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    4種改良CTAB法提取石榴成熟葉片DNA的比較研究

    2021-06-23 11:01:58譚小艷馬耀華郝兆祥
    中國(guó)南方果樹 2021年3期
    關(guān)鍵詞:預(yù)冷離心管無水乙醇

    譚小艷,馬耀華,郝兆祥

    (1 棗莊學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,山東棗莊,277160;2 棗莊市石榴研究中心,山東棗莊,277300)

    石榴為落葉灌木或小喬木,適應(yīng)性強(qiáng),原產(chǎn)于伊朗、阿富汗和印度等西亞地區(qū),現(xiàn)在世界各地廣泛栽培[1]。近年來,石榴種質(zhì)資源及其分子標(biāo)記的研究[2-5]、石榴重要性狀基因的克隆[6-8]、EST文庫(kù)的構(gòu)建成為石榴分子生物學(xué)研究方面的熱點(diǎn)。而高質(zhì)量DNA、RNA的提取是分子生物學(xué)研究的必要步驟。幼嫩葉片DNA提取的研究有較多報(bào)道[9-11],但石榴成熟葉片的DNA提取方法的報(bào)道較少[4,12-13],且獲得的DNA產(chǎn)量低,實(shí)驗(yàn)的可重復(fù)率較低,對(duì)石榴種質(zhì)資源研究和其他分子生物學(xué)操作帶來很大的不便。從幼嫩、新鮮葉片中提取DNA材料,受季節(jié)限制而取樣時(shí)間短。由于成熟石榴葉片中多糖和酚類物質(zhì)[9,14]較幼嫩組織中多,這些物質(zhì)與DNA結(jié)合程度較高,增加了DNA的提取難度。因此本實(shí)驗(yàn)針對(duì)常用于植物DNA提取方法——CTAB提取法,進(jìn)行多次改良研究,探討適合石榴成熟葉片DNA提取的方法,為石榴種質(zhì)資源及分子生物學(xué)方面的研究打下堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    以成熟石榴葉作為實(shí)驗(yàn)材料,材料來源于嶧城中國(guó)石榴種質(zhì)資源圃,于2018年8月采集(見表1),冷凍保存于-80 ℃冰箱。

    表1 石榴葉片編號(hào)、品種、花色

    1.2 石榴葉片基因組DNA的提取

    從采集的20個(gè)石榴品種葉片中抽取前5個(gè)品種進(jìn)行研究。

    1.2.1 改良CTAB Ⅰ法 此方法參考趙麗華等人優(yōu)化的DNA提取方法Ⅱ[12]。①取2 g石榴葉片放入預(yù)冷的研缽中,加入0.02 g抗壞血酸(Vc)和0.05 g聚乙烯吡咯烷酮(PVP)于研缽中,用液氮將研缽預(yù)冷,將除去葉脈的葉片放入研缽中,加入液氮將葉片快速研磨至粉末狀,迅速轉(zhuǎn)移至10 mL離心管中,加入冰浴的CTAB緩沖液4 mL,混勻,冰浴10 min,在4 ℃、5 000 r/min下離心10 min,收集沉淀。②在沉淀中加入65 ℃預(yù)熱CTAB裂解液4 mL,混勻,65 ℃水浴30 min,中間輕柔振蕩3次,放氣1次。③在溶液中加入5 mol/L KAc 1 mL,混勻,冰浴20 min。④加入4 mL氯仿∶異戊醇= 24∶1,輕柔顛倒混勻,乳化10 min,于20 ℃、12 000 r/min下離心10 min,吸取上清液,轉(zhuǎn)入新離心管中,此步驟再重復(fù)一次。⑤對(duì)以上所得溶液分別加入1/5體積的3 mol/L NaAc及等體積-20 ℃預(yù)冷的無水乙醇,混勻,冰上沉淀30 min;于室溫、12 000 r/min下離心10 min,棄去上清液,將沉淀轉(zhuǎn)入1.5 mL離心管中,用75%乙醇漂洗5 min,重復(fù)1次,再用無水乙醇漂洗5 min,沉淀置于室溫下干燥至無酒精味;加入100 μL TE溶解沉淀,進(jìn)行DNA純化或放入-20 ℃冰箱備用。⑥在粗提DNA溶液中分別加入5 μL RNase A,37 ℃水浴40 min,電泳查看RNA是否除凈。⑦向除凈RNA的DNA溶液中補(bǔ)加400 μLTE,加入500 μL酚∶氯仿∶異戊醇=25∶24∶1,顛倒混勻5 min,靜置10 min。⑧20 ℃、12 000 r/min下離心10 min,吸取上清液,轉(zhuǎn)入新離心管中;補(bǔ)加TE至總體積500 μL,加入4 mL氯仿∶異戊醇= 24∶1,輕柔顛倒混勻,乳化10 min,20 ℃、12 000 r/min下離心10 min,吸取上清液,轉(zhuǎn)入新離心管中,再重復(fù)1次。⑨向粗提DNA中加入5 mol/L NaCl,使溶液中的NaCl最終濃度為2 mol/L,再加入1.5倍體積-20 ℃預(yù)冷無水乙醇,混勻,冰上沉淀30 min;于室溫、10 000 r/min下離心10 min,棄去上清液,將沉淀轉(zhuǎn)入1.5 mL離心管中;用75%乙醇漂洗5 min,重復(fù)1次,再用無水乙醇漂洗5 min,沉淀置于室溫下干燥至無酒精味;加入100 μL TE溶解沉淀,放入-20 ℃冰箱備用。

