孫佳星 ,婁 琦,彭雅慧,玉 藍(lán),黃文婷,李琳琳
(1.大連民族大學(xué)環(huán)境與資源學(xué)院,遼寧大連116600;2.吉林市園藝特產(chǎn)技術(shù)中心,吉林吉林132000)
灰霉病是我國設(shè)施番茄生產(chǎn)中的重要病害,主要由灰葡萄孢(Botrytis cinerea)侵染所引起,可危害番茄葉、莖、果實(shí)等部位,傳播性強(qiáng),嚴(yán)重影響番茄的產(chǎn)量和品質(zhì)[1]。實(shí)際生產(chǎn)中多采用化學(xué)藥劑預(yù)防和控制病害,并發(fā)揮了重要的作用,但近年來由于化學(xué)農(nóng)藥造成的環(huán)境污染和人們對(duì)食品安全的擔(dān)憂日益突出。通過生物誘導(dǎo)物質(zhì)激活植物自身免疫系統(tǒng)是一種更為主動(dòng)、安全、經(jīng)濟(jì)、廣譜、持久、有效的抗性反應(yīng)方式,其研究受到人們的廣泛關(guān)注,具有重要的理論研究意義和實(shí)際應(yīng)用價(jià)值[2]。
水楊酸(SA)是植物中普遍存在的小分子酚類物質(zhì),是重要的植物激素和抗病信號(hào)分子,SA 的積累標(biāo)志著植物免疫系統(tǒng)的激活,它還可以迅速的傳遞到植物其他部位產(chǎn)生系統(tǒng)獲得抗性(SAR)[3-4]。SA依賴型的抗性反應(yīng)對(duì)病原物普遍有效(包括真菌、細(xì)菌和病毒),擬南芥通過抗氧化酶基因OXR2 激活植物體內(nèi)SA 的積累,提高對(duì)丁香假單胞菌的抗性[4]。又如SA提高PR1的表達(dá)提高早熟禾對(duì)褐斑病的抗性[5]。
鈣是植物生長發(fā)育過程中一種重要的營養(yǎng)元素,在植物體內(nèi)發(fā)揮重要作用。有研究表明鈣可激發(fā)植物對(duì)病原菌的抗性,包括產(chǎn)生先天性免疫反應(yīng)、過敏性反應(yīng)和病原物相關(guān)分子模式觸發(fā)免疫[6]。施用鉀和鈣可顯著降低甜羅勒的百霉病[7];2%~3%的CaCl2對(duì)生姜青枯病具有很好的抑制效果[8];葉片外施鈣可通過調(diào)控ROS響應(yīng)大豆核菌侵染[9];小麥細(xì)胞內(nèi)Ca2+水平的波動(dòng)可引起CDPK的表達(dá)提高對(duì)白粉病的抗性[10];土壤施鈣可以有效提高番茄葉片鈣含量和PAL、PPO 活性,提高其對(duì)枯萎病的抗性[11],這說明Ca2+在防治植物病害方面的積極作用,并有可能通過ROS、提高防御酶活性、改變細(xì)胞代謝途徑及鈣相關(guān)基因表達(dá)來調(diào)控植物抗病。
前人分別在鈣和SA 誘導(dǎo)的生物脅迫中展開了大量研究,但目前關(guān)于鈣對(duì)SA 調(diào)控設(shè)施番茄的抗病性研究為數(shù)不多。本試驗(yàn)以L402 番茄為試材,以前期試驗(yàn)篩選確定的補(bǔ)鈣濃度為基礎(chǔ),研究根際Ca2+對(duì)番茄幼苗SA含量、灰霉病抗性、防御酶活性和基因表達(dá)水平的影響。為進(jìn)一步研究鈣對(duì)SA 誘導(dǎo)抗病的作用機(jī)制和生產(chǎn)上開發(fā)新的生物抗病試劑奠定理論基礎(chǔ)。
供試番茄(Lycopersicon esculenturnMill)品種為L402,屬于灰霉病敏感型。供試灰霉菌(Botrytis cinerea)由遼寧省農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所惠贈(zèng),病菌培養(yǎng)基為PDA。
試驗(yàn)于2018年4月20日進(jìn)行,番茄種子經(jīng)55℃溫水處理10 min后,于30℃水溫浸種4h,然后置光照培養(yǎng)箱中28℃催芽,選擇出芽一致的種子,進(jìn)行32孔穴盤普通基質(zhì)育苗。番茄幼苗長到4葉1心時(shí)洗根移植到溫度處理室中的1/2 Hoagland營養(yǎng)液中適應(yīng)7d。溫度處理室由自動(dòng)控溫系統(tǒng)G IC-Ⅲ型溫室環(huán)境智能化控制器(沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)工廠化農(nóng)業(yè)中心研制)按白天25℃、夜間15℃調(diào)控溫度;采用自然光照;控制器控制排風(fēng)扇實(shí)時(shí)調(diào)節(jié)濕度,相對(duì)濕度為60%~70%。其他進(jìn)行常規(guī)管理。
