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    發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞氧化應(yīng)激損傷的保護作用

    2021-08-09 09:34:30李海枝王曙賓郭珊珊于有強劉義鳳潘聰吳逸民周志橋夏凱李雅麗
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2021年15期
    關(guān)鍵詞:火麻仁蛋白粉氧化應(yīng)激

    李海枝,王曙賓,郭珊珊,于有強,劉義鳳,潘聰,吳逸民,周志橋,夏凱*,李雅麗*

    1(中國食品發(fā)酵工業(yè)研究院有限公司,北京,100015)2(功能主食創(chuàng)制與慢病營養(yǎng)干預(yù)北京市重點實驗室,北京,100015)3(漢義生物科技(北京)有限公司,北京,100020)

    氧化應(yīng)激一般是指細胞暴露于高濃度氧分子或氧的化學(xué)衍生物而引起的細胞損傷[1]。此時氧自由基通過與蛋白質(zhì)和脂質(zhì)以及DNA等生物大分子相互作用,引發(fā)DNA片段斷裂、蛋白質(zhì)功能缺陷以及各種毒性物聚集,同時使機體的氧化防御系統(tǒng)出現(xiàn)變化,最終導(dǎo)致如糖尿病、炎癥以及癌癥等疾病的發(fā)生[2-3]。因此,建立氧化應(yīng)激模型對研究以及篩選抗氧化藥物以及功能性食品都至關(guān)重要[4-6]?,F(xiàn)階段,利用H2O2建立氧化應(yīng)激模型最為廣泛[7-9]。而偶氮二異丁基二鹽酸鹽(azodiisobutyl decarbonate,AAPH)是一種小分子偶氮引發(fā)劑,也可誘導(dǎo)過氧自由基的生成,進而應(yīng)用于氧化應(yīng)激模型的構(gòu)建[10-11]。

    火麻仁是一種優(yōu)良的膳食性蛋白質(zhì)來源[12-13],其主要是以麻仁球蛋白和麻仁白蛋白的形式存在。麻仁蛋白中不含有寡聚糖、胰蛋白酶抑制劑等抗營養(yǎng)因子,不會造成蛋白質(zhì)吸收障礙、反胃等不適癥狀,因此火麻仁蛋白是良好的易消化蛋白的來源。同時,研究發(fā)現(xiàn)火麻仁具有鎮(zhèn)痛、抗炎、抗血栓、改善記憶以及抗疲勞等作用,其火麻仁油以及提取物均具有抗氧化和抗衰老的作用[14-17]。因此,利用火麻仁蛋白開發(fā)研究食品、藥品、保健產(chǎn)品將具有很廣闊的發(fā)展前景。

    本研究為提高火麻仁蛋白的吸收特性以及風(fēng)味,對火麻仁蛋白進行發(fā)酵,之后利用AAPH誘導(dǎo)HepG2細胞氧化應(yīng)激模型探究發(fā)酵火麻仁蛋白粉的抗氧化能力,旨在從細胞活力、細胞形態(tài)、抗氧化酶活力以及胞內(nèi)活性氧(reactive oxygen species,ROS)水平等方面綜合評價該物質(zhì),從而為火麻仁功能性食品的開發(fā)提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    HepG2細胞,中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所;火麻仁蛋白粉,遼寧俏牌生物科技有限公司;DMEM(Dulbecco’s modified eagle medium)培養(yǎng)基、磷酸鹽緩沖液(phosphate-buffered saline,PBS),中科邁晨科技有限公司;新生牛血清,美國Gibco;AAPH,Sigma公司;Cell Counting Kit-8(CCK-8)試劑盒、2′,7′-二氯二氫熒光素二乙酸酯(2′,7′-dichlorodi-hydrofluorescein diacetate,DCFH-DA)、胰蛋白酶、RIPA裂解液,碧云天生物技術(shù)研究所;BCA蛋白濃度測定試劑盒、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)試劑盒、丙二醛(malondialdehyde,MDA)試劑盒、谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)試劑盒,南京建成生物工程研究所;TransZol Up裂解液、RNA提取試劑盒,北京全式金生物。

