丁 祎, 張銘宇, 龐 維, 鄭 麗, 曹雅明
(中國醫(yī)科大學(xué) 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院免疫教研室,遼寧 沈陽 110122)
瘧疾是瘧原蟲通過媒介昆蟲蚊傳播的威脅人類最為嚴(yán)重的寄生原蟲感染性疾病[1]。隨著氯喹、青蒿素等一線抗瘧藥物的普遍應(yīng)用,瘧疾得到了很好地控制[2-5]。但是流行區(qū)人群普遍存在的混合感染,以及難以抵御瘧原蟲的再次感染,成為根除瘧疾的一大難點(diǎn)。瘧原蟲保護(hù)性免疫的研究證實(shí),感染早期宿主建立Th1型免疫應(yīng)答,產(chǎn)生IFN-γ和NO,巨噬細(xì)胞活化等免疫效應(yīng),能夠控制感染早期瘧原血癥的增長(zhǎng)。感染后期向Th2型免疫應(yīng)答的過度,是宿主根除瘧原蟲的關(guān)鍵[6]??贵w是獲得性免疫的主要組成成分,在保護(hù)機(jī)體抵抗瘧原蟲感染中起重要的作用。瘧原蟲感染宿主后,機(jī)體會(huì)產(chǎn)生大量針對(duì)瘧原蟲的特異性抗體,抗體水平、時(shí)間的維持,以及是否產(chǎn)生以拮抗瘧原蟲侵入為主要功能的抗體,可能是決定宿主抵抗瘧原蟲感染的根本原因[7]??贵w也是再次免疫應(yīng)答的重要免疫分子,在抵抗瘧原蟲再次感染以及交叉感染中發(fā)揮重要作用[8-9]。流行區(qū)患者對(duì)瘧原蟲再次感染以及交叉感染抵御能力不足,可能與宿主產(chǎn)生的抗瘧原蟲特異性抗體的類型與種類有關(guān)。對(duì)宿主特異性抗體特點(diǎn)的研究,確定感染過程中蟲體作為重要微生物抗原刺激機(jī)體產(chǎn)生抗體的差異,無疑為瘧疾感染保護(hù)性免疫應(yīng)答的闡明提供重要的理論依據(jù)。本研究運(yùn)用兩種不同蟲株的鼠瘧原蟲(約氏瘧原蟲與伯氏瘧原蟲)分別感染BALB/c小鼠,通過氯喹和青蒿素聯(lián)合應(yīng)用治愈小鼠后,再次感染小鼠,構(gòu)建小鼠同種瘧原蟲感染的二次感染模型。獲得小鼠初次與再次免疫血清,比較抗體產(chǎn)生水平及特點(diǎn),對(duì)免疫血清中優(yōu)勢(shì)抗體進(jìn)行抗原追蹤,確定誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生優(yōu)勢(shì)抗體的抗原特點(diǎn),探討抗原對(duì)宿主建立保護(hù)性免疫的影響與意義。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)小鼠及蟲株 6~8周齡、雌性BALB/c小鼠購自北京維通利華。約氏瘧原蟲 (Plasmodiumyoelii)(P.y17XL)、伯氏瘧原蟲 (Plasmodiumberghei)(P.bANKA) 由日本愛媛大學(xué)分子寄生蟲學(xué)教研室惠贈(zèng)。
1.1.2 培養(yǎng)基 LB液體培養(yǎng)基。
1.1.3 主要試劑及儀器 96孔酶標(biāo)板、包被液、終止液、5×SDS凝膠加樣緩沖液和Tween-20購自北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限公司;HRP-Goat antimouse IgG購自AB clonal;甲醇和NaCl購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;Tris、Glycine、SDS和BSA購自美國Genview公司;SDS-PAGE凝膠配制試劑盒和TMB顯色液購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;Super Signal West Pico試驗(yàn)試劑盒和蛋白Marker購自Thermo;脫脂奶粉購自美國BD公司;酶標(biāo)儀購自BIO-RAD;ECL發(fā)光儀購自上海天能科技有限公司。