番茄幼苗適應(yīng)7d 后(番茄幼苗長至 5 葉1 心)進(jìn)行Ca2+處理:T0 處理(對(duì)照,Ca2+濃度3mmol·L-1)、T1 處理(Ca2+濃度為8mmol·L-1)、T2 處理(Ca2+濃度為0mmol·L-1)。正常Hoagland 營養(yǎng)液的標(biāo)準(zhǔn)Ca2+濃度為 3mmol·L-1,8mmol·L-1Ca2+濃度是在標(biāo)準(zhǔn)Hoagland營養(yǎng)液基礎(chǔ)上使用CaCl2調(diào)節(jié)營養(yǎng)液中Ca2+濃度,0mmol·L-1Ca2+濃度是在標(biāo)準(zhǔn)Hoagland 營養(yǎng)液[12]基礎(chǔ)上使用KNO3代替Ca(NO3)2剔除Ca2+并補(bǔ)充營養(yǎng)液中N 的濃度。營養(yǎng)液使用HCl和NaOH調(diào)節(jié)營養(yǎng)液中pH值達(dá)5.8~6.3,平均3d測定1次營養(yǎng)液的離子濃度和pH值。
Ca2+處理3d 后接種灰霉菌?;颐咕捎面咦討乙航臃N法,鏡檢調(diào)節(jié)孢子懸液濃度為4×106個(gè)孢子·mL-1懸液均勻噴施植株葉片背面,直到滴水為止。接種前保濕24h,接種后48h 內(nèi)保持濕度達(dá)100%并進(jìn)行遮陰,溫度設(shè)置為25℃/15℃。于接種6,12,24,48,72,96h 取樣進(jìn)行后續(xù)指標(biāo)測定。接種5d 后調(diào)查發(fā)病情況并計(jì)算病情指數(shù)。每個(gè)處理10株,3次重復(fù)。
1.2.1 發(fā)病情況調(diào)查和病情指數(shù)的計(jì)算 灰霉病發(fā)病程度分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)為:0級(jí),無病斑;1級(jí),病斑面積占葉面積5%以下;3級(jí),病斑面積占葉面積5%~15%;5級(jí),病斑面積占葉面積15%~25%;7級(jí),病斑面積占葉面積25%~50%;9級(jí),病斑面積占葉面積50%以上。采用分級(jí)計(jì)數(shù)法計(jì)算病情指數(shù)。
1.2.2 游離態(tài)SA含量、超氧陰離子產(chǎn)生速率和過氧化氫含量的測定 SA的提取和測定參照YALPANI等[13]方法略有改進(jìn)。游離態(tài)SA含量用高效液相色譜(HPLC)測定。超氧陰離子產(chǎn)生速率過氧化氫(H2O2)含量的測定參照PATTERSON等[14]的方法略有改進(jìn)。
1.2.3 鈣含量的測定 稱取烘干樣品使用馬弗爐進(jìn)行灰化,使用原子吸收分光光度計(jì)測定鈣含量[15]。
1.2.4 苯丙氨酸解氨酶(PAL)、β-1,3-葡聚糖酶、幾丁質(zhì)酶活性測定 使用pH值8.8的0.1mol·L-1硼酸-硼砂緩沖液研磨番茄葉片,離心后上清液為酶粗提液,以37 ℃保溫前后每小時(shí)酶促反應(yīng)產(chǎn)物反式肉桂酸生成量來表示PAL酶活。β-1,3-葡聚糖酶、幾丁質(zhì)酶酶活性根據(jù)BOLLER等[16]的方法略有改進(jìn),以每秒分解膠狀幾丁質(zhì)產(chǎn)生1×10-9mol N-乙酰葡萄糖胺量為一個(gè)酶活力單位;β-1,3-葡聚糖酶活性測定利用DNS試劑測定生成還原糖的量來表示。蛋白質(zhì)含量測定采用BRADFORD[17]的方法,用考馬斯亮藍(lán)G-250法測定蛋白含量,以牛血清蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白。
1.2.5 RNA提取和RT-PCR基因表達(dá)分析 根據(jù)NCBI發(fā)表的番茄PR1、CDPK、CaM、CBL和Actin基因片段的序列,使用primer Primer 5.0軟件進(jìn)行特異引物設(shè)計(jì),使用TianGen RNA提取試劑盒提取的RNA,作為模板使用Takara PrimeScript Reverse Transcriptase 合成cDNA第一鏈(表1)。根據(jù)KIM等[18]的方法采用實(shí)時(shí)熒光定量(qRT-PCR)進(jìn)行表達(dá)量分析。