    1.2.2 改良CTAB Ⅱ法 改良CTAB Ⅱ法在改良CTAB Ⅰ的基礎(chǔ)上改進(jìn):將步驟①中的冰浴的CTAB緩沖液改為65 ℃水浴的CTAB緩沖液,放棄冰浴和離心過程;步驟⑤中不加入1/5體積的3 mol/L NaAc,只加等體積-20 ℃預(yù)冷的無水乙醇。其余步驟同CTAB Ⅰ方法。

    1.2.3 改良CTAB Ⅲ法 改良CTAB Ⅲ法在改良CTAB Ⅱ的基礎(chǔ)上改進(jìn),在步驟①加入適量石英砂,提高快速研磨能力。步驟②與上述CTAB Ⅰ步驟②相同。③取出樣品管,冷卻片刻(可置于冰上),加入等體積的氯仿∶異戊醇(V∶V=24∶1),劇烈震蕩幾下樣品管,10 000 rpm,4 ℃,離心l0 min,取上清液。重復(fù)抽提1次。④加入2/3體積上清液的預(yù)冷異丙醇(-20 ℃),冰上沉淀30 min后,用滅菌玻璃鉤輕輕勾出DNA沉淀。⑤DNA沉淀轉(zhuǎn)移到新的1.5 mL EP管并加適量(約100~200 μL)高鹽TE緩沖液溶解,如不能完全溶解,可65 ℃水浴10 min。⑥加入2 μL的RNase酶,37 ℃溫浴30 min。⑦同CATB Ⅰ中步驟③,但需要輕柔顛倒混勻。⑧同CATB Ⅰ中步驟⑧。⑨DNA沉淀用70%~75%乙醇漂洗5 min,重復(fù)1次,再用無水乙醇漂洗5 min,置于超凈臺(tái)上干燥至無酒精味,溶解于滅菌的TE溶液中,于-20 ℃下保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.4 改良CTAB Ⅳ法 對(duì)改良CTAB Ⅲ法進(jìn)行改進(jìn),將離心溫度由4 ℃設(shè)置為15 ℃。其余步驟同CTAB Ⅲ。

    1.3 石榴基因組DNA質(zhì)量檢測(cè)方法

    1.3.1 DNA純度和產(chǎn)率的紫外檢測(cè) 取純化后的待測(cè)DNA 3 μL,加無菌水57 μL,混勻后轉(zhuǎn)入石英微量比色皿,用紫外分光光度法檢測(cè)DNA的含量,檢測(cè)260、280 nm處的OD值,計(jì)算得出DNA的含量與純度。

    1.3.2 瓊脂糖凝膠電泳、PCR擴(kuò)增反應(yīng)檢測(cè)DNA的完整性 根據(jù)上述1.2.4法所述改良CTAB Ⅳ法提取20個(gè)品種石榴葉片的總DNA,利用UBC811堿基隨機(jī)引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,查看DNA純度。PCR反應(yīng)總體積25 μL,其中引物(10 μmol/ L)1 μL,Premix Ex TaqTM12.5 μL,模板DNA (約25 ng/L) 1 μL,剩余體積用ddH2O來補(bǔ)齊。擴(kuò)增程序?yàn)?5 ℃預(yù)變性4 min,94 ℃變性45 s,51.2 ℃退火1 min,72 ℃延伸2 min,進(jìn)行30個(gè)循環(huán),72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。擴(kuò)增產(chǎn)物在1.2%瓊脂糖凝膠中電泳,穩(wěn)壓5 cm/V。在凝膠成像系統(tǒng)上觀察、照相。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 石榴基因組DNA的提取結(jié)果分析