1.2.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物分組與感染 將BALB/c小鼠按照隨機(jī)原則分為3組。第1組小鼠不做處理,為正常對(duì)照組(Control);第2組小鼠經(jīng)腹腔感染1×106P.y17XL寄生的紅細(xì)胞;第3組小鼠經(jīng)腹腔感染1×106P.bANKA寄生的紅細(xì)胞。小鼠感染后第5天,進(jìn)行氯喹加青蒿素灌胃治療,感染后不同時(shí)間采取小鼠尾靜脈血,制備薄血膜,Giemsa染色,鏡檢計(jì)數(shù)紅細(xì)胞感染率。待鏡檢不能查到感染紅細(xì)胞,計(jì)時(shí)35 d后對(duì)治愈小鼠再次感染同種瘧原蟲,構(gòu)建鼠瘧二次感染模型。感染過程中定期尾靜脈采血,獲得免疫血清。
1.2.2 ELISA方法檢測(cè)初次感染和再次感染血清中抗瘧原蟲特異性抗體水平 分別用P.y17XL、P.bANKA抗原5 μg/mL包被酶標(biāo)板100 μL/孔,37 ℃過夜,洗板后5% BSA 300 μL/孔 37 ℃封閉1 h,洗板后加入相應(yīng)的抗血清(1∶200稀釋)100 μL/孔,37 ℃,2 h,PBST洗板后加入HRP羊抗鼠IgG (1∶5 000稀釋)100 μL/孔,37 ℃,1 h,充分洗板加入TMB 200 μL/孔避光30 min后加終止液50 μL/孔,酶標(biāo)儀450 nm檢測(cè)吸光度。
1.2.3 Western Blot檢測(cè)不同鼠瘧模型免疫血清反應(yīng)模式 10%SDS凝膠中分別加入P.y17XL、P.bANKA蛋白50 μg/孔,電泳50 V,30 min,70 V,2 h,將凝膠安裝至“三明治”裝置后,轉(zhuǎn)膜60 V,2 h,封閉液室溫?fù)u床封閉2 h,TBST洗膜3次后加入相應(yīng)的抗血清(1∶100稀釋),4 ℃搖床過夜,TBST洗膜3次后加入HRP羊抗鼠IgG(1∶5 000稀釋),室溫?fù)u床2 h,TBST充分洗膜后,利用HRP-ECL原理發(fā)光。
1.2.4 MSP-1重組蛋白制備 將測(cè)序正確的MSP1-pET28a重組質(zhì)粒在Rosetta感受態(tài)細(xì)胞中進(jìn)行轉(zhuǎn)化。倒置平板,37 ℃培養(yǎng)16 h后,挑取含重組質(zhì)粒的單菌落于3 mL的LB液體培養(yǎng)基(卡那抗性)中,37 ℃搖床培養(yǎng)后,取100 μL菌液接種于100 mL LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃搖床培養(yǎng)后,將100 mL菌液加入到2 000 mL LB液體培養(yǎng)基中37 ℃培養(yǎng)至OD600約0.6,降低培養(yǎng)溫度到30 ℃,加入適量的IPTG(0.5 mmol)繼續(xù)震蕩培養(yǎng)3~4 h。8 000 r/min離心3 min收集菌體,重懸于50 mL預(yù)冷NTA-0緩沖液中,冰浴30 min。超聲破碎菌體,參數(shù)設(shè)置為功率200 W、工作3 s、暫停4 s、時(shí)間25~30 min。16 000 r/min,4 ℃離心50 min,收集上清及沉淀。上清蛋白溶液用0.22 μm過濾器過濾備用:準(zhǔn)備Ni-NTA柱以1 mL/min的流速上樣上清蛋白溶液,以NTA-0緩沖液(pH 8.0)洗柱至流出液不含蛋白(G250檢測(cè)液不變色);分別以20、60、200和500 mmol咪唑洗脫,分段收集洗脫液至G250檢測(cè)液不變色;以3倍柱體積去離子水洗滌柱料,以20%乙醇封柱;對(duì)收集的洗脫液進(jìn)行SDS-PAGE電泳檢測(cè)。
1.2.5 質(zhì)譜鑒定(LC/MS/MS or Q-E) 將伯氏瘧原蟲全蟲蛋白進(jìn)行SDS-PAGE電泳后,將55 kD目的條帶切下交由華大公司使用Easy-nLC 1 200液相系統(tǒng)、高pH分離液相色譜儀等進(jìn)行了質(zhì)譜驗(yàn)證。
