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    具有聚集誘導(dǎo)發(fā)紅光性質(zhì)的鄰菲啰啉釕配合物的合成及其細(xì)胞成像研究

    2021-07-14 01:51:00沈?qū)W彬吳運(yùn)軍
    分析科學(xué)學(xué)報(bào) 2021年3期
    關(guān)鍵詞:吸收光譜極性配體

    王 慧*, 胡 磊, 沈?qū)W彬, 吳運(yùn)軍

    (皖南醫(yī)學(xué)院藥學(xué)院,安徽蕪湖 241002)

    發(fā)光金屬配合物在分子傳感器、生物成像探針和光催化等諸多研究領(lǐng)域具有潛在的應(yīng)用價(jià)值,已經(jīng)成為近年來科學(xué)研究的熱點(diǎn)[1,2]。一般來說,有機(jī)配體和金屬配合物在稀的非水溶液中表現(xiàn)出明亮的熒光,但在聚集狀態(tài)下或固態(tài)下由于聚集引起的猝滅(ACQ)而發(fā)出非常微弱的熒光。2001年,唐本忠研究小組報(bào)道了一種與ACQ完全相反的新現(xiàn)象,稱之為“聚集誘導(dǎo)熒光增強(qiáng)”(AIE)效應(yīng)[4]。AIE材料在良性溶劑中不發(fā)光或發(fā)出微弱的熒光,但這些材料在聚集態(tài)或固態(tài)下發(fā)出強(qiáng)烈的熒光。隨著對(duì)AIE研究的不斷深入,研究者們提出了很多機(jī)理,如形成J-聚集體、扭轉(zhuǎn)的分子內(nèi)電荷轉(zhuǎn)移、分子內(nèi)平面化、非緊密堆積、形成特殊激基締合物等[5 - 7]。目前AIE材料已經(jīng)廣泛應(yīng)用于生物傳感、細(xì)胞亞細(xì)胞器成像和光動(dòng)力學(xué)等研究方面[8 - 11]。雖然很多具有AIE效應(yīng)的分子被報(bào)道,但大多數(shù)AIE分子的發(fā)射波段處于藍(lán)綠光區(qū),而具有紅光發(fā)射特性的AIE材料(發(fā)射波長(zhǎng)>600 nm)的種類和數(shù)量非常有限。紅光AIE材料具有穿透能力強(qiáng)、對(duì)生物樣品的損傷小、信噪比高等優(yōu)勢(shì),但也存在量子產(chǎn)率低、光穩(wěn)定性差等缺點(diǎn)[12],因此,設(shè)計(jì)合成具有紅光AIE效應(yīng)的分子具有重要的科學(xué)意義。

    Ru(Ⅱ)配合物具有較大的斯托克斯位移、好的光穩(wěn)定性、長(zhǎng)的熒光壽命等優(yōu)勢(shì),已受到科研工作者越來越多的青睞[13,14]。鄰菲啰啉具有較強(qiáng)的配位能力、好的平面性、容易修飾等優(yōu)點(diǎn),與Ru(Ⅱ)形成的配合物,已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于非線性光學(xué)材料、抗腫瘤藥物和DNA探針等領(lǐng)域[15,16]?;诖?,我們以4-丁氧基苯甲醛和鄰菲啰啉雙酮為原料,設(shè)計(jì)合成了一種新型的鄰菲啰啉衍生物L(fēng),并于[Ru(phen)2]Cl2組裝成相應(yīng)的配合物L(fēng)Ru,在分子中引入丁基不僅能夠增加電子的離域,而且能夠提高分子的溶解性。研究了配合物L(fēng)Ru在不同極性的溶劑及不同體積比的乙醇和水混合溶液中的光學(xué)性質(zhì)。初步探索了配合物L(fēng)Ru在Hela細(xì)胞中的成像情況。

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 儀器與試劑

    Bruker Avance 600核磁共振儀(美國(guó),布魯克公司);solanX 70 FT-MS質(zhì)譜儀(美國(guó),布魯克公司);Nicolet FT-IR-is5紅外光譜儀(KBr壓片)(日本,島津有限公司);UV-5900PC型紫外分光光度計(jì)(上海元析儀器有限公司);HITACHI F-4600熒光分光光度計(jì)(日本,日立公司);INFINITE 200 PRO多功能酶標(biāo)儀(瑞士,Tecan公司);Leica TCS SP8激光共聚焦顯微鏡(德國(guó),徠卡公司)。