    2.1.1 4種提取方法DNA的檢驗(yàn) 改良CTAB Ⅰ法提取的DNA有降解現(xiàn)象,且DNA的濃度不高。改良CTAB Ⅱ法提取DNA獲得的DNA譜帶,加樣孔有亮點(diǎn),并且有拖尾現(xiàn)象,說明提取的DNA樣品被多糖或者蛋白雜質(zhì)污染并有降解現(xiàn)象。改良CTAB Ⅲ法提取DNA雖然純度較高,但濃度不高。利用改良CTAB Ⅳ法提取DNA獲得的DNA譜帶,電泳時(shí)加樣孔干凈,無拖帶降解現(xiàn)象,DNA純度、濃度較高(見圖1)。

    注:M:BM8000 DNA Marker;數(shù)字編號(hào)對(duì)應(yīng)品種名稱與表1相同。

    2.1.2 DNA純度和濃度的測(cè)定 用紫外分光光度計(jì)測(cè)定改良CTAB法(Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ)提取DNA的OD260和OD280吸收值,并計(jì)算OD260/OD280的比值,分析DNA的純度和濃度。結(jié)果表明:改良CTAB Ⅰ法提取DNA的OD260/OD280比值均小于1.8,且DNA濃度不高(見表2);改良CTAB Ⅱ、改良CTAB Ⅲ法提取DNA的OD260/OD280比值大部分小于1.8,DNA濃度較低(見表3、表4)。說明這3種方法提取的DNA不純,含有較多的蛋白質(zhì)或酚類物質(zhì)。CTAB Ⅳ法提取的DNA的OD260/OD280比值均在1.8~2.0之間,即提取的DNA純度較高,經(jīng)計(jì)算CTAB Ⅳ法獲得DNA的濃度也較高(見表5)。

    表2 改良CTAB Ⅰ法DNA的純度及濃度

    表3 改良CTAB Ⅱ法DNA的純度及濃度

    表4 改良CTABⅢ法DNA的純度及濃度

    表5 改良CTAB Ⅳ法DNA的純度及濃度

    2.2 ISSR標(biāo)記引物的ISSR-PCR電泳結(jié)果

    利用UBC811隨機(jī)引物對(duì)用改良CTAB Ⅳ法提取的20種石榴葉片DNA進(jìn)行ISSR-PCR擴(kuò)增反應(yīng),以便用于石榴種質(zhì)資源遺傳多樣性研究,從擴(kuò)增基因組DNA的圖譜上可以看出(見圖2),除部分樣品加樣失誤而無擴(kuò)增外(8號(hào)、15號(hào)),其余樣品DNA經(jīng)ISSR擴(kuò)增多態(tài)性良好,擴(kuò)增總條帶數(shù)目22個(gè),多態(tài)性條帶數(shù)目15個(gè),多態(tài)性比率為93.6%,片段大小約200~2 000 bp。這表明,改良CTAB Ⅳ法提取的基因組總DNA能較好地進(jìn)行ISSR-PCR擴(kuò)增反應(yīng)。

    3 結(jié)論

    本研究以中國(guó)石榴種質(zhì)資源圃石榴成熟葉片為材料,采用改良CTAB法(Ⅰ、Ⅱ、 Ⅲ、Ⅳ)提取石榴基因組DNA,結(jié)果表明:用改良的CTAB Ⅳ 法能夠提取基因組總DNA,其完整性和純度較好、濃度較高,其質(zhì)量、產(chǎn)量都高于其他改良CTAB法。以20個(gè)品種石榴基因組DNA為模板,使用改良的CTAB Ⅳ 法提取的DNA進(jìn)行石榴ISSR-PCR擴(kuò)增,ISSR結(jié)果多態(tài)性好,表明此方法提取的石榴成熟葉片基因組總DNA完全適于ISSR分析。因此,采用改良的CTAB Ⅳ 法是提取石榴成熟葉片DNA 的較佳方法,可獲得成熟石榴葉片中高質(zhì)量基因組DNA。

    注:M:100 bp DNA ladder;數(shù)字編號(hào)對(duì)應(yīng)品種名稱與表1相同。

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