1.2.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用GraphPad PRISM TM對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤表示。2組比較用兩獨(dú)立樣本的t檢驗(yàn),3組以上數(shù)據(jù)運(yùn)用one-way ANOVA檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
P.y17XL初次感染后第3天小鼠原蟲血癥逐步升高,至第6天原蟲血癥達(dá)到50%。P.y17XL再次感染治愈小鼠,小鼠外周血中無瘧原蟲感染的紅細(xì)胞(圖1A)。P.bANKA初次感染后第3天小鼠原蟲血癥開始增高,至第12天原蟲血癥達(dá)到60%。P.bANKA再次感染小鼠后第4天外周血中可見瘧原蟲感染的紅細(xì)胞,感染后第5至8天原蟲血癥低于P.bANKA初次感染組(P<0.05)。P.bANKA再次感染后第9至10天原蟲血癥下降,第10至15天原蟲血癥增高并維持在50%~60%(圖1B)。P.y17XL初次感染后第5天小鼠開始出現(xiàn)死亡,至第7天時(shí)全部死亡。P.y17XL再次感染后小鼠全部存活(圖1C)。P.bANKA初次感染后第8天小鼠開始出現(xiàn)死亡,至第12天小鼠全部死亡。P.bANKA再次感染后第11天小鼠開始出現(xiàn)死亡,至第15天小鼠全部死亡(圖1D)。
小鼠治愈后再次感染P.bANKA獲得的二次免疫血清與P.bANKA全蟲抗原具有較好的免疫反應(yīng)性,與未感染小鼠血清、一次免疫血清都具有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.01)。P.y17XL初次感染小鼠后獲得的一次免疫血清與P.y17XL全蟲抗原有較好的免疫反應(yīng),和未感染小鼠血清相比具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.01),小鼠治愈后再次感染P.y17XL獲得的二次免疫血清不僅同未感染小鼠血清相比具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),同初次感染血清相比也有顯著差異(P<0.01)。
P.y17XL再次感染小鼠獲得的二次免疫血清與P.y17XL全蟲抗原反應(yīng)后在分子量40 kD附近出現(xiàn)主要反應(yīng)條帶。P.bANKA再感染獲得的二次免疫血清與P.bANKA全蟲抗原反應(yīng)后在35~55 kDa范圍內(nèi)出現(xiàn)了3條主要反應(yīng)條帶(圖3A)。MSP-1與AMA-1是目前研究瘧原蟲紅內(nèi)期的領(lǐng)軍蟲體抗原,通過全蟲抗原與抗MSP-1和抗AMA-1抗體反應(yīng)發(fā)現(xiàn),P.y17XL感染小鼠獲得的免疫血清同抗MSP-1抗體具有相似的反應(yīng)條帶,提示P.y17XL感染小鼠刺激免疫系統(tǒng)后誘導(dǎo)了大量針對(duì)MSP-1的抗體,而P.bANKA感染小鼠誘導(dǎo)的免疫血清反應(yīng)模式同P.y17XL截然不同,對(duì)這3條主要反應(yīng)條帶55、40以及35 kD進(jìn)行灰度值測(cè)定,比較3條條帶的反應(yīng)強(qiáng)度,但未見有明顯統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖3B),提示P.bANKA具有多種蟲體抗原誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生相應(yīng)特異性抗體的特點(diǎn),40 kD附近條帶可能為抗MSP-1反應(yīng)條帶,但抗MSP-1抗體不是P.bANKA免疫血清中的優(yōu)勢(shì)抗體。