表1 實(shí)時(shí)定量PCR引物Table 1 Primers of quantitative real time PCR
試驗(yàn)所得數(shù)據(jù)采用Excel 2016 軟件進(jìn)行整理和作圖,不同處理間差異的顯著性采用SPSS 19.0 軟件進(jìn)行Duncan’n多重比較分析(α=0.05)。
由圖1 可知,本試驗(yàn)3 個(gè)根際Ca2+濃度處理?xiàng)l件下接種灰霉菌,其中,8mmol·L-1Ca2+處理的病情指數(shù)為36.05,3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理的病情指數(shù)分別為42.50 和73.24。Ca2+濃度越高病情指數(shù)越低,抗病效果越好,且不同Ca2+處理間的抗病性差異達(dá)到極顯著水平。
由圖 2 可知,與對(duì)照相比,在 8mmol·L-1Ca2+處理?xiàng)l件下,游離態(tài)SA 含量在接種6h 增加到157.54 ng·g-1FW,并一直(6~96h)保持相對(duì)較高的水平;其含量在 24~96h 分別高于對(duì)照 2.0~2.5 倍。0mmol·L-1和3mmol·L-1處理的游離 SA 含量低于 8mmol·L-1Ca2+處理,且0mmol·L-1Ca2+處理游離SA含量低于對(duì)照。
圖1 不同根際Ca2+濃度處理番茄幼苗接種灰霉菌的病情指數(shù)Figure 1 The disease index of different rhizosphere Ca2+con‐centration treated tomato seedlings after Botrytis cinerea infec‐tion
H2O2含量在8mmol·L-1Ca2+處理的番茄葉片接種灰霉菌 0~24h 劇烈的升高,明顯高于 3mmol·L-1和 0mmol·L-1Ca2+處 理 ,其 高 峰 出 現(xiàn) 在 24h,分 別 是 3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理的1.75和2.94倍;24~96 h劇烈的降低,在48h降低到3mmol·L-1的83%,0 mmol·L-1Ca2+處理的1.40倍。對(duì)照的H2O2含量在接種期間始終高于0mmol·L-1Ca2+處理。
圖2 根際Ca2+處理接種灰霉菌對(duì)番茄幼苗葉片游離態(tài)SA含量的影響Figure 2 The effect of rhizosphere Ca2+ treatments on the free SA content in tomato seedling leaves inoculated with Botrytis cinerea
由表2可知,在8mmol·L-1Ca2+處理?xiàng)l件下番茄體內(nèi)鈣含量顯著高于3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理,分別是二者的1.24 倍和1.86 倍。所有處理葉片PAL 活性均隨時(shí)間延長而升高,但升高趨勢不同。處理6 h 時(shí),0 mmol·L-1Ca2+處理的番茄葉片PAL 活性與對(duì)照相比上升37.73%,到12~96 h,0mmol·L-1Ca2+處理植株P(guān)AL 活性始終低于對(duì)照;在8mmol·L-1Ca2+處理中,PAL 活性始終高于對(duì)照,并顯著高于0mmol·L-1Ca2+處理,且在處理24h活性最高,分別是3mmol·L-1和0 mmol·L-1Ca2+處理的2.63倍和3.82倍。
所有處理幾丁質(zhì)酶和β-1,3-葡聚糖酶活性均是迅速升高而后緩慢下降的過程。對(duì)照的幾丁質(zhì)酶活性高峰出現(xiàn)在處理后48h,8 mmol·L-1Ca2+處理酶活高峰出現(xiàn)在處理后24h,0mmol·L-1Ca2+處理酶活高峰出現(xiàn)在處理后72h,分別為1.66U·mg-1protein、1.90U·mg-1protein 和1.23U·mg-1protein;8mmol·L-1Ca2+處理酶活較對(duì)照和0mmol·L-1Ca2+處理分別提高了14.45%和54.47%。在整個(gè)處理期間幾丁質(zhì)酶活性8mmol·L-1Ca2+處理高于對(duì)照,對(duì)照顯著高于0 mmol·L-1Ca2+處理。