    1.2 儀器與設(shè)備

    生物安全柜,濟南鑫貝西生物技術(shù)有限公司;CO2培養(yǎng)箱,松下公司;CKX41型倒置生物顯微鏡,奧林巴斯公司;分析天平,梅特勒-托利多儀器有限公司;Spectra Max酶標儀(i3),MD公司;手持細胞計數(shù)器,密理博中國有限公司;實時熒光定量PCR儀,伯樂生命醫(yī)學(xué)產(chǎn)品有限公司。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 發(fā)酵火麻仁蛋白粉制備工藝[18-19]

    得到的發(fā)酵火麻仁蛋白粉用于后續(xù)實驗。

    1.3.2 發(fā)酵火麻仁蛋白粉蛋白質(zhì)含量測定

    參照GB/T 23530—2009《酵母抽提物》進行測定。

    1.3.3 HepG2細胞的體外培養(yǎng)

    HepG2為貼壁細胞,可將其培養(yǎng)于含有10%新生牛血清、100 U/mL青霉素和100 U/mL鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基中,于37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中溫育,取對數(shù)期細胞進行實驗。

    1.3.4 HepG2細胞氧化應(yīng)激模型構(gòu)建[20]

    1.3.4.1 AAPH的CCK-8細胞毒理學(xué)實驗

    取96孔細胞培養(yǎng)板,每孔加100 μL細胞懸液,細胞濃度為1.5×105個/mL,37 ℃培養(yǎng)24 h后棄去培養(yǎng)液,用PBS清洗1次,每孔加入100、200、400、600、800 μmol/L等5個不同濃度的AAPH 100 μL,以無AAPH的相同培養(yǎng)基孵育細胞為對照,培養(yǎng)24 h后每孔加CCK-8溶液于37 ℃避光孵育2 h,用酶標儀測定吸光度值。

    1.3.4.2 氧化應(yīng)激細胞模型的構(gòu)建

    選取對細胞生長無顯著影響的AAPH濃度誘導(dǎo)氧化應(yīng)激細胞模型,各組細胞加樣處理24 h后,小心棄去培養(yǎng)液,用PBS清洗,加入25 μmol/L的DCFH-DA,避光條件下作用30 min,吸出DCFH-DA用PBS清洗,后加入200 μL的PBS。用酶標儀測定細胞在490 nm波長的激發(fā)光下熒光物質(zhì)2′,7′-二氯熒光素(2′,7′-Dichlorofluorescein,DCF)在535 nm波長下的發(fā)射光。

    1.3.5 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞氧化應(yīng)激損傷的預(yù)保護作用

    分別選取10、30、50、100、200 μg/mL等5個不同濃度的發(fā)酵火麻仁蛋白粉樣品研究其對HepG2細胞增殖的影響,實驗方法同1.3.4.1。

    在建立的氧化應(yīng)激細胞模型的基礎(chǔ)上觀察發(fā)酵火麻仁蛋白粉對氧化應(yīng)激損傷細胞產(chǎn)生的預(yù)保護作用。

    將細胞以2×105個/mL濃度接種于6孔板,待細胞貼壁生長后,用PBS潤洗細胞,加入不同的處理液。對照組為無酚紅的純培養(yǎng)基;模型組為添加AAPH組;試驗組為將AAPH與發(fā)酵火麻仁蛋白粉溶液混合(發(fā)酵火麻仁蛋白粉終質(zhì)量濃度10~30 mg/mL)。細胞上樣后37 ℃孵育24 h,測定各組的SOD、ROS、MDA、GSH-Px。SOD、MDA、GSH-Px測定方法按照試劑盒說明書[23-24];ROS測定方法同1.3.4.2。

    1.3.6 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞抗氧化相關(guān)基因的影響

    細胞處理過程同1.3.4.2。清洗樣品處理后的細胞,每10 cm2生長的培養(yǎng)細胞中加入1 mL的TransZol Up,采用全式金總RNA提取試劑盒提取,得到細胞總RNA后,根據(jù)試劑盒配制體系。

    基因定量分析采用全式金TransScript Probe One-Step qRT-PCR SuperMix試劑盒。PCR反應(yīng)條件為:45 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,94 ℃ 5 s;60 ℃ 1 min,循環(huán)40次;PCR擴增完畢后,對其進行半定量分析。引物序列見表1。

    表1 引物序列

    采用2-△△CT計算基因表達的相對量,具體如下:

    △CT=△CT(目的基因)-△CT(內(nèi)參基因);

