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    哮喘中miR-29b、B7-H3 調(diào)控巨噬細(xì)胞極化影響CD4+T 細(xì)胞分化的作用及機制研究

    2021-05-15 02:18:00王月月陳正榮顧文婧
    關(guān)鍵詞:共培養(yǎng)熒光素酶極化

    王月月,季 偉,陳正榮,顧文婧

    (蘇州大學(xué)附屬兒童醫(yī)院,江蘇蘇州 215003)

    支氣管哮喘是一種復(fù)雜的慢性炎癥性疾病,以氣道炎癥、可逆性氣流受限和氣道高反應(yīng)性為主要特征,是兒童中最常見的非傳染性疾病。2018 年世界衛(wèi)生組織(WHO)的概況介紹顯示,在世界人口中,約有2.35 億人患有哮喘,作為一個全球公共衛(wèi)生問題,因其診斷及治療不足,給個人和家庭帶來了沉重負(fù)擔(dān)[1]。從發(fā)病機制水平闡明哮喘的發(fā)病原因,外部干預(yù)從而改善哮喘癥狀,甚至根治哮喘是當(dāng)今醫(yī)學(xué)的一大重任。

    至今報道的文獻中涉及哮喘發(fā)病機制眾多,與免疫、神經(jīng)、精神、內(nèi)分泌等密切相關(guān),但發(fā)病機制仍無確切定論,目前比較認(rèn)可的為免疫方面學(xué)說。經(jīng)典免疫學(xué)說認(rèn)為Th1 細(xì)胞與Th2 細(xì)胞的比例失衡是哮喘發(fā)病的原因[2]。因此,糾正哮喘患者體內(nèi)的Th 細(xì)胞比例失衡可能是哮喘免疫治療的關(guān)鍵。

    T 細(xì)胞的活化需要雙信號[3]。第一信號為抗原提呈細(xì)胞(APC)處理后的MHC-抗原肽復(fù)合物,第二信號為抗原提呈細(xì)胞表面的共刺激分子。巨噬細(xì)胞是先天性的免疫細(xì)胞,通過識別,響應(yīng)和破壞入侵的微生物,抗原呈遞,清除細(xì)胞碎片來維持組織和免疫穩(wěn)態(tài),以及產(chǎn)生炎癥調(diào)節(jié)產(chǎn)物,在T 細(xì)胞分化中發(fā)揮作用[4,5]。巨噬細(xì)胞自身的極化同樣影響T 細(xì) 胞 的 分 化[6]。B7‐H3 作 為 共 刺 激 分 子 的 一員,可以通過調(diào)節(jié)Th 細(xì)胞型炎癥因子影響T 細(xì)胞的分化[7,8]。近年來有研究報道稱,微小RNA 可以在轉(zhuǎn)錄后調(diào)控基因的表達,在調(diào)節(jié)氣道炎癥方面發(fā)揮重要作用[9,10]。有文獻報道哮喘的產(chǎn)生與某些miRNA 的異常表達相關(guān),在OVA 誘導(dǎo)的過敏性哮喘的小鼠模型中發(fā)現(xiàn),多種miRNA 在肺組織中存在明顯的改變[10],提示miRNA 參與氣道炎癥調(diào)節(jié)。

    T 細(xì)胞的分化主要由APC 的種類及APC 表面的共刺激分子決定。筆者猜想可以通過調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞表達的共刺激分子B7‐H3 及相關(guān)微小RNA 觀察巨噬細(xì)胞對T 細(xì)胞分化的影響。因此從B7‐H3入手,尋找調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞屬性的miRNA。由于巨噬細(xì)胞來源于單核細(xì)胞,筆者采集了哮喘患兒及外科手術(shù)正常兒童外周血,分離外周血單個核細(xì)胞,采用基因芯片技術(shù)篩選相關(guān)的miRNAs,由于在哮喘患者中miR-29b 個體差異較小,哮喘組與對照組的差異倍數(shù)大,所以選擇了這個miR-29b 作為研究基因。通過調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞B7‐H3、miR-29b 的表達觀察其對CD4+T 細(xì)胞分化的影響。

