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    紫茶多酚含量測定及其抗氧化活性研究

    2021-07-05 09:36:38曾棋平楊麗娜吳坤林蔡小輝陳錦珊
    藥學(xué)服務(wù)與研究 2021年3期

    曾棋平,楊麗娜,吳坤林,蔡小輝,陳錦珊

    (聯(lián)勤保障部隊第九〇九醫(yī)院/廈門大學(xué)附屬東南醫(yī)院藥劑科,福建漳州 363000)

    唐代茶圣陸羽曰:“茶,紫者為上”,此處“紫”指鮮茶葉的顏色,主要因富含花青素而呈紫色[1]??夏醽單挥诜侵迻|部,地處赤道,境內(nèi)海拔1500~2000米,晝夜溫差大且紫外線照射強烈,為紫茶的生長提供了得天獨厚的條件,產(chǎn)量豐富且品質(zhì)優(yōu)越。紫茶的化學(xué)成分復(fù)雜,包括多酚、氨基酸、碳水化合物、蛋白質(zhì)、揮發(fā)性化合物、礦物質(zhì)、微量元素和生物堿(咖啡因、茶堿、可可堿)等。其中,多酚是主要的生物活性物質(zhì)[2]。多酚類化合物是一類復(fù)雜的具有多個酚羥基的次生代謝產(chǎn)物,主要包括酚酸、黃酮類、木脂素類和單寧等化合物[3]?,F(xiàn)代藥理學(xué)研究表明,天然植物中含有的多酚具有抗腫瘤[4]、抗氧化[5]、抗纖維化[6]、抗菌[7]等功效,因此成為國內(nèi)外學(xué)者關(guān)注和研究的熱點。目前,紫茶多酚的質(zhì)量控制方法及抗氧化活性研究尚未見報道。作者采用鐵氰化鉀-氯化鐵比色法測定肯尼亞紫茶中多酚的含量,并對其體外抗氧化活性進(jìn)行初步研究,從而為其進(jìn)一步開發(fā)利用提供理論依據(jù)。

    1 儀器和試藥

    1.1 儀器 UV-2550型紫外可見分光光度計、AUX220型電子分析天平(精度:0.1 mg)均由日本島津公司提供;HH-2數(shù)顯恒溫水浴鍋(江蘇省金壇市友聯(lián)儀器研究所);KQ-500B型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。

    1.2 藥品和試劑 紫茶粉(產(chǎn)于非洲肯尼亞, 由火烈鳥茶葉有限公司提供, 批號20181030); 沒食子酸對照品(中國食品藥品檢定研究院, 批號110831-201605); 1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH, 福州飛凈生物科技有限公司, 批號201806); 鐵氰化鉀(溫州市化學(xué)用料廠); 水楊酸(山東新華制藥股份有限公司, 批號16185); 六水合三氯化鐵、磷酸二氫鉀、三氯乙酸、硫酸亞鐵、過氧化氫、鹽酸、乙醇等試劑均購自西隴科學(xué)股份有限公司。 以上試劑均為分析純, 水為純化水(聯(lián)勤保障部隊第九〇九醫(yī)院/廈門大學(xué)附屬東南醫(yī)院自制)。

    2 方法和結(jié)果

    2.1 溶液的制備

    2.1.1 紫茶多酚供試品溶液 取紫茶粉末約5.0 g,精密稱定,置圓底燒瓶中,加入50%乙醇500 ml,85 ℃水浴回流提取30 min,將提取液過濾,用50%乙醇補足減失的重量并稀釋至500 ml,搖勻。再精密吸取1 ml置于100 ml量瓶中,加純化水稀釋至刻度,即得紫茶多酚供試品溶液。

    2.1.2 沒食子酸對照品溶液 精密稱取干燥至恒重的沒食子酸對照品14.2 mg,置于50 ml量瓶中,加純化水溶解并稀釋至刻度,搖勻。精密吸取溶液10 ml,置于100 ml量瓶中,制備成質(zhì)量濃度為28.4 μg/ml的沒食子酸對照品溶液。同法制備質(zhì)量濃度為26.0 μg/ml的沒食子酸對照品溶液,避光保存,備用。

