水稻稻瘟病拮抗稀有放線菌的篩選及防治效果

阮宏椿，石妞妞，杜宜新，陳福如

（福建省作物有害生物監(jiān)測(cè)與治理重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/福建省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所，福州 350013）

由稻瘟病菌Magnaportheoryzae引起的稻瘟病（rice blast）是一種重要的水稻真菌病害，可引起水稻大幅減產(chǎn)，甚至顆粒無(wú)收。據(jù)統(tǒng)計(jì)，每年由稻瘟病引起的水稻減產(chǎn)可達(dá)10%～30%，損失的稻米足以養(yǎng)活超過(guò)6000萬(wàn)人[1]。目前，防治稻瘟病的主要措施包括選育種植抗病品種和化學(xué)藥劑防治，而抗病品種由于病原菌群體的遺傳變異速度較快而喪失抗性，化學(xué)藥劑防治具有防效高、成本低、操作方便等優(yōu)點(diǎn)，是防治稻瘟病的有效方法，但也存在病原菌抗藥性、農(nóng)產(chǎn)品農(nóng)藥殘留、環(huán)境污染等問(wèn)題[2-4]。因此，利用生物或其代謝產(chǎn)物防治稻瘟病具有環(huán)境友好、殘留低、不易使病原菌產(chǎn)生抗藥性等優(yōu)點(diǎn)[5,6]。隨著人們生活水平逐步提高，環(huán)境保護(hù)意識(shí)逐漸增強(qiáng)，生物防治已成為植物病害防治研究的一個(gè)重要方向。

近年來(lái)，生防菌及其代謝產(chǎn)物防治稻瘟病研究取得了一定的進(jìn)展。常用于水稻稻瘟病生防的微生物主要有真菌、細(xì)菌（放線菌）[7]。放線菌中產(chǎn)色鏈霉菌Streptomycesgriseochromogenes產(chǎn)生的滅瘟素?S[8]、春日鏈霉菌S.kasugaensis產(chǎn)生的春雷霉素[9]已用于稻瘟病防治。另有研究表明，婁徹氏鏈霉菌S.rochei[10]、灰色鏈霉菌S.griseus[11]、吸水鏈霉菌S.hygroscopicus[12]對(duì)稻瘟病菌也有較好的抑制作用。王棟等[13]從云南分離到的抗菌高麗菌Kribbellaantibioticasp.nov.對(duì)灰霉病、稻紋枯病、稻瘟病具有較強(qiáng)防治作用。鏈霉菌UPMRS4對(duì)稻瘟病菌菌絲生長(zhǎng)抑制率達(dá)98.32%，孢子懸浮液浸種可降低67.9%的發(fā)病率[14]。涂鏈霉菌OsiSH?2對(duì)稻瘟病菌菌絲生長(zhǎng)抑制率達(dá)75.3%，孢子懸浮液噴灑葉片可將自然發(fā)病的稻瘟病發(fā)病程度降低59.64%[15]。放線菌是極具代謝多樣性的微生物，世界上已發(fā)現(xiàn)的抗生素約有2/3是由放線菌產(chǎn)生的[16]。隨著分離方法的不斷改進(jìn)，那些傳統(tǒng)分離方法難以分離到的稀有放線菌被開發(fā)利用，近年來(lái)從稀有放線菌中的游動(dòng)放線菌屬Actinoplanes、小雙孢菌屬M(fèi)icrobispora、擬無(wú)枝菌酸菌屬Amycolatopsis、糖多孢菌屬Saccharopolyspora發(fā)現(xiàn)了多種抗生素[17]。研究表明，藥用植物根際的微生物，長(zhǎng)期受藥用植物根系分泌物質(zhì)的影響，其產(chǎn)生生物活性物質(zhì)的比例也顯著高于其他植物根際土壤微生物[18]。南方紅豆杉Taxuschinensisvar.mairei是一種非常重要的藥用植物資源，含有抗癌物質(zhì)紫杉醇[19]。張盼盼等[20]從紅豆杉植株和根際土壤中分離到111株放線菌，其中33株具有抑菌活性。因此，從紅豆杉根際土壤分離的稀有放線菌中篩選出對(duì)水稻稻瘟病有良好抑菌效果的拮抗菌株，對(duì)開展水稻稻瘟病生物防治具有重要的意義。