    1 資料與方法

    1.1 一般資料

    選取2018 年5 月~2019 年4 月在蘇州大學(xué)附屬兒童醫(yī)院門診就診并符合哮喘診斷的患兒48 例,其中有25 例的患兒處于哮喘的急性發(fā)作期;23 例患兒處于哮喘非急性發(fā)作期,門診就診時抽取外周血。選取與哮喘患者就診時間相當(dāng)?shù)耐饪苹純海ㄗ≡耗康闹饕獮閾衿谑中g(shù):包括疝氣修補手術(shù)、包皮切除手術(shù))15 例作為對照組,術(shù)前抽取外周血。對照組患兒及家族成員無過敏性疾病史,近1 個月無感染史無用藥史。上述研究得到蘇州大學(xué)附屬兒童醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)同意(倫理號:2020CS039),患兒家屬同意抽血檢查。

    1.2 納入標(biāo)準(zhǔn)與排除標(biāo)準(zhǔn)

    哮喘的診斷標(biāo)準(zhǔn)參照兒童支氣管哮喘診斷與防治指南(2016 年版)[11]。

    1.3 實驗方法

    人外周血單個核細(xì)胞及CD4+T 細(xì)胞的分離參照說明書操作。

    THP-1 細(xì)胞用PMA 試劑誘導(dǎo)分化為單核巨噬細(xì)胞:THP-1 細(xì)胞培養(yǎng)液中加入濃度50 ng/mL 的PMA 培養(yǎng)6 h,換無PMA 完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24 h。

    miR-29b 上、下調(diào)對巨噬細(xì)胞功能的影響:接種THP-1 細(xì)胞,加終濃度為50 ng/mL 的PMA 培養(yǎng)6 h后,換無PMA 完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24 h,然后用LV526、LV527 和NC 病毒侵染誘導(dǎo)成功的巨噬細(xì)胞,24 h 收集樣品進行Q-PCR 檢測,分析miR-29b上、下調(diào)對巨噬細(xì)胞功能的影響。

    細(xì)胞共培養(yǎng):6 孔板中準(zhǔn)備貼壁單核巨噬細(xì)胞5×105個/孔,按巨噬細(xì)胞與CD4+T 細(xì)胞1︰10 比例,準(zhǔn)備0.4 μm 孔徑的6 孔板transwell 小室,上室加入含5×106個CD4+T 細(xì)胞的培養(yǎng)液1 mL;貼壁培養(yǎng)巨噬細(xì)胞的6 孔板為下室,換液加培養(yǎng)液2 mL;共培養(yǎng)3 d。然后收集CD4+T 細(xì)胞檢測轉(zhuǎn)錄因子的表達。

    細(xì)胞共培養(yǎng)分組:組1:啟動活化的CD4+T 細(xì)胞,(用PMA(20 ng/mL)+Ionomycin(1 μg/mL)在37℃下處理細(xì)胞1 h;組2:KD-miR-29b 的巨噬細(xì)胞(下調(diào)miR-29b 的巨噬細(xì)胞)與啟動活化的CD4+T細(xì)胞共培養(yǎng);組3:NC-巨噬細(xì)胞(空載病毒的巨噬細(xì)胞)與啟動活化的CD4+T 細(xì)胞共培養(yǎng)。

    驗證STAT3 為miR-29b 的靶基因:接種THP-1 細(xì)胞,加終濃度為50 ng/mL 的PMA 培養(yǎng)6 h 后,換無PMA 完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24 h,然后用LV528、LV529 和NC 病毒侵染誘導(dǎo)成功的巨噬細(xì)胞形成miR-29b 干擾、miR-29b 過表達以及正常對照組,48 h 進行熒光素酶分析來驗證STAT3 為miR-29b 的靶基因。構(gòu)建STAT3-3′-UTR 熒光素酶報告基因質(zhì)粒,并分為3 組“miR-29b+STAT3-3′-UTR”、“miR-29b + STAT3-mut-3′-UTR”、“miR-29b+ 熒光素酶空載”。