    鄰菲啰啉(99%),溴代正丁烷(99%),對(duì)羥基苯甲醛(98%),NH4Ac,六氟磷酸鉀(KPF6,99%),三氯化釕水合物(35.0%~42.0% Ru basis),氯化三(2,2′-聯(lián)吡啶)釕(Ⅱ)·六水(98%),其它試劑均為分析純,購(gòu)自阿拉丁試劑有限公司。

    1.2 LRu的合成

    1.2.1 化合物L(fēng)的合成在250 mL三口燒瓶中,依次加入0.74 g(3.5 mmol)鄰菲啰啉雙酮[17],0.62 g(3.5 mmol)4-丁氧基苯甲醛[18],5.75 g(75 mmol)NH4Ac和75 mL冰HAc,在氮?dú)獗Wo(hù)下,120 ℃反應(yīng)4 h,反應(yīng)結(jié)束后,冷卻至室溫后,倒入大量冰水中,用飽和K2CO3溶液調(diào)節(jié)pH至7,有固體析出,減壓抽濾,粗產(chǎn)物用甲醇重結(jié)晶,得淡褐色固體0.55 g,產(chǎn)率:42.9%。

    1H NMR(600 MHz,d6-DMSO):δ:8.98(d,J=4.0 Hz,2 H),8.87(d,J=8.0 Hz,2 H),8.18(d,J=8.5 Hz,2 H),7.77~7.79(m,2 H),7.11(d,J=8.4 Hz,2 H),4.02(t,J=6.4 Hz,2 H),1.74~1.66(m,2 H),1.49~1.38(m,2 H),0.91(t,J=7.4 Hz,3 H)。13C NMR(151 MHz,d6-DMSO):δ:160.31,151.24,148.02,143.86,129.94,128.22,123.63,122.93,115.28,67.80,31.17,19.17,14.14。

    1.2.2 配合物L(fēng)Ru的合成在100 mL三口燒瓶中,依次加入0.17 g(0.35 mmol)[Ru(phen)2]Cl2[17],0.33 g(0.33 mmol)化合物L(fēng)和50 mL甲醇,氮?dú)獗Wo(hù)下,回流反應(yīng)24 h,反應(yīng)結(jié)束后,向其中加入KPF60.92 g(5 mmol) 繼續(xù)反應(yīng)4 h,反應(yīng)液經(jīng)減壓蒸餾除去甲醇得固體,然后用15 mL二氯甲烷溶解,減壓抽濾得濾液,無水MgSO4干燥過夜,所得粗產(chǎn)物經(jīng)硅膠柱層析分離,洗脫溶劑為二氯甲烷/甲醇(V/V=50/1)混合溶劑,得紅色固體0.15 g,產(chǎn)率:41.6%。

    配合物L(fēng)Ru的合成路線見圖1。

    圖1 配合物L(fēng)Ru的合成路線Fig.1 Synthesis routes of complex LRu

    IR(KBr,cm-1):3451,2929,1611,1481,1456,1427,14906,1365,1250,1177,838,739,720,557。1H NMR(400 MHz,d6-DMSO):δ:14.16(s,1 H),9.05(t,J=8.6 Hz,2 H),8.78(d,J=8.2 Hz,4 H),8.40(s,4 H),8.25(d,J=8.7 Hz,2 H),8.17~8.05(m,4 H),8.01(d,J=5.2 Hz,2 H),7.87~7.72(m,6 H),7.23(d,J=8.8 Hz,2 H),4.10(t,J=6.5 Hz,2 H),1.82~1.70(m,2 H),1.57~1.40(m,2 H),0.97(t,J=7.4 Hz,3 H)。13C NMR(101 MHz,d6-DMSO):δ:161.03,153.44,147.53,137.28,130.92,128.29,126.64,115.70,88.22,68.08,31.02,19.05,14.07。HR-MS:計(jì)算值:829.9300,測(cè)得值:829.0815 [M-2PF6]+。