本研究以水稻稻瘟病菌為靶標(biāo)菌，從紅豆杉根際土壤中分離篩選稀有放線菌菌株，通過(guò)形態(tài)特征觀察、生理生化測(cè)定和16S rRNA、recA、gyrB和rpoB基因序列分析進(jìn)行菌株鑒定，并進(jìn)行防效測(cè)定。研究結(jié)果可為水稻稻瘟病的生物防治提供新的生防資源，為進(jìn)一步在生產(chǎn)上應(yīng)用提供參考。

1 材料與方法

1.1 供試材料

土壤樣本：江西井岡山（北緯26°74′80″，東經(jīng)114°28′92″）紅豆杉根際周圍，去除表面的土壤，采集5～20 cm深處的土壤樣品，自然風(fēng)干后，于4 ℃冰箱保存。

靶標(biāo)病原真菌：水稻稻瘟病菌M.oryzae、大豆炭疽病菌Colletotrichumtruncatum、蘆筍莖枯病菌Phomopsisasparagi、水稻稻曲病菌Ustilaginoideavirens、蘑菇褐腐病菌Mycogoneperniciosa由福建省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所分離、鑒定并保存。

供試水稻品種：廣陸矮4號(hào)、甬優(yōu)9號(hào)。

供試藥劑：75%三環(huán)唑可濕性粉劑，由江蘇豐登作物保護(hù)股份有限公司生產(chǎn)。

培養(yǎng)基：放線菌分離培養(yǎng)基為改良的HVA培養(yǎng)基[21]（淀粉2 g，KNO30.5 g，KCl 1.7g，MgSO4·7H2O 0.5 g，Na2HPO40.5 g，CaCO30.02 g，F(xiàn)eSO4·7H2O 0.01 g，硫胺素0.5 mg，煙酸0.5 mg，泛酸0.5 mg，對(duì)?氨基苯甲酸0.5 mg，核黃素0.5 mg，維生素B6 0.5 mg，肌醇0.5 mg，生物素0.25 mg，瓊脂18 g，蒸餾水1000 mL，pH 7.2，加入終濃度為100 ppm的重鉻酸鉀）；靶標(biāo)病原真菌培養(yǎng)基為PDA培養(yǎng)基；放線菌鑒定培養(yǎng)基為察氏培養(yǎng)基、葡萄糖天冬素培養(yǎng)基、甘油天冬素培養(yǎng)基、無(wú)機(jī)鹽淀粉培養(yǎng)基、ISP?2培養(yǎng)基、燕麥粉培養(yǎng)基、高氏一號(hào)培養(yǎng)基、桑塔氏培養(yǎng)基、明膠液化培養(yǎng)基、牛奶的凝固與胨化培養(yǎng)基、淀粉水解瓊脂培養(yǎng)基、硝酸鹽還原培養(yǎng)基，碳、氮源利用基礎(chǔ)培養(yǎng)基[22]。

1.2 放線菌的分離純化

采用平板稀釋法分離土壤中的放線菌[23]。將土樣用研缽磨碎，稱取樣品1 g懸浮于9 mL無(wú)菌水中，于搖床中40 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)30 min后靜置5 min，依次稀釋10倍，分別配制成10?2、10?3、10?4的懸浮液，分別吸取不同濃度的懸浮液各0.1 mL加入到改良的HVA培養(yǎng)基（加入終濃度為100 ppm的重鉻酸鉀）平板上，均勻涂布后倒置于培養(yǎng)箱中，28 ℃培養(yǎng)，5 d后挑取不同的單菌落劃線純化，純化后的菌株采用甘油法保藏于?80 ℃冰箱。

1.3 拮抗放線菌的篩選

以水稻稻瘟病菌為靶標(biāo)菌，采用平板對(duì)峙法[24]，對(duì)分離到的放線菌進(jìn)行初篩。將放線菌在PDA培養(yǎng)基靠邊緣兩側(cè)劃線接種，3 d后在平板中央接入直徑5 mm的水稻稻瘟病菌菌餅，以不接放線菌為空白對(duì)照，3次重復(fù)，28 ℃倒置培養(yǎng)，7 d后測(cè)量菌落直徑和抑菌帶寬度。選擇抑菌帶寬，抑菌活性強(qiáng)且長(zhǎng)勢(shì)旺的菌株進(jìn)行抑菌譜測(cè)定。