    △△CT=△CT(待測樣本)-△CT(校準樣本);

    相對表達量=2-△△CT

    1.3.7 統(tǒng)計學(xué)處理實驗數(shù)據(jù)

    2 結(jié)果與分析

    2.1 發(fā)酵火麻仁蛋白粉蛋白質(zhì)含量

    根據(jù)國標法檢測得到發(fā)酵火麻仁蛋白粉蛋白質(zhì)含量為79%。

    2.2 HepG2細胞氧化應(yīng)激模型

    2.2.1 AAPH對HepG2細胞增殖的影響

    如圖1所示,由于AAPH對細胞具有一定的損傷作用,隨著AAPH濃度的增加,細胞存活率逐漸下降。當AAPH濃度達到800 μmol/L時顯著抑制細胞生長(P<0.05),因此選擇AAPH濃度100~600 μmol/L進行后續(xù)實驗。

    圖1 不同AAPH濃度對HepG2細胞活力的影響

    2.2.2 AAPH對HepG2細胞ROS的影響

    細胞內(nèi)過量的ROS會損害細胞,導(dǎo)致細胞內(nèi)還原氧化穩(wěn)態(tài)的改變,發(fā)生氧化應(yīng)激現(xiàn)象,進而對細胞造成氧化損傷[21-22]。因此,細胞內(nèi)ROS可以直接反映細胞氧化損傷的程度。各組細胞經(jīng)過處理后所檢測到的細胞內(nèi)ROS水平如圖2所示。處理24 h后,AAPH濃度越高ROS含量也越高,在800 μmol/L時同對照相比,差異顯著(P<0.05)。結(jié)合AAPH對HepG2細胞增殖的影響,AAPH造模濃度最終選擇600 μmol/L。

    圖2 不同AAPH濃度對HepG2細胞內(nèi)ROS的影響

    2.3 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對模型細胞抗氧化活性的影響

    2.3.1 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞增殖的影響

    圖3為發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞毒性的影響,在質(zhì)量濃度為10~30 mg/mL時,發(fā)酵火麻仁蛋白均不影響HepG2細胞的活力。因此,可選取10~30 μg/mL中的任意濃度用于后續(xù)細胞實驗??紤]到發(fā)酵火麻仁蛋白粉對氧化應(yīng)激細胞模型的調(diào)節(jié)作用可能與劑量有關(guān),因此,后續(xù)實驗各組均選擇低劑量(10 mg/mL)、中劑量(20 mg/mL)和高劑量(30 mg/mL)3種濃度。

    圖3 不同濃度發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞活力的影響

    2.3.2 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞ROS的影響

    各組細胞經(jīng)過處理后所檢測到的細胞內(nèi)ROS水平如圖4所示。與對照組相比,模型組胞內(nèi)熒光值顯著升高(P<0.05),約為對照組的1.25倍。說明AAPH可有效提高胞內(nèi)ROS水平。與模型組相比,發(fā)酵火麻仁蛋白粉組細胞內(nèi)ROS含量顯著降低,且隨著濃度的增加,細胞內(nèi)ROS含量也逐漸下降,表明發(fā)酵火麻仁蛋白粉能顯著降低胞內(nèi)ROS水平(P<0.05)。

    圖4 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞內(nèi)ROS的影響

    2.3.3 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞SOD的影響

    SOD是機體抗氧化的主要酶類之一,SOD活力也是判定化合物抗氧化能力的指標之一[23]。由圖5可知,HepG2細胞在經(jīng)AAPH作用后,細胞內(nèi)SOD活力顯著低于對照組(P<0.05)。與模型組細胞相比,發(fā)酵火麻仁蛋白粉能夠顯著提高SOD活力,這說明AAPH的造模液能降低HepG2細胞SOD活力,使細胞清除自由基能力下降,最終導(dǎo)致細胞損傷;而發(fā)酵火麻仁蛋白粉能夠顯著提高模型細胞SOD的活力,對維持機體細胞內(nèi)的氧化和抗氧化平衡非常重要,可清除氧自由基,減輕組織細胞的過氧化損傷,且數(shù)據(jù)表明,發(fā)酵火麻仁蛋白粉對提高SOD活力具有濃度依賴性。