圖1 P.y 17XL、P.b ANKA初次感染和再次感染小鼠瘧原血癥和生存率Fig.1 Parasitemia and survival rate of mice infected with P.y 17XL and P.b ANKA in primary and secondary infection A:P.y 17XL初次感染和再次感染的瘧原蟲血癥;B:P.b ANKA初次感染和再次感染的原蟲血癥;C:P.y 17XL初次感染和再次感染的生存率;D:P.b ANKA初次感染和再次感染的生存率;*:P<0.05 A:The parasitemia of mice infected with P.y 17XL in primary and secondary infections;B:The parasitemia of mice infected with P.b ANKA in primary and secondary infections;C:The survival of mice infected with P.y 17XL in primary and secondary infections;D:The survival of mice infected with P.b ANKA in primary and secondary infections;*:P<0.05
圖2 ELISA檢測(cè)特異性抗體水平Fig.2 ELISA detect specific antibody levels **:與未感組比P<0.01;##:與初感組比P<0.01 **: compared with the uninfluenced group P<0.01 ; ##: compared with the uninfected group P<0.01
圖3 Western Blot檢測(cè)血清中優(yōu)勢(shì)抗體Fig.3 Western Blot detects dominant antibodies in serum A:Western Blot條帶,1: P.y 17XL再感血清與P.y 17XL抗原反應(yīng), 2: P.b ANKA再感血清與P.b ANKA抗原反應(yīng), 3: 兔抗MSP-1抗體與P.y 17XL抗原反應(yīng), 4:兔抗AMA-I抗體與P.y 17XL抗原反應(yīng);B:灰度值測(cè)量 A:Western Blot bands, 1: P.y 17XL re-infection serum reacts with P.y 17XL antigen, 2: P.b ANKA re-infection serum reacts with P.b ANKA antigen, 3: Rabbit anti-MSP-1 antibody reacts with P.y 17XL antigen, 4: Rabbit anti-AMA-1 antibody reacts with P.y 17XL antigen;B: Dominant band gray value
MSP-1抗原分布于瘧原蟲裂殖子表面,在瘧原蟲裂殖子黏附紅細(xì)胞,侵入紅細(xì)胞等生理功能中發(fā)揮重要的生物學(xué)作用。P.y17XL與P.bANKA感染血清與相應(yīng)的MSP-1重組蛋白反應(yīng),同時(shí)用未感染血清做對(duì)照發(fā)現(xiàn)同種瘧原蟲感染血清與相應(yīng)重組蛋白具有較強(qiáng)的免疫反應(yīng)。3組血清與PyMSP-1重組蛋白反應(yīng),以P.y17XL感染血清反應(yīng)最強(qiáng)(P<0.01)(圖4A);而與PbMSP-1重組蛋白反應(yīng),以P.bANKA感染血清最強(qiáng)(P<0.01)(圖4B),提示瘧原蟲感染過程中,蟲體MSP-1抗原能夠刺激宿主產(chǎn)生相應(yīng)特異性抗體。