1.4 拮抗放線菌ST7-2抑菌譜

拮抗放線菌ST7?2接入ISP2液體培養(yǎng)基中，裝液量為80 mL/250 mL三角瓶，接種量5%，置于25 ℃、180 r/min搖床中振蕩培養(yǎng)7 d得發(fā)酵液，于4 ℃、10000 r/min冷凍離心機(jī)中離心10 min，取上清用22 μm微孔濾膜過(guò)濾得無(wú)菌發(fā)酵濾液，備用。參考姚錦愛等[25]方法，測(cè)定拮抗放線菌ST7?2對(duì)水稻稻瘟病菌、水稻稻曲病菌、蘆筍莖枯病菌、大豆炭疽病菌、蘑菇褐腐病菌的抑制效果。將無(wú)菌發(fā)酵濾液10 mL加入到90 mL的PDA培養(yǎng)基中，混合后倒入培養(yǎng)皿中，在平板中央接入直徑5 mm的病原菌菌餅。28 ℃培養(yǎng)7 d后，測(cè)量菌落生長(zhǎng)直徑，以PDA培養(yǎng)基為對(duì)照，重復(fù)3次，計(jì)算拮抗放線菌ST7?2無(wú)菌發(fā)酵濾液對(duì)病原菌菌絲生長(zhǎng)的抑制率。抑制率（%）＝（對(duì)照菌落直徑－處理菌落直徑）/（對(duì)照菌落直徑－菌餅直徑）×100。

1.5 拮抗放線菌ST7-2的鑒定

1.5.1 拮抗放線菌ST7?2形態(tài)學(xué)觀察 采用插片法[26]，將拮抗放線菌ST7?2劃線接種于察氏培養(yǎng)基、葡萄糖天冬素培養(yǎng)基、甘油天冬素培養(yǎng)基、無(wú)機(jī)鹽淀粉培養(yǎng)基、ISP?2培養(yǎng)基、燕麥粉培養(yǎng)基、高氏一號(hào)培養(yǎng)基、桑塔氏培養(yǎng)基上，置于28 ℃下培養(yǎng)，7 d后觀察有無(wú)基內(nèi)菌絲及菌絲顏色，可溶性色素，菌落生長(zhǎng)情況，觀察有無(wú)氣生菌絲及菌絲形態(tài)。

1.5.2 拮抗放線菌ST7?2生理生化特征 參照《鏈霉菌鑒定手冊(cè)》[23]的方法，測(cè)定拮抗放線菌ST7?2明膠液化、牛奶的凝固與胨化、淀粉水解、硝酸鹽還原及碳、氮源的利用等生理生化特征。

1.5.3 拮抗放線菌ST7?2的分子鑒定 用細(xì)菌基因組DNA快速提取試劑盒（天根生化科技（北京）有限公司）提取拮抗放線菌ST7?2的DNA。擴(kuò)增16S rRNA、recA基因[27]、gyrB基因[28]和rpoB基因[29]，與NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中的序列進(jìn)行Blast比對(duì)，利用MEGA 7軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹。

1.6 拮抗放線菌ST7-2對(duì)水稻稻瘟病的防效

1.6.1 室內(nèi)防效測(cè)定 以水稻稻瘟病菌為靶標(biāo)菌，開展室內(nèi)苗期防效測(cè)定，參照杜宜新等[30]方法。將廣陸矮4號(hào)水稻種子播種于25 cm×50 cm育秧盤內(nèi)，稻瘟病菌分生孢子配制成1×105孢子/mL的懸浮液，備用。試驗(yàn)設(shè)接種水稻稻瘟病菌+無(wú)菌水、接種水稻稻瘟病菌+拮抗放線菌ST7?2發(fā)酵液、接種水稻稻瘟病菌+拮抗放線菌ST7?2發(fā)酵液10倍稀釋液、接種水稻稻瘟病菌+75%三環(huán)唑WP1700倍液4個(gè)處理，每處理1盤，3次重復(fù)；水稻3葉1心期，噴霧接種水稻稻瘟病菌，每處理10 mL，2 h后再進(jìn)行分組均勻噴施，處理1噴無(wú)菌水50 mL，處理2噴拮抗放線菌ST7?2發(fā)酵液50 mL，處理3噴拮抗放線菌ST7?2發(fā)酵液10倍稀釋液50 mL，處理4噴75%三環(huán)唑WP 1700倍液50 mL，用塑料膜遮蓋保濕，并用遮光布覆蓋，24 h后去除遮光布和塑料膜，在25 ℃～28 ℃溫室內(nèi)保濕6 d，參照石妞妞等[31]的標(biāo)準(zhǔn)調(diào)查發(fā)病情況，每處理調(diào)查50株，計(jì)算病情指數(shù)和防治效果。