    圖5 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞內(nèi)SOD的影響

    2.3.4 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞MDA的影響

    當機體受到有害刺激或抵御惡劣環(huán)境時所產(chǎn)生的ROS攻擊細胞膜上的不飽和脂肪酸,從而破壞細胞膜結(jié)構(gòu)的完整性。因而,細胞內(nèi)MDA含量可反映機體內(nèi)脂質(zhì)過氧化的程度,進而間接反映細胞氧化損傷程度[24],發(fā)酵火麻仁蛋白粉對模型細胞中MDA含量的影響如圖6所示。與對照組相比,模型組細胞內(nèi)MDA的含量顯著升高(P<0.05),表明模型組細胞產(chǎn)生大量的MDA。與模型組相比,樣品組細胞內(nèi)MDA的含量顯著下降,說明發(fā)酵火麻仁蛋白粉能夠保護細胞抵御氧化損傷。

    圖6 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞內(nèi)MDA的影響

    2.3.5 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞GSH-Px的影響

    GSH-Px活力能間接反映機體的氧化應(yīng)激水平,同時也可以判斷化合物的抗氧化能力。發(fā)酵火麻仁蛋白粉對氧化應(yīng)激HepG2細胞中GSH-Px活力的影響如圖7所示。與對照組相比,模型組細胞內(nèi)GSH-Px的活力顯著下降(P<0.05),說明AAPH降低細胞內(nèi)GSH-Px活力,致使細胞的抗氧化能力下降,甚至導(dǎo)致細胞氧化損傷。樣品組在質(zhì)量濃度為20和30 mg/mL時細胞內(nèi)GSH-Px活力顯著高于模型組,說明發(fā)酵火麻仁蛋白粉能夠通過提高GSH-Px活力保護HepG2細胞抵御氧化損傷。

    圖7 不同濃度發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞內(nèi)GSH-Px的影響

    2.4 氧化應(yīng)激相關(guān)mRNA的表達情況

    研究表明,機體內(nèi)氧化還原水平失衡是眾多疾病的病理生理基礎(chǔ),因此內(nèi)源性抗氧化信號通路Keap1-Nrf2在研究機體應(yīng)對各種外來損傷的防御中起著非常重要的作用[25-26]。Nrf2是一種重要的轉(zhuǎn)錄因子,通過與ARE結(jié)合調(diào)節(jié)多種抗氧化基因的表達,抵抗氧化應(yīng)激從而對細胞起到保護作用。Nrf2-ARE通路的下游抗氧化酶包括HO-1、NQO1等,動物及體外細胞實驗均證實,提高Nrf2-ARE通路活性,增加HO-1的表達,可清除氧化物質(zhì),對抗氧化應(yīng)激引起的細胞損傷[27]。圖8為發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞中Nrf2、HO-1以及NQO1的mRNA表達量的影響。與正常組相比,模型組的Nrf2、HO-1以及NQO1的mRNA均顯著降低,樣品組劑量依賴性顯著增高Nrf2、HO-1以及NQO1的mRNA表達量,說明發(fā)酵火麻仁蛋白粉能夠激活Nrf2通路達到抗氧化效果。

    圖8 發(fā)酵火麻仁蛋白粉對HepG2細胞中Nrf2,HO-1以及NQO1 mRNA表達量的影響

    3 結(jié)論

    本研究在利用AAPH誘導(dǎo)的HepG2細胞損傷模型中證實,發(fā)酵火麻仁蛋白粉能夠通過增加SOD、GSH-Px的活力,降低胞內(nèi)ROS、MDA水平進而改善細胞氧化應(yīng)激狀態(tài),且與發(fā)酵火麻仁蛋白粉濃度呈現(xiàn)出很好的相關(guān)性,具有很強的抗氧化作用。實驗進一步研究了發(fā)酵火麻仁蛋白粉抗氧化酶基因的表達,證明了發(fā)酵火麻仁蛋白粉能夠激活Nrf2通路進而減輕AAPH誘導(dǎo)的HepG2氧化應(yīng)激損傷作用。

    本研究在細胞層次對發(fā)酵火麻仁蛋白粉進行探究,證實了其是一種優(yōu)良的抗氧化物質(zhì),為研究預(yù)防與抗氧化相關(guān)疾病的功能性食品提供理論基礎(chǔ),同時也為火麻仁蛋白的開發(fā)利用奠定了實驗基礎(chǔ)。

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