛋,經(jīng)檢測篩選出不含黏菌素的雞蛋,充分勻漿后用作空白雞蛋。

    1.4 對照溶液配制 精密稱取黏菌素A和黏菌素B標準品適量,置于10 mL棕色量瓶中,用甲醇溶解并稀釋成濃度為1 mg/mL的標準儲備液;量取標準儲備液適量,用甲醇稀釋成10 μg/mL的標準工作液,再用甲醇稀釋成1 μg/mL的標準工作液。

    1.5 測定方法

    1.5.1 色譜條件 色譜柱為BEH C18(50 mm×2.1 mm, 1.7 μm),流動相A相為0.5%甲酸水溶液,B相為0.5%甲酸乙腈溶液,流動相梯度洗脫程序見表1,柱溫30 ℃,進樣量5 μL。

    表1 流動相梯度洗脫程序Tab 1 Gradient elution conditions of mobile phase

    1.5.2 質(zhì)譜條件 電噴霧離子源(ESI+),采用多反應監(jiān)測-信息依賴掃描-增強子離子掃描(MRM-IDA-EPI)方式采集,電噴霧電壓(IS)為5500 V,離子源溫度為550 ℃,氣簾氣(CUR)為30 psi,碰撞氣(CAD)為高等(High),輔助氣(GS1)為50 psi,輔助氣(GS2)為60 psi;IDA參數(shù):動態(tài)背景扣除,從不排除之前的目標離子,觸發(fā)閾值100 cps;EPI參數(shù):掃描范圍為80~400m/z,掃描速度10000 Da/s,CE為20 eV,CES為5 eV。待測藥物定性定量離子對及對應的去簇電壓(DP)和碰撞能量(CE)見表2。

    表2 黏菌素定性定量離子對及對應的去簇 電壓(DP)和碰撞能量(CE)Tab 2 Qualitative ions, corresponding quota ions of Colistin and corresponding declustering potential(DP), collision energy(CE)

    1.5.3 定性與定量 定性時試樣溶液中色譜峰的保留時間,應與校正溶液的保留時間一致,容許偏差為±2.5%,試樣溶液中的離子豐度比應與校正溶液的一致,容許偏差符合歐盟2002/657/EC決議要求。線性離子阱獲得增強子離子掃描(EPI)譜圖,應與校正溶液的EPI譜圖匹配。定量方法采用基質(zhì)匹配標準溶液外標法定量。

    1.5.4 基質(zhì)匹配標準曲線繪制 精密量取黏菌素標準工作液適量,用0.5%甲酸水溶液稀釋成濃度為10、25、50、100、200和400 ng/mL的系列標準工作液,從中各取1.0 mL,分別加入到空白雞蛋試料經(jīng)提取、凈化和吹干后的殘余物中,充分溶解,過濾,過0.2 μm濾膜后,作為濃度為20、50、100、200、400和800 μg/kg的系列基質(zhì)匹配標準溶液上機測定。按所得峰面積與相應的對照溶液濃度作標準曲線,并計算回歸方程及相關(guān)系數(shù)。

    1.5.5 樣品前處理過程 稱取雞蛋(5±0.05)g于50 mL離心管中,加入25%甲醇水溶液25 mL,渦旋2 min,再加入1 mol/L硫酸2 mL,中速振蕩10 min,3000 r/min離心5 min,取上清液。向殘渣中加入25%甲醇水溶液15 mL,同樣的方法重復提取1次,合并上清液。合并的提取液中加入正己烷25 mL,振蕩5 min,5000 r/min離心10 min,棄上層正己烷,并將下層提取液定容至50 mL,備用。Plexa固相萃取柱依次用10 mL甲醇、10 mL水活化,取備用液5 mL過柱,然后用10 mL水洗滌,最后用1%甲酸﹕甲醇(1∶4,V/V)溶液5 mL洗脫,洗脫液于40 ℃水浴氮氣吹干。向殘余物中加入0.5%甲酸水溶液1.0 mL,充分溶解,過0.22 μm微孔濾膜后供液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜測定。

    1.5.6 方法靈敏度確定 將適量黏菌素標準工作液加入到空白雞蛋中,經(jīng)上述方法進行前處理后,用UPLC-QTRAP檢測,觀察藥物特征離子質(zhì)量色譜峰信噪比(S/N)和對應藥物濃度,S/N>3者為方法的檢測限,S/N>10者為方法的定量限。

    1.5.7 準確度和精密度的測定 采用標準添加法,在空白雞蛋試料中分別添加30、150、300 μg/kg三個不同濃度藥物進行回收率試驗,各濃度進行5個樣品平行試驗,重復3次,求平均回收率、批內(nèi)、批間RSD。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 定性分析 本研究使用MRM-IDA-EPI掃描模式,當MRM通道采集的信號超過100 cps時觸發(fā)EPI增強離子掃描,在保留時間2.05~2.17 min左右獲得3個不同碰撞能量(15、20、25 eV)的EPI譜圖,得到更多子離子信息。將空白雞蛋添加試樣和黏菌素標準溶液的EPI譜圖進行比對,得到6個匹配的子離子,表明本方法定性高度準確。黏菌素基質(zhì)匹配標準溶液和空白雞蛋添加試樣的EPI譜圖見圖1~圖2。