1.6.2 田間防效測(cè)定 在福建省南平市建陽(yáng)區(qū)水稻種植基地（東經(jīng) 117°90′14″，北緯 27°36′50″），常年稻瘟病重病田塊，水稻品種為甬優(yōu)9號(hào)。試驗(yàn)設(shè)無(wú)菌水、拮抗放線菌ST7?2發(fā)酵液、拮抗放線菌ST7?2發(fā)酵液10倍稀釋液、75%三環(huán)唑WP1700倍液、4個(gè)處理，3次重復(fù)，共計(jì)12個(gè)小區(qū)，隨機(jī)排列，每小區(qū)30 m2，每小區(qū)用藥量2000 mL。于水稻破口期開始噴霧處理，7 d后，各小區(qū)均重復(fù)噴施1次；于水稻蠟熟期，采用5點(diǎn)取樣法，每個(gè)小區(qū)調(diào)查50穗，參照GB/T 17980.19—2000《農(nóng)藥田間藥效試驗(yàn)準(zhǔn)則（一）》[32]調(diào)查穗瘟的病情，并計(jì)算病情指數(shù)和防治效果。

1.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

利用Excel 2007、SPSS軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析，采用LSD多重比較法進(jìn)行差異性檢驗(yàn)。

2 結(jié)果與分析

2.1 放線菌分離和拮抗菌篩選

從供試土壤樣品中分離獲得11株具有抗菌活性的放線菌，ST2?6、ST7?2和ST8?4 3株放線菌對(duì)水稻稻瘟病菌抑菌帶寬度大于10 mm（表1），其中菌株ST7?2抑菌帶寬度為17.33 mm，且長(zhǎng)勢(shì)旺，因此，本研究選擇ST7?2進(jìn)行下一步試驗(yàn)（圖1）。

表1 11株放線菌對(duì)水稻稻瘟病菌的抑菌效果Table 1 The inhibition effect of 11 actinomyces strains on M.oryzae

圖1 菌株ST7-2 對(duì)水稻稻瘟病菌的平板對(duì)峙效果Fig.1 Dual culture plates of control and inhibition of M.oryzae by strain ST7-2

2.2 拮抗放線菌ST7-2的抑菌譜

抑菌譜測(cè)定結(jié)果表明（表2，圖2），菌株ST7?2 無(wú)菌發(fā)酵濾液對(duì)供試的5種植物病原真菌都有不同程度的抑制作用，其中對(duì)水稻稻曲病菌抑制作用最強(qiáng)，抑制率為76.82%，對(duì)蘆筍莖枯病菌和水稻稻瘟病菌菌也具有較強(qiáng)的抑制作用，抑制率分別為60.60%和48.11%，對(duì)蘑菇褐腐病菌和大豆炭疽病菌的抑制率分別為15.13%和14.94%。

圖2 菌株ST7-2無(wú)菌發(fā)酵濾液對(duì)植物病原菌的平板抑制效果Fig.2 Inhibition of mycelia growth of 5 fungal pathogens by sterile fermentation filtrate of strain ST7-2

表2 放線菌ST7-2無(wú)菌發(fā)酵濾液對(duì)5種病原菌的抑制作用Table 2 Inhibition of mycelia growth of 5 fungal pathogens by sterile fermentation filtrate of strain ST7-2

2.3 拮抗放線菌ST7-2鑒定

2.3.1 形態(tài)特征 ST7?2在高氏一號(hào)培養(yǎng)基中菌落灰白色，表面干燥，近圓形，氣生菌絲白灰色及乳黃色，基內(nèi)菌絲酪黃色，孢子絲直、柔曲、鉤狀、松敞及緊密螺旋形，孢子橢圓形，柱形，無(wú)可溶性色素產(chǎn)生（表3）；在高氏一號(hào)、無(wú)機(jī)鹽淀粉、ISP?2、燕麥粉、桑塔氏培養(yǎng)基上生長(zhǎng)良好，在察氏、葡萄糖天冬素、甘油天冬素培養(yǎng)基上生長(zhǎng)一般；除在察氏、葡萄糖天冬素培養(yǎng)基上無(wú)氣生菌絲，在其他培養(yǎng)基上均可產(chǎn)生氣生菌絲，氣生菌絲量在甘油天冬素培養(yǎng)基上產(chǎn)生較少，在其他培養(yǎng)基上生長(zhǎng)茂盛，氣生菌絲在各培養(yǎng)基上顏色不一，多為不同深淺的白色或灰色；基內(nèi)菌絲的顏色也有多種，多為白色、黃色和綠色；在8種培養(yǎng)基中均無(wú)可溶性色素產(chǎn)生。