    逆轉(zhuǎn)錄及定量Q-PCR 參照說明書操作,引物序列見表1。

    1.3.1 Western blot 步驟 取樣品采用BCA 法測濃度,上樣40 μg,聚丙烯酰胺凝膠先90 V 跑完積層膠,再將電壓升至200 V 直到電泳結(jié)束。取下凝膠進行轉(zhuǎn)膜,恒壓100 V轉(zhuǎn)膜,約為1.5 h,恒流250 mA. 電轉(zhuǎn)結(jié)束后,取下膜后先用PBST 洗滌4 次,每次5 min。將膜置于5%脫脂奶粉封閉液中封閉37℃1 h。用封閉液稀釋一抗,膜在一抗稀釋液中4℃過夜。次日將膜取出后用PBST 洗膜4 次,每次5 min,用含5%牛奶的封閉液稀釋二抗。膜在二抗中37℃反應(yīng)1 h。反應(yīng)完畢后,把膜取出后置于干凈的盒子中洗膜4次,每次5 min。ECL 顯影,曝光。

    1.3.2 主要試劑及設(shè)備 材料:THP-1 細(xì)胞(諾百生物)、人外周血淋巴細(xì)胞(蘇州市血站健康捐獻者)。

    細(xì)胞培養(yǎng)及分離所需試劑:FBS(美國Hyclone公司)、1640 培養(yǎng)基(Gibco 公司)、PMA(碧云天)、Ficoll 人血淋巴細(xì)胞分離液(GE Healthcare 美國)、磁珠(Miltenyi CD4+T Cell Isolation Kit)、Transwell小室(Corning 公司)。

    PCR 實驗所需試劑:引物合成(蘇州金唯智)、Trizol(Sigma 德國)、異丙醇、氯仿、DEPC 水(上海生工)、75%乙醇(30 mL 無水乙醇+10 mLDEPC水配置)、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Promega 美國)、SYBR Green(Roche 瑞士)。

    表1 Q-PCR 引物序列Tab 1 Primer sequence of Q-PCR

    Western blot 所 需 試 劑:1×PBS(NaCl:8 g、KCl:0.2 g、Na2HPO4:1.44 g、KH2PO4:0.27 g,雙蒸水定容至1 L)、三羥基甲基氨基甲烷(Trizmabase)、甘氨酸(Glycine)、十二烷基硫酸鈉(SDS)、氯化鈉、過硫酸銨(AP)、30%丙烯酰胺溶液(生工)、TEMED(四甲基乙二胺)(BIO-RAD 公司)、Tris-HCl(Sigma 公 司),甲 醇、Tween-20、5×SDSPAGE 蛋白上樣緩沖液(碧云天)、預(yù)染蛋白marker 10~180 kD(ThermoFisher)、封閉專用脫脂奶粉(普利萊)、BSA(牛血清白蛋白)(Biotopped)、Western blot 超敏發(fā)光液(普利萊)、PVDF 膜(Millipore)。

    一抗:PI3K、P-PI3K(Bioss 公司);二抗:羊抗兔-HRP(biovol 公司);Protein Marker(TransGen公司)。

    設(shè)備:超凈工作臺(AIRTECH)、CO2培養(yǎng)箱(Thermo)、超低溫冰箱(?70℃)(海爾公司)、臺式低溫高速離心機(Thermo)、培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)板(Costar公司)、倒置顯微鏡(Olympus)、熒光定量PCR 儀(Roche LightCycler480Ⅱ)、梯度PCR 儀(ABI veri‐ti96-well)、微量分光光度計BioMate3S(Thermo)、凝膠成像系統(tǒng)(GE Imager 600)、蛋白電泳及轉(zhuǎn)膜裝置(Bio-Rad)。