    1. 黏菌素A; 2. 黏菌素B 1. Colistin A; 2. Colistin B圖1 黏菌素基質(zhì)匹配標準溶液的EPI譜圖Fig 1 EPI(Enhanced Product Ion)of Colistin in matrix-matched standard solution

    1. 黏菌素A; 2. 黏菌素B 1. Colistin A; 2. Colistin B圖2 空白雞蛋添加黏菌素試樣的EPI譜圖Fig 2 EPI(Enhanced Product Ion)of Colistin in blank eggs spiked samples

    2.2 基質(zhì)匹配標準曲線 按照上述系列基質(zhì)匹配標準溶液濃度進行線性回歸,得到的回歸方程及相關(guān)系數(shù)見表3。從表中可以看出,雞蛋中黏菌素在20~800 μg/kg的濃度范圍內(nèi)呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系,R2大于0.990。

    2.3 方法靈敏度 按上述方法進行處理,當添加濃度為30 μg/kg時,測得黏菌素的S/N>10,說明方法定量限為30 μg/kg;當添加濃度為10 μg/kg時,測得黏菌素的S/N>3,說明方法檢測限為10 μg/kg。30 μg/kg空白雞蛋添加試樣中黏菌素的特征離子質(zhì)量色譜圖見圖3。

    表3 雞蛋中黏菌素基質(zhì)匹配標準曲線Tab 3 Matrix-matched standard curve of Colistin in Eggs

    2.4 方法的回收率和精密度 在空白雞蛋中添加低、中、高三個不同濃度的黏菌素進行回收率試驗,結(jié)果匯總見表4。可以看出,空白雞蛋中黏菌素A和黏菌素B在30~300 μg/kg添加濃度范圍內(nèi)的回收率為67.2%~106%,批內(nèi)、批間RSD均<20%。

    3 討論與結(jié)論

    3.1 提取溶劑的選擇 黏菌素屬于多肽類抗生素,分子結(jié)構(gòu)中含有多個氨基,極性較強,易溶于水,可以使用極性溶劑進行提取,經(jīng)過比較試驗,本研究采用25%甲醇作為樣品的提取液,結(jié)果表明提取充分,回收率較高。

    1. 黏菌素A(390.8>101.2); 2. 黏菌素A(390.8>385.0); 3. 黏菌素B(386.2>101.0); 4. 黏菌素B(386.2>380.1) 1. Colistin A(390.8>101.2); 2. Colistin A(390.8>385.0); 3. Colistin B(386.2>101.0); 4. Colistin B(386.2>380.1)圖3 空白雞蛋添加試樣溶液中得到的特征離子質(zhì)量色譜圖(30 μg/kg)Fig 3 Qualitative ions of Colistin in Eggs(30 μg/kg)

    表4 空白雞蛋中黏菌素添加回收試驗結(jié)果Tab 4 Recoveries of Colistin in Eggs spiked samples

    3.2 凈化條件的選擇 雞蛋樣品中含有蛋白質(zhì)和脂肪等大量雜質(zhì),會對檢測結(jié)果產(chǎn)生基質(zhì)效應,本研究通過高速離心去除蛋白質(zhì)等大量雜質(zhì)的干擾,采用正己烷去除脂肪,有效地提取黏菌素藥物殘留。固相萃取法是常見的凈化方式,黏菌素可采用Strata-X[7]或HLB[13]固相萃取柱凈化,考慮到黏菌素分子結(jié)構(gòu)中含有多個氨基,經(jīng)過比較試驗,本研究采用聚合陽離子交換Plexa固相萃取柱凈化,可以有效吸附基質(zhì)中的中性和酸性干擾物,降低基質(zhì)效應。

    3.3 定性分析 根據(jù)歐盟2002/657/EC要求,要確證黏菌素至少需要3個識別點(IP),在大多數(shù)檢測方法中,一般選定母離子及兩個響應較強的子離子作為定性定量依據(jù),母離子是1個IP點,兩個子離子分別是1.5個IP點,共4個IP點,滿足檢測要求。本研究采用QTRAP質(zhì)譜儀特有的MRM-IDA-EPI掃描模式,對目標母離子進行EPI增強子離子掃描,在保留時間左右獲得更多子離子的信息,得到黏菌素子離子的特征性EPI指紋譜圖,該譜圖具有高度特異性,將空白雞蛋添加試樣和黏菌素標準溶液的EPI譜圖進行比對后,進行二次定性,得到母離子和6個匹配的子離子,共10個IP,極大地提高了定性的準確性。

    本研究利用超高效液相色譜-三重四極桿/線性離子阱復合質(zhì)譜技術(shù)建立了雞蛋中黏菌素的殘留檢測方法,前處理方法簡便快速,定量準確,EPI指紋圖二次定性特異性強,極大提高了定性的準確性,為雞蛋的食品質(zhì)量安全監(jiān)控提供了重要的技術(shù)支持。

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