    1.3 細(xì)胞毒性測(cè)試與細(xì)胞染色

    1.3.1 細(xì)胞毒性測(cè)試將人宮頸癌細(xì)胞(Hela)接種于96孔板上,在37 ℃和5%CO2條件下培養(yǎng),當(dāng)細(xì)胞密度長(zhǎng)至85%左右時(shí),向孔中加入配合物L(fēng)Ru,使其最終濃度分別為5、10、15、20、25 μmol/L,每組濃度設(shè)三個(gè)平行實(shí)驗(yàn),同時(shí)設(shè)置對(duì)照孔和調(diào)零孔。當(dāng)配合物L(fēng)Ru與Hela共孵育24 h后,每孔加入20 μL 的3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽溶液(MTT)(5 mg/mL),繼續(xù)培養(yǎng)4 h,除去96孔板中的培養(yǎng)基(DMEM),并加入100 μL DMSO,振蕩10 min,用酶標(biāo)儀測(cè)量波長(zhǎng)490 nm處各孔的吸光度。

    1.3.2 細(xì)胞染色將人宮頸癌細(xì)胞(Hela)接種于共聚焦培養(yǎng)皿上,在37 ℃和5%CO2條件下培養(yǎng),當(dāng)細(xì)胞密度長(zhǎng)至65%左右時(shí),進(jìn)行以下兩組實(shí)驗(yàn):(1)配合物L(fēng)Ru與Hela細(xì)胞共孵育20 min;(2)首先移除培養(yǎng)皿中的DMEM,用磷酸鹽緩沖溶液(PBS)洗滌2次,然后加入1.5 mL 4%多聚甲醛培養(yǎng)15 min,用PBS洗滌2次,最后加入2 mL含有配合物L(fēng)Ru(10 μmol/L)的DMEM,繼續(xù)培養(yǎng)20 min。孵化好的Hela細(xì)胞用PBS洗滌3次,直接用于顯影。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 配合物L(fēng)Ru的線性光學(xué)性質(zhì)

    選取苯、四氫呋喃(THF)、乙酸乙酯(EA)、乙醇(EtOH)、乙腈、二甲基亞砜(DMSO)和水7種不同極性的溶劑,研究溶劑對(duì)配合物L(fēng)Ru吸收光譜和熒光光譜的影響。圖2A是配合物L(fēng)Ru在不同極性溶劑中的紫外-可見吸收光譜圖。配合物L(fēng)Ru在不同極性溶劑中的吸收峰位置幾乎不隨溶劑極性的變化而變化,只是吸收峰的強(qiáng)度略有差別。配合物L(fēng)Ru在不同極性溶劑中的最大吸收峰位于460 nm左右,可歸屬于配體到金屬的躍遷(LMCT)。為了更好的理解吸收光譜和電子結(jié)構(gòu)之間的關(guān)系,利用密度泛函理論(TD -DFT/B3LYP)對(duì)配合物L(fēng)Ru的躍遷過程進(jìn)行計(jì)算,采用Gaussian 09程序,6-31G基組對(duì)C、H、N、O原子及LANL2DZ基組對(duì)Ru原子。圖3和表1是配合物L(fēng)Ru的分子軌道能級(jí)圖和理論計(jì)算的相關(guān)數(shù)據(jù)。由圖3和表1可知,理論計(jì)算出的配合物L(fēng)Ru最大吸收峰在458 nm左右,是最高占有分子軌道(HOMO)到最低未占分子軌道(LUMO)的躍遷,其中HOMO軌道上的電子云主要分布在配體L上,LUMO軌道上的電子云主要分布在中心金屬Ru原子和配體鄰菲啰啉上,可歸屬于配體到金屬的躍遷混有配體到配體的躍遷。理論計(jì)算出的最大吸收峰位置與實(shí)驗(yàn)測(cè)得的結(jié)果相符合,為解釋配合物L(fēng)Ru的紫外-可見吸收光譜提供了理論依據(jù)。

    表1 配合物L(fēng)Ru的理論計(jì)算相關(guān)數(shù)據(jù)