表3 菌株ST7-2在不同培養(yǎng)基上的培養(yǎng)特征Table 3 Culture characters of strain ST7-2 on different media

2.3.2 生理生化特征 生理生化試驗(yàn)結(jié)果（表4）表明，菌株ST7?2碳源能利用葡萄糖、甘露糖、甘露醇、乳糖、半乳糖、麥芽糖、蜜二糖、棉籽糖、海藻糖、果糖、核糖、糖原、苦杏仁苷、肌醇、甘油、葡萄糖酸鈉，不能利用山梨糖、山梨醇、蔗糖、松三糖、鼠李糖、木糖、菊糖、阿拉伯糖、水楊苷、赤蘚醇、蘋果酸鈉、馬尿酸鈉、琥珀酸鈉；氮源能利用L?脯氨酸，不能利用L?丙氨酸、L?賴氨酸、L?蘇氨酸；能凝固、胨化牛奶；硝酸鹽還原、明膠液化、酪氨基酸酶、淀粉酶試驗(yàn)均為陰性。結(jié)合形態(tài)特征觀察，初步將菌株ST7?2鑒定為鏈霉菌屬Streptomycessp.。

表4 菌株ST7-2的生理生化特征Table 4 Physiological and biochemical characteristics of strain ST7-2

2.3.3 分子鑒定 菌株ST7?2的16S rRNA、recA、gyrB和rpoB基因擴(kuò)增片段長(zhǎng)度分別為1364、806、906和785 bp，提交到Genbank獲得的登錄號(hào)分別為MW067371、MW071166、MW071167和MW071168。同源性比對(duì)（圖3）發(fā)現(xiàn)，菌株ST7?2的16S rRNA序列與利巴尼鏈霉菌S.libani、吸水鏈霉菌S.hygroscopicus、殺結(jié)節(jié)鏈霉菌S.tubercidicus、黑鏈霉菌S.nigrescens、狹霉素鏈霉菌S.angustmyceticus、扁平鏈霉菌S.platensis、暗黑漆鏈霉菌S.atrolaccus的相似性達(dá)99%以上；recA基因序列與殺結(jié)節(jié)鏈霉菌S.tubercidicus的相似性達(dá)99.60%；gyrB基因序列與殺結(jié)節(jié)鏈霉菌的相似性達(dá)100%；rpoB基因序列與殺結(jié)節(jié)鏈霉菌的相似性達(dá)99.44%；在recA、gyrB、rpoB基因序列系統(tǒng)發(fā)育樹上，與殺結(jié)節(jié)鏈霉菌聚為一簇。結(jié)合形態(tài)和生理生化特征，最終確定ST7?2為殺結(jié)節(jié)鏈霉菌。

圖3 基于16S rRNA (A)、recA (B)、gyrB (C)和rpoB (D)構(gòu)建菌株ST7-2的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of strain ST7-2 based on the sequence of 16S rRNA (A), recA (B), gyrB (C) and rpoB (D)

2.4 拮抗放線菌ST7-2的防治效果測(cè)定

2.4.1 室內(nèi)防效 室內(nèi)苗期防效測(cè)定結(jié)果表明，菌株ST7?2發(fā)酵液及其10倍稀釋液能有效降低水稻稻瘟病菌的病情指數(shù)，其防治效果分別為82.76%和62.94%。菌株ST7?2發(fā)酵液處理和75%三環(huán)唑WP 1700倍液處理組的防治效果分別為82.76%和81.01%，無(wú)顯著差異（表5，圖4）。

2.4.2 田間防效 清水對(duì)照處理的水稻穗瘟病情指數(shù)15.41，而菌株ST7?2發(fā)酵液和75%三環(huán)唑WP處理的穗瘟病情指數(shù)明顯減輕，病情指數(shù)為2.96～4.07；菌株ST7?2發(fā)酵液10倍液防治效果較低，僅為40.86%；菌株ST7?2發(fā)酵液處理防治效果為73.57%，低于75%三環(huán)唑WP 1700倍液的防治效果（表5，圖4）。