    1.4 統(tǒng)計學(xué)處理

    運用Graphpad8.0 及SPSS21.0 進行統(tǒng)計分析及作圖,計數(shù)資料以百分比(%)表示,組間比較采用卡方檢驗;正態(tài)分布計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間均數(shù)比較采用方差分析,非正態(tài)分布資料以中位數(shù)及四分位數(shù)間距表示,組間比較采用秩和檢驗,相關(guān)性分析采用Spearman 直線相關(guān)分析,P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組一般情況比較

    各組年齡及性別構(gòu)成比較無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);哮喘急性發(fā)作期組患兒其他變應(yīng)性疾病史發(fā)生率高于其他兩組,差別有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.032);對照組無哮喘家族史,與其他兩組比較有統(tǒng)計學(xué)差異(P=0.001)。見表2。

    2.2 各組外周血單個核細(xì)胞中B7H3、miR‐29b 的相對表達量

    哮喘急性發(fā)作期組PBMC 中B7H3 表達量高于哮喘非急性發(fā)作期組與對照組。對照組PBMC 中miR?29b 表達量明顯高于哮喘患兒非急性發(fā)作期組與急性發(fā)作期組,任意兩組間比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.001)。見表3。

    2.3 miR‐29b 上、下調(diào)對巨噬細(xì)胞功能的影響

    沉默表達miR-29b 后IL-4Rα、IL-4、IL-5、IL-13、CD206 明顯升高,而IFN-γ 下降,提示下調(diào)miR-29b 可以促進巨噬細(xì)胞向M2 極化。見表4。

    2.4 不同分組中熒光素酶的表達量

    miR-29b+STAT3 的3UTR 野生型熒光素酶表 達 量 為0.11±0.01,miR-29b+STAT3 的3UTR突變型為0.35±0.01,miR-29b+熒光素酶空載為0.33±0.02。與其他組比較,僅miR-29b+STAT3-3′-UTR(野生型)組熒光素酶表達量下降(P<0.05),證 實miR-29b 可 以 直 接 結(jié) 合 于STAT3-3′-UTR。

    表2 入組患兒一般情況比較Tab 2 General information of patients

    表3 不同分組患兒外周血單個核細(xì)胞中B7?H3、miR?29b 的相對表達量Tab 3 Relative expression of B7?H3 and miR?29b in mono?cytes

    2.5 巨噬細(xì)胞過表達

    miR-29b,STAT3、B7-H3 基因水平及蛋白水平表達下降;抑制miR-29b,STAT3、B7-H3 基因水平及蛋白水平表達上升。見圖1~2,表5。

    2.6 巨噬細(xì)胞B7-H3 與STAT3 mRNA 相對表達量相關(guān)性分析

    巨噬細(xì)胞STAT3 與B7-H3 mRNA 的表達成顯著正相關(guān)(r=0.973 7,P<0.000 1),見圖3。

    2.7 不同分組中T 細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子的表達量

    巨噬細(xì)胞與活化的CD4+T 細(xì)胞共培養(yǎng),可促進初始T 細(xì)胞即Th0 細(xì)胞向Th2 方向分化,其中下調(diào)miR-29b 的巨噬細(xì)胞促進作用更明顯。見表6。

    圖1 蛋白免疫印跡法檢測巨噬細(xì)胞中STAT3、B7?H3 的蛋白表達水平Fig 1 Protein expression of STAT3 and B7-H3 in macro?phages by Western blotting

    圖2 蛋白免疫印跡法檢測巨噬細(xì)胞中STAT3、B7?H3 mRNA 的蛋白表達水平(相對灰度值)Fig 2 Gene expression of STAT3 and B7-H3 in macro?phages by Western blotting

    表4 