    2.2 實驗條件的優(yōu)化

    2.2.1 檢測波長的確定 分別精密吸取紫茶多酚供試品溶液和質(zhì)量濃度為28.4 μg/ml的沒食子酸對照品溶液各1.0 ml,置25 ml量瓶中,依次加入0.1 mol/L的FeCl3溶液2.0 ml、1%K3[Fe(CN)6]溶液1.0 ml、0.1 mol/L的HCl溶液2.5 ml,用純化水稀釋至刻度,搖勻,于室溫下避光放置60 min。以相應(yīng)試劑為空白對照,在波長380~900 nm的范圍內(nèi)進(jìn)行掃描(見圖1),確定最大吸收波長。由圖1可見,沒食子酸對照品溶液和紫茶多酚供試品溶液經(jīng)顯色反應(yīng)后的光譜吸收曲線基本一致,且兩者均在775 nm處有最大吸收峰。因此,選擇775 nm作為紫茶多酚的檢測波長。

    圖1 紫茶多酚的紫外掃描光譜圖1:沒食子酸對照品溶液;2:紫茶多酚供試品溶液

    2.2.2 FeCl3用量的考察 在室溫條件下,精密吸取紫茶多酚供試品溶液0.5 ml,各6份,分別置25 ml量瓶中,加入1%K3[Fe(CN)6]溶液1.5 ml和0.1 mol/L的HCl溶液2.5 ml,再依次加入0.1 mol/L的FeCl3溶液0.2、0.5、1.0、2.0、3.0、4.0 ml,分別用純化水稀釋至刻度,搖勻,避光放置60 min。以相應(yīng)試劑為空白對照,在775 nm處測定吸光度,考察FeCl3用量對顯色效果的影響,結(jié)果見圖2A。由圖2A可見,在考察范圍內(nèi),隨著FeCl3用量增加,生成可溶性普魯士藍(lán)的量也不斷增加,當(dāng)FeCl3的用量為1.0 ml時,所測樣品的吸光度為0.651,恰好在0.3~0.7范圍內(nèi),滿足測定需求,因此選擇FeCl3的用量為1.0 ml。

    2.2.3 K3[Fe(CN)6]用量的考察 在室溫條件下, 精密吸取6份0.5 ml的紫茶多酚供試品溶液, 置 25 ml 量瓶中, 分別加入 0.1 mol/L的FeCl3溶液1.0 ml和0.1 mol/L的HCl溶液2.5 ml,再依次加入1%K3[Fe(CN)6]溶液0.2、0.5、0.8、1.0、1.5、2.0和2.5 ml,分別用純化水稀釋至刻度,搖勻,避光放置60 min。以相應(yīng)試劑為空白對照,在775 nm處測定吸光度,確定K3[Fe(CN)6]用量對顯色效果的影響,結(jié)果見圖2B。由圖2B可見,在考察范圍內(nèi),當(dāng)K3[Fe(CN)6]的用量為2.0 ml時,吸光度已達(dá)到最大,此時繼續(xù)增加K3[Fe(CN)6],所測溶液的吸光度基本保持不變,表明溶液中生成的普魯士藍(lán)濃度已達(dá)到飽和,因此選擇K3[Fe(CN)6]的用量為2.0 ml。

    圖2 檢測試劑用量對顯色效果的影響A:FeCl3;B:K3[Fe(CN)6];C:HCl

    2.2.4 HCl用量的考察 在室溫條件下,精密吸取6份紫茶多酚供試品溶液0.5 ml,分別置25 ml量瓶中, 加入0.1 mol/L的FeCl3溶液1.0 ml和1%K3[Fe(CN)6] 溶液2.0 ml,再依次加入0.1 mol/L的HCl溶液0.2、0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 ml,分別用純化水稀釋至刻度,搖勻,避光放置60 min。以相應(yīng)試劑為空白對照,在775 nm處測定吸光度,確定HCl用量對顯色效果的影響,結(jié)果見圖2C。由圖2C可見,當(dāng)HCl的用量為0.5 ml時,吸光度最大,故確定HCl的用量為0.5 ml。

    2.2.5 反應(yīng)時間的考察 確定0.1 mol/L的FeCl3溶液用量為1.0 ml,1%K3[Fe(CN)6]的用量為2.0 ml,HCl的用量為0.5 ml,考察避光放置時間對顯色效果的影響,結(jié)果見圖3。由圖3可見,避光放置60 min后吸光度達(dá)到最大,繼續(xù)延長放置時間對吸光度測定影響不大。因此,選擇反應(yīng)時間為60 min。