圖4 菌株ST7-2對(duì)水稻稻瘟病的室內(nèi)防治效果Fig.4 Control effects of strain ST7-2 on rice blast in the lib

表5 菌株ST7-2對(duì)水稻稻瘟病的防治效果Table 5 Control effects of strain ST7-2 on Rice blast

3 討論

迄今世界上已發(fā)現(xiàn)的抗生素約50%是由鏈霉菌產(chǎn)生的[33]，隨著對(duì)鏈霉菌的大量篩選，從鏈霉菌中獲得新的活性物質(zhì)的幾率大大降低，研究者提高并改進(jìn)分離方法，得到常規(guī)方法難分離到的稀有放線菌，從中發(fā)現(xiàn)了大量有價(jià)值的抗生素。本研究從土壤樣品中分離到11株稀有放線菌，通過(guò)篩選發(fā)現(xiàn)菌株ST7?2對(duì)水稻稻瘟病菌的抑菌效果最強(qiáng)，通過(guò)形態(tài)特征、生理生化特征觀察和16S rRNA、recA、gyrB與rpoB基因序列分析，確定該菌株為鏈霉菌屬的殺結(jié)節(jié)鏈霉菌。菌株ST7?2對(duì)水稻稻瘟病菌有較好的抑制效果，抑菌帶寬度達(dá)17.33 mm，其發(fā)酵液對(duì)水稻稻瘟病菌的室內(nèi)防效可達(dá)82.76%，與75%三環(huán)唑WP 1700倍液無(wú)顯著差異，田間試驗(yàn)的防治效果達(dá)73.57%，略低于75%三環(huán)唑WP 1700倍液處理。菌株ST7?2對(duì)水稻稻瘟病菌絲生長(zhǎng)的抑制率低于鏈霉菌UPMRS4和涂鏈霉菌OsiSH?2，但是對(duì)病害防治效果高于UPMRS4和 OsiSH?2[14,15]。

鏈霉菌的應(yīng)用于生物防治除了利用活體競(jìng)爭(zhēng)作用、誘導(dǎo)或提高植物抗病性外，很重要的是利用其代謝產(chǎn)物防治病害。研究表明，殺結(jié)節(jié)鏈霉菌是一種稀有放線菌，其代謝產(chǎn)物殺結(jié)核菌素 tubercidin具有很強(qiáng)的生物活性[34]。殺結(jié)節(jié)鏈霉菌NBRC13090代謝產(chǎn)物tubercidin 對(duì)白色念珠菌，結(jié)核分枝桿菌和糞鏈球菌具有生物活性[34]。Ratti等[35]從Solanunlycocarpum中分離到一株殺結(jié)節(jié)鏈霉菌，經(jīng)測(cè)定其對(duì)金黃色葡萄球菌、大腸桿菌和白色念珠菌具有抗菌活性，其粗提物對(duì)金黃色葡萄球菌和大腸桿菌具有抗菌活性。菌株ST7?2粗提物對(duì)多種病原真菌都有抑菌活性，不僅對(duì)水稻稻瘟病菌和水稻稻曲病菌抑菌活性強(qiáng)，菌絲生長(zhǎng)抑制率為48.11%和76.82%，而且對(duì)蘆筍莖枯病菌、蘑菇褐腐病菌和大豆炭疽病菌等也有較好的拮抗作用，菌絲生長(zhǎng)抑制率分別為60.60%、15.13%和14.94%。

生防菌應(yīng)用于生產(chǎn)，土壤有機(jī)質(zhì)、溫度、濕度等外界環(huán)境的不穩(wěn)定性是拮抗菌面臨的一個(gè)重要問(wèn)題，本研究中菌株ST7?2在室內(nèi)和田間試驗(yàn)都表現(xiàn)出較好的防效，可替代三環(huán)唑等部分生產(chǎn)中防控稻瘟病的常用化學(xué)藥劑，生防應(yīng)用前景廣闊。本研究?jī)H對(duì)ST7?2活菌及其粗提物防治稻瘟病進(jìn)行研究，后續(xù)將進(jìn)一步分析其代謝產(chǎn)物中的抑菌活性物質(zhì)，明確其抑菌機(jī)制，以期更好地利用拮抗菌株防控作物致病菌。