圖4 P.y 17XL、P.b ANKA與同種MSP-1重組蛋白的反應(yīng)Fig.4 Reaction of P.y 17XL and P.b ANKA with the same strain recombinant protein of MSP-1 A:PyMSP-1重組蛋白包板;B:PbMSP-1重組蛋白包板;**: P<0.01 A:PyMSP-1 coating;B:PbMSP-1 coating;**: P<0.01
P.bANKA再次感染小鼠獲得的二次免疫血清與蟲體蛋白反應(yīng)在55 kD出現(xiàn)主要反應(yīng)條帶,通過質(zhì)譜分析進(jìn)行蛋白鑒定,發(fā)現(xiàn)滿足評(píng)分較高,在瘧原蟲紅內(nèi)期表達(dá)且具有分泌信號(hào)肽或跨膜肽段的抗原有PbANKA_0702800、PbANKA_020920、PbANKA_110220,具有較高可能性刺激小鼠產(chǎn)生特異性抗體(表1)。
表1 伯氏瘧原蟲55 kD蛋白候選抗原預(yù)測(cè)表
瘧疾與結(jié)核病、艾滋病被世界衛(wèi)生組織(WHO)列為優(yōu)先防御的三大感染性疾病[10-12]。瘧原蟲發(fā)育過程經(jīng)歷肝內(nèi)期、紅內(nèi)期與蚊內(nèi)期三個(gè)階段,宿主對(duì)紅內(nèi)期瘧原蟲產(chǎn)生的特異性抗體在降低瘧原蟲血癥和抵御重癥瘧疾發(fā)揮重要作用[13-15]。瘧疾流行區(qū)患者的反復(fù)感染以及交叉感染一直都是目前根治瘧疾的重點(diǎn)與難點(diǎn)。在流行區(qū),交叉反應(yīng)可能在保護(hù)宿主和阻止瘧疾傳播中起重要作用。少數(shù)研究報(bào)道了產(chǎn)生交叉免疫反應(yīng)的交叉反應(yīng)性,但是人們對(duì)交叉反應(yīng)的程度,特別是密切相關(guān)的物種知之甚少。有研究調(diào)查顯示流行區(qū)間日瘧原蟲血液階段抗原特異性抗體對(duì)諾氏瘧原蟲寄生蟲的種間反應(yīng)性和生長(zhǎng)具有抑制活性。結(jié)果發(fā)現(xiàn)來自免疫動(dòng)物和人類瘧疾患者的針對(duì)間日瘧原蟲抗原的抗體IgG抑制了諾氏瘧原蟲侵襲紅細(xì)胞。在血液階段,抗間日瘧原蟲與諾氏瘧原蟲的抗體之間存在廣泛的交叉反應(yīng)性,并且這些抗體可以有效抑制體外侵襲,從而突出了流行地區(qū)的潛在交叉保護(hù)免疫力[16-18]??贵w是再次免疫應(yīng)答的重要產(chǎn)物,在瘧疾重復(fù)感染中有重要的作用[19];由于共同抗原的存在,抗體與不同瘧原蟲蟲株存在一定的交叉反應(yīng),抗體對(duì)瘧原蟲混合感染以及不同蟲株的感染具有一定的保護(hù)性作用[20]。
本研究對(duì)瘧原蟲同種蟲株建立的再感染模型進(jìn)行研究,結(jié)果顯示瘧原蟲免疫血清與瘧原蟲抗原具有較好的免疫反應(yīng)性,再次應(yīng)答具有顯著的加強(qiáng)效應(yīng)。免疫血清與MSP-1具有較好的反應(yīng)性。免疫血清與瘧原蟲抗原的反應(yīng)模式顯示,P.y17XL主要產(chǎn)生抗MSP-1為主的抗體,這種抗體在宿主抵抗瘧原蟲再感染中發(fā)揮保護(hù)性作用,宿主可完全抵抗同蟲株瘧原蟲再感染。P.bANKA除了產(chǎn)生抗MSP-1抗體之外,免疫血清中還具有其他抗瘧原蟲抗體,因此有效抵抗瘧原蟲的保護(hù)性抗體水平降低,宿主不能抵抗P.bANKA的再次感染,這也可能是P.bANKA再感染模型瘧原蟲血癥稍微降低以及生存期得到較短延長(zhǎng)的原因??贵w在瘧原蟲再感染的保護(hù)性免疫中起至關(guān)重要的作用;對(duì)流行區(qū)患者抗體模式的驗(yàn)證以及誘導(dǎo)宿主產(chǎn)生有效抗體無疑為構(gòu)建瘧疾疫苗提供有效的實(shí)驗(yàn)性數(shù)據(jù)。