    圖3 反應(yīng)時間對顯色效果的影響

    2.3 含量測定方法學(xué)考察

    2.3.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的確定 分別精密吸取濃度為28.4 μg/ml的沒食子酸對照品溶液0.2、0.3、0.5、0.8、1.0、1.2 ml,置25 ml量瓶中,依次加入0.1 mol/L的FeCl3溶液1.0 ml、1%K3[Fe(CN)6]溶液2.0 ml和0.1 mol/L的HCl溶液0.5 ml,用純化水稀釋至刻度,搖勻,于室溫下避光放置60 min。以相應(yīng)試劑為空白對照,在775 nm處測定吸光度。以沒食子酸的質(zhì)量濃度(x)為橫坐標(biāo),以吸光度(y)為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到線性回歸方程:y=0.769 9x+0.027 3(r=0.999 7),表明沒食子酸質(zhì)量濃度在0.227~1.363 μg/ml范圍內(nèi)與吸光度呈良好的線性關(guān)系。

    2.3.2 精密度試驗 精密吸取28.4 μg/ml的沒食子酸對照品溶液0.8 ml,按2.3.1項下方法進(jìn)行顯色反應(yīng),測定吸光度。結(jié)果沒食子酸對照品溶液吸光度的RSD=0.15%(n=6),表明儀器精密度良好。

    2.3.3 穩(wěn)定性試驗 精密吸取0.5 ml同一紫茶多酚供試品溶液6份,按2.3.1項下方法進(jìn)行顯色反應(yīng),避光放置60 min后每隔10 min測定一次吸光度,結(jié)果在60~120 min時間范圍內(nèi),供試品溶液的RSD=1.24%(n=6),表明在60~120 min內(nèi)反應(yīng)產(chǎn)物的穩(wěn)定性良好,滿足測定需求。

    2.3.4 重復(fù)性試驗 按2.1.1項下方法,平行制備6份供試品溶液,各精密吸取0.5 ml,按2.3.1項下方法進(jìn)行顯色反應(yīng),測定吸光度。結(jié)果紫茶多酚的平均含量為421.5 mg/g,RSD=1.27%(n=6),表明該方法重復(fù)性良好。

    2.3.5 回收率試驗 精密吸取紫茶多酚質(zhì)量濃度為42.15 μg/ml的供試品溶液0.25 ml,共6份,分別置25 ml量瓶中,精密加入26.0 μg/ml的沒食子酸對照品溶液0.4 ml,按2.3.1項下方法進(jìn)行顯色反應(yīng),以相應(yīng)試劑為空白對照,在775 nm處測定吸光度,計算多酚的含量。結(jié)果所測樣品的平均回收率為100.28%,RSD=2.09%(n=6)。

    2.4 樣品含量測定 按照2.1.1項下方法配制3批紫茶多酚供試品溶液,分別精密吸取0.5 ml置25 ml量瓶中,依次加入0.1 mol/L的 FeCl3溶液1.0 ml、1%K3[Fe(CN)6]溶液2.0 ml和0.1 mol/L的HCl溶液0.5 ml,用純化水稀釋至刻度,搖勻,于室溫下避光放置60 min。以相應(yīng)試劑為空白對照,在775 nm處測定吸光度,計算紫茶多酚的含量,結(jié)果批號201908221、201908222、201908223的紫茶樣品中多酚的含量分別為(421.5±1.5)、(422.8±2.1)、(422.1±1.2) mg/g(n=3)。

    2.5 紫茶多酚抗氧化活性的測定

    2.5.1 DPPH自由基清除率 取濃度為1.5、2.5、5.0、7.5、10.0、12.5、15.0、20.0 μg/ml的紫茶多酚溶液各2 ml置試管中,分別加入0.2 mmol/L的DPPH無水乙醇溶液2 ml,充分混勻后避光放置30 min,在517 nm波長處測定吸光度(A1);以無水乙醇作為空白對照,測定吸光度(A0);同時以無水乙醇代替DPPH,測定吸光度(A2)。按照下列公式計算:

    DPPH自由基清除率=[1-(A1-A2)/A0]×100%。

    以維生素C作為陽性對照,同法測定DPPH自由基清除率,結(jié)果見圖4。由圖4可見,紫茶多酚具有較強的DPPH自由基清除率,隨著多酚濃度增加,DPPH自由基清除率增加,并呈現(xiàn)濃度依賴性。質(zhì)量濃度在0.75~3.75 μg/ml范圍內(nèi),紫茶多酚對DPPH自由基的清除能力略強于維生素C;質(zhì)量濃度在5~10 μg/ml范圍內(nèi),其對DPPH自由基的清除能力則弱于維生素C。分別將紫茶多酚和維生素C的質(zhì)量濃度(x)對DPPH自由基的清除率(y)進(jìn)行回歸分析,得到紫茶多酚在質(zhì)量濃度0.75~6.25 μg/ml范圍內(nèi)的線性回歸方程為:y=11.77x+11.34(r=0.997 0);對應(yīng)的維生素C的線性回歸方程為:y=14.61x-2.43(r=0.985 4)。從回歸方程求得紫茶多酚清除DPPH自由基的IC50為3.28 μg/ml,維生素C清除DPPH自由基的IC50為3.59 μg/ml。