β-1,3-葡聚糖酶活性在12~96h 期間3 個(gè)處理間差異顯著,在處理6~24h 酶活均迅速上升,24~48h 達(dá)到酶活高峰,48~96 h 酶活保持相對(duì)穩(wěn)定略有下降。8mmol·L-1Ca2+處理的β-1,3-葡聚糖酶活性在處理后24h到達(dá)高峰,為117.73U·mg-1protein,顯著高于3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理,分別是 3mmol·L-1和 0mmol·L-1Ca2+處理的 1.24 倍和 1.40 倍。0mmol·L-1Ca2+處理的 β-1,3-葡聚糖酶活性高峰在24h出現(xiàn),為84.07U·mg-1protein,對(duì)照的酶活高峰出現(xiàn)在48h,為103.44U·mg-1protein。
表2 不同根際Ca2+處理接種灰霉菌對(duì)番茄葉片鈣含量和防御酶活性的影響Table 2 The effect of rhizosphere Ca2+ treatments on calcium content, defense enzyme activities in tomato seedling leaves inoculated with Botrytis cinerea
由圖4可知,鈣結(jié)合蛋白基因CDPK、CaM、CBL的表達(dá)模式均是先升高后緩慢降低的趨勢,其中CDPK的表達(dá)高峰出現(xiàn)在接種后 12h,8mmol·L-1Ca2+處理的表達(dá)量是 3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理的 2.44 倍和 4.45 倍;與對(duì)照和0mmol·L-1Ca2+處理相比,8mmol·L-1Ca2+處理的CDPK 表達(dá)水平在接種24~96 h均保持相對(duì)較高水平。CaM的表達(dá)量在 3 個(gè)處理中均升高,在 8mmol·L-1Ca2+處理下高峰出現(xiàn)在 24 h,分別為 3mmol·L-1和 0mmol·L-1Ca2+處理的2.41倍、1.17倍;0mmol·L-1Ca2+處理下6~48hCaM的表達(dá)量均高于對(duì)照。CBL基因在8mmol·L-1Ca2+處理?xiàng)l件下接種灰霉菌后迅速升高并一直保持較高表達(dá)水平,3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理?xiàng)l件下則是在6~24h升高,48h迅速下降后基本保持表達(dá)量穩(wěn)定。Ca2+濃度越高PR1基因表達(dá)量越高,在接種灰霉菌后24 h表達(dá)量最高為26.01,分別為3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理的1.60倍和3.17倍。整體看接種灰霉菌0~96 h過程中PR1的表達(dá)量為:8mmol·L-1處理 > 3mmol·L-1處理> 0mmol·L-1處理。
Ca2+和SA 在防治植物病害方面有積極的作用。ARFAOUI 等[9]對(duì)大豆外施鈣可顯著抑制核菌的侵染;不同Ca2+處理可顯著降低生姜的青枯病的發(fā)病率[8],CLARK 等[19]則認(rèn)為真菌的侵染可能是植物缺Ca2+的間接結(jié)果。植物體內(nèi)SA 含量的提高可被視為植物提高抗病性的一種標(biāo)志。DU 等[20]研究發(fā)現(xiàn)Ca2+可以調(diào)控?cái)M南芥水楊酸的積累和對(duì)病原物的抗性;擬南芥中CBP60(一種鈣調(diào)素結(jié)合蛋白)與Ca2+聯(lián)合起來促進(jìn)SA 的積累提高病原抗性[21]。本試驗(yàn)中根際8mmol·L-1Ca2+處理中,番茄葉片中游離態(tài)SA含量明顯升高、病情指數(shù)均顯著低于3mmol·L-1Ca2+處理;而 3mmol·L-1Ca2+處理番茄幼苗 SA 含量高于 0mmol·L-1Ca2+處理;病情指數(shù)又低于 0mmol·L-1Ca2+處理。隨著根際Ca2+處理濃度升高,植物體內(nèi)鈣含量也隨之升高。證明根際補(bǔ)充Ca2+具有顯著提高番茄抗灰霉病的能力。筆者認(rèn)為一方面因?yàn)檠a(bǔ)充的Ca2+被植物吸收,增強(qiáng)細(xì)胞壁的機(jī)械強(qiáng)度,提高植物細(xì)胞對(duì)病原菌侵染的抵御能力。另一更重要方面是Ca2+促進(jìn)SA合成提高番茄對(duì)灰霉病的抗性。