    圖3 配合物L(fēng)Ru的分子軌道能級(jí)圖Fig.3 Molecular orbital energy diagram for LRu

    圖2B是配合物L(fēng)Ru在不同極性溶劑中的熒光光譜圖。配合物L(fēng)Ru的測(cè)試濃度為10 μmol/L,熒光光譜的測(cè)試條件為激發(fā)波長(zhǎng)460 nm,狹縫寬度為10.0 nm,電壓為500 V。配合物L(fēng)Ru的最大發(fā)射峰在602 nm左右,斯托克斯位移為142 nm,且其發(fā)射峰位置隨溶劑極性的增加變化不明顯。以[Ru(bpy)2]Cl2(在乙腈溶液中的量子產(chǎn)率φ=0.062)為參比[19],根據(jù)量子產(chǎn)率公式[20]計(jì)算得到配合物L(fēng)Ru在不同溶劑的中的量子產(chǎn)率分別為0.13(苯)、0.12(四氫呋喃)、0.10(乙酸乙酯)、0.04(乙醇)、0.10(乙腈)、0.36(二甲基亞砜)和0.35(水)。而且配合物L(fēng)Ru在DMSO和水溶液中的熒光強(qiáng)度比其他溶劑的強(qiáng),以乙醇為例,LRu在水中的熒光強(qiáng)度約是其在乙醇中的8倍。在365 nm紫外燈照射下,配合物L(fēng)Ru在純乙醇(0%)中呈現(xiàn)出微弱的紅光,在水(99%)中呈現(xiàn)出明亮的紅色熒光,且在固體狀態(tài)下,LRu也發(fā)出明亮的紅色熒光,造成這一現(xiàn)象的原因可能是聚集誘導(dǎo)熒光增強(qiáng)。

    圖2 配合物L(fēng)Ru(10 μmol/L)在不同溶劑中的紫外-可見吸收光譜(A)和熒光光譜(B)Fig.2 UV-Vis absorption spectra(A) and fluorescence spectra of complex LRu (c=10 μmol/L) in different solvents

    此外,還探究了配合物L(fēng)Ru在PBS中的穩(wěn)定性。在相同的測(cè)試條件下,時(shí)間間隔為2 h,測(cè)試配合物L(fēng)Ru的紫外-可見吸收光譜和熒光光譜,從圖4中可以看出隨著時(shí)間的延長(zhǎng),配合物L(fēng)Ru的吸收峰位置和熒光強(qiáng)度沒有發(fā)生明顯的變化,說明配合物L(fēng)Ru具有好的穩(wěn)定性,可將其應(yīng)用于生物體內(nèi)。

    圖4 在不同的時(shí)間節(jié)點(diǎn)配合物L(fēng)Ru在PBS中的紫外-可見吸收光譜(A)和熒光光譜(B)Fig.4 UV-Vis absorption spectra(A) and fluorescence spectra (B) of LRu (c=10 μmol/L) in PBS under different time

    2.2 聚集誘導(dǎo)熒光性質(zhì)

    選擇乙醇作為配合物L(fēng)Ru的良性溶劑,水作為不良溶劑,配制成不同含水量(fw=0、10、20、30、40、50、60、70、80、90、99%)的混合溶液,測(cè)試配合物L(fēng)Ru的熒光光譜,配合物L(fēng)Ru的測(cè)試濃度為10 μmol/L。如圖5所示,隨著水含量的增加,配合物L(fēng)Ru的熒光強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)。當(dāng)fw=80%時(shí),配合物L(fēng)Ru的熒光強(qiáng)度達(dá)到最大,比純乙醇增強(qiáng)約6.7倍,這是典型的聚集誘導(dǎo)熒光增強(qiáng)性質(zhì),且熒光發(fā)射峰位置由590 nm紅移到602 nm。這是由于水分子的加入,降低了配合物的溶解性,使其聚集成顆粒,在聚集狀態(tài)下,配合物中單鍵的自由旋轉(zhuǎn)受到限制,抑制了激發(fā)態(tài)的非輻射躍遷,最終導(dǎo)致配合物的熒光強(qiáng)度增強(qiáng)[7,21]。

    圖5 (A) 配合物L(fēng)Ru在不同體積比乙醇/水混合溶液中的熒光光譜圖;(B) 配合物L(fēng)Ru的熒光強(qiáng)度與水體積分?jǐn)?shù)的關(guān)系Fig.5 (A) Fluorescence spectra of complex LRu in ethanol/H2O mixtures with different water fraction;(B) The changes of fluorescence peak intensity of complex LRu with different water fractions

    2.3 細(xì)胞毒性測(cè)試和細(xì)胞顯影

    首先利用MTT方法測(cè)試了配合物L(fēng)Ru的細(xì)胞毒性(圖6),當(dāng)配合物L(fēng)Ru與Hela細(xì)胞作用24 h,細(xì)胞的存活率在80%以上,說明配合物L(fēng)Ru具有較低的細(xì)胞毒性,可將其安全地應(yīng)用于活細(xì)胞成像。為進(jìn)一步研究配合物L(fēng)Ru在細(xì)胞內(nèi)的分布情況,利用Leica TCS SP8激光共聚焦顯微鏡對(duì)配合物L(fēng)Ru進(jìn)行細(xì)胞成像研究。

    圖6 配合物L(fēng)Ru與Hela細(xì)胞作用24 h后的細(xì)胞存活率Fig.6 Cell viabilities of Hela cells incubated with complex LRu for 24 h

    將Hela細(xì)胞與10 μmol/L LRu共孵育20 min,如圖7所示,在細(xì)胞周圍觀察到強(qiáng)的紅色熒光信號(hào),通過與明場(chǎng)圖疊加,發(fā)現(xiàn)熒光信號(hào)主要來源于細(xì)胞的細(xì)胞膜區(qū)域。同時(shí)研究了配合物L(fēng)Ru在不同焦平面下的細(xì)胞成像實(shí)驗(yàn),如圖8所示,LRu在不同焦距下的熒光信號(hào)也主要來源于細(xì)胞膜區(qū)域。當(dāng)用4%多聚甲醛固定Hela細(xì)胞后(圖7),發(fā)現(xiàn)配合物L(fēng)Ru主要著色于細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)部位。說明配合物L(fēng)Ru可靶向在活細(xì)胞的細(xì)胞膜部位。

    圖7 配合物L(fēng)Ru在活細(xì)胞和固定的Hela細(xì)胞中的細(xì)胞成像圖Fig.7 Cell images of live and fixed Hela cells incubated with LRu

    圖8 (A)在不同焦平面下配合物L(fēng)Ru孵育Hela細(xì)胞20 min后的共聚焦成像圖;(B) 配合物L(fēng)Ru在Hela細(xì)胞中的3D成像圖Fig.8 Confocal images of Hela cells incubated with LRu for 20 min under different focal lengths;(B) 3D imaging of LRu in Hela cells

    高的光穩(wěn)定性有利于化合物長(zhǎng)時(shí)間進(jìn)行細(xì)胞成像進(jìn)而追蹤細(xì)胞生理狀態(tài)的變化過程。配合物L(fēng)Ru的光穩(wěn)定性測(cè)試如圖9所示,用激光不間斷的掃描配合物L(fēng)Ru孵育的Hela細(xì)胞760 s,LRu的熒光強(qiáng)度在80%以上,說明配合物L(fēng)Ru具有比較好的光穩(wěn)定性。與文獻(xiàn)已報(bào)道的材料相比[22 - 25],配合物L(fēng)Ru具有較好的光穩(wěn)定性、生物相容性、大的斯托克斯位移和較高的量子產(chǎn)率,且能靶向在活細(xì)胞的細(xì)胞膜部位。但其自身也存在一些不足,如配合物L(fēng)Ru的最大發(fā)射峰在602 nm左右,發(fā)射波長(zhǎng)較短。

    圖9 配合物L(fēng)Ru在細(xì)胞中的光穩(wěn)定性Fig.9 Photostability of LRu in cell imaging

    3 結(jié)論

    設(shè)計(jì)合成了一種新型的鄰菲啰啉釕配合物L(fēng)Ru,借助紫外-可見吸收光譜、熒光光譜、理論計(jì)算、MTT測(cè)試和共聚焦顯微成像系統(tǒng)地研究了配合物的光物理性質(zhì)及細(xì)胞成像。研究結(jié)果表明:(1)在不同體積比的乙醇和水混合溶液中,配合物L(fēng)Ru展現(xiàn)出明顯的聚集誘導(dǎo)熒光增強(qiáng)性質(zhì),發(fā)射波長(zhǎng)在602 nm左右,且當(dāng)含水量達(dá)到80%時(shí),熒光強(qiáng)度增強(qiáng)約6.7倍;(2)配合物L(fēng)Ru具有較高的細(xì)胞存活率和高的光穩(wěn)定性,可靶向活細(xì)胞的細(xì)胞膜部位。該研究結(jié)果為后期設(shè)計(jì)具有聚集誘導(dǎo)發(fā)紅光性質(zhì)的釕配合物提供了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)和設(shè)計(jì)思路。

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