    圖4 紫茶多酚對DPPH自由基的清除率曲線○:紫茶多酚;●:維生素C

    2.5.2 羥基自由基清除率 取6 mmol/L的FeSO4溶液1 ml共8份,置試管中,加入10 mmol/L的水楊酸乙醇溶液1 ml,分別加入12.25、24.50、36.75、49.00、61.25、73.50、85.75、98.00 μg/ml的紫茶多酚溶液4 ml,最后加入6 mmol/L的H2O2溶液1 ml,置37 ℃水浴中反應(yīng)0.5 h。在510 nm波長處測定吸光度(A1),以純化水作為空白對照測定吸光度(A0),同時以純化水代替水楊酸測定吸光度(A2),按照下列公式進(jìn)行計算。

    羥基自由基清除率=[1-(A1-A2)/A0]×100%。

    以維生素C作為陽性對照,同法測定,結(jié)果見圖5。由圖5可見,紫茶多酚對羥基自由基的清除率呈濃度依賴性。分別將紫茶多酚和維生素C的質(zhì)量濃度(x)對羥基自由基的清除率(y)進(jìn)行回歸分析,得到紫茶多酚在質(zhì)量濃度7~56 μg/ml范圍內(nèi)的線性回歸方程為:y=1.671x-4.088(r=0.991 5);維生素C在質(zhì)量濃度7~35 μg/ml范圍內(nèi)的線性回歸方程為:y=2.494x+13.640(r=0.979 3)。通過線性回歸方程計算得到紫茶多酚清除羥基自由基的IC50為32.37 μg/ml,維生素C清除羥基自由基的IC50為14.58 μg/ml。從整體上看,在相同質(zhì)量濃度下,紫茶多酚對羥基自由基的清除能力比維生素C更弱。

    圖5 紫茶多酚對羥基自由基的清除率曲線○:紫茶多酚;●:維生素C

    3 討 論

    文獻(xiàn)報道,多酚的含量測定方法有福林酚比色法、高錳酸鉀滴定法、酒石酸亞鐵分光光度法和鐵氰化鉀-氯化鐵比色法等[8]。本研究采用鐵氰化鉀-氯化鐵比色法對紫茶多酚含量進(jìn)行測定,其原理是基于多酚類化合物的酚羥基具有較強的還原性,能將Fe3+還原成Fe2+,F(xiàn)e2+與鐵氰化鉀發(fā)生化學(xué)反應(yīng)生成普魯士藍(lán)沉淀,而該沉淀可在強酸性溶液中溶解。通過單因素考察對實驗條件進(jìn)行優(yōu)化,確定顯色反應(yīng)的最優(yōu)條件是加入0.1 mol/L 的FeCl31.0 ml、1%K3[Fe(CN)6] 2.0 ml和0.1 mol/L的HCl溶液0.5 ml,反應(yīng)時間為60 min,根據(jù)反應(yīng)后生成的普魯士藍(lán)溶液的吸光度計算紫茶多酚的含量。

    多酚類化合物是良好的抗氧化劑,其抗氧化作用與化學(xué)結(jié)構(gòu)中的鄰位酚羥基極易被氧化密切相關(guān)。酚羥基可提供活潑氫,使自由基滅活,而自身被氧化生成含有鄰二酚結(jié)構(gòu)的自由基,具有較高的穩(wěn)定性[9-10]。本研究通過DPPH自由基和羥基自由基清除法評價紫茶多酚的抗氧化活性。結(jié)果表明,在一定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),紫茶多酚對DPPH自由基和羥基自由基的清除能力呈濃度依賴性。當(dāng)DPPH自由基的質(zhì)量濃度為6.25 μg/ml,羥基自由基的質(zhì)量濃度為56.0 μg/ml時,紫茶多酚對其清除率分別達(dá)到83.17%和83.91%。與維生素C相比,紫茶多酚清除DPPH自由基的IC50更低,而清除羥基自由基的IC50則更高。

    綜上所述,本研究建立的紫茶多酚含量測定方法操作簡便,重復(fù)性好,可用于紫茶的質(zhì)量控制。紫茶中的多酚含量較高,具有較強的抗氧化活性,可作為天然抗氧化劑資源進(jìn)行研究和開發(fā)。

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