圖4 根際Ca2+對(duì)番茄幼苗接種灰霉菌后鈣相關(guān)基因和病程相關(guān)蛋白基因1表達(dá)的影響Figure 4 The effect of rhizosphere Ca2+ treatments on calcium related genes and PR1 expression level in tomato seedling leaves inoculated with Botrytis cinerea
ROS 的爆發(fā)繼而引起防御酶(PAL、幾丁質(zhì)和β-1,3-葡聚糖)活性升高。PAL 是產(chǎn)生抗病物質(zhì)丙烷類代謝途徑的關(guān)鍵酶[24-25]。本試驗(yàn)中不同根際鈣處理PAL 活性均隨時(shí)間延長而升高,8mmol·L-1Ca2+處理PAL 活性始終高于對(duì)照。馮軍等[24]研究發(fā)現(xiàn)SA 可有效誘導(dǎo)草莓PAL 的積累,進(jìn)而增強(qiáng)草莓抵御白粉菌侵染的能力,與本研究結(jié)果一致。β-1, 3-葡聚糖酶和幾丁質(zhì)酶可水解真菌細(xì)胞壁是植物抗病重要指標(biāo)。SCHNEIDERMüLLER 等[26]發(fā)現(xiàn),用殼聚糖處理胡蘿卜懸浮細(xì)胞可誘導(dǎo)產(chǎn)生幾丁質(zhì)酶,除去胞外Ca2+明顯降低誘導(dǎo)物對(duì)幾丁質(zhì)酶的誘導(dǎo)作用;SA 處理番茄幼苗后幾丁質(zhì)酶,β-1,3-葡聚糖酶活性明顯提高[27],本試驗(yàn)中β-1,3-葡聚糖酶和幾丁質(zhì)酶活性在根際Ca2+處理接種灰霉菌后均顯著升高,8mmol·L-1Ca2+處理幾丁質(zhì)酶活性和β-1,3-葡聚糖酶活性顯著高于3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理。在0mmol·L-1Ca2+處理中,鈣含量、幾丁質(zhì)酶和β-1,3-葡聚糖酶活性降到最低水平,且與Ca2+濃度和游離態(tài)SA 含量呈正相關(guān)關(guān)系。筆者認(rèn)為Ca2+促進(jìn)SA 積累,Ca2+和SA共同激發(fā)ROS導(dǎo)致PAL、β-1,3-葡聚糖酶和幾丁質(zhì)酶活性的提高。
植物細(xì)胞中有Ca2+/CDPK、Ca2+/CaM 和Ca2+/CBL 3種主要的鈣信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,它們均可以與Ca2+結(jié)合與植物抗逆反應(yīng)密切相關(guān)[28]。如在柑橘潰瘍病抗性的SNP 篩選中發(fā)現(xiàn)與抗病相關(guān)的CDPK基因上調(diào)表達(dá)[28];在PEG 6000 滲透脅迫下,Ca2+/CaM 調(diào)控SA 誘導(dǎo)的小桐子幼苗甜菜堿積累[29];TaCIPK31 在小麥抵抗葉銹菌侵染過程中起負(fù)調(diào)控作用[30]。本試驗(yàn)分析了鈣結(jié)合蛋白基因CDPK、CaM、CBL的表達(dá)情況,其中CDPK和CaM的表達(dá)水平高于CBL,且CDPK和CaM的表達(dá)模式與防御酶活性和PR1的表達(dá)模式一致,說明CDPK和CaM與番茄對(duì)灰霉菌抗性密切相關(guān),與張娜等的研究結(jié)果相似[30]。PR1基因是SA 抗病信號(hào)途徑的標(biāo)志性基因[7],PR1基因的表達(dá)受SA、JA、病原菌、礦質(zhì)元素等多種物質(zhì)誘導(dǎo)[7],本試驗(yàn)也與前人研究結(jié)果一致,但8mmol·L-1Ca2+處理的PR1基因的表達(dá)水平高于3mmol·L-1和0mmol·L-1Ca2+處理,說明Ca2+促進(jìn)SA的積累,并與SA一同進(jìn)一步提高了8mmol·L-1Ca2+條件下PR1的表達(dá)水平。
綜上所述,根際8mmol·L-1Ca2+處理后接種灰霉菌降低番茄的病情指數(shù),提高抗病性,促進(jìn)ROS 的爆發(fā),提高番茄幼苗體內(nèi)游離態(tài)SA含量,SA和ROS共同提高了PAL、幾丁質(zhì)酶、β-1,3-葡聚糖酶活性和PR1表達(dá)水平;Ca2+結(jié)合蛋白基因CDPK和CaM受不同根際鈣處理影響且與抗病密切相關(guān);根際Ca2+提高番茄抗灰霉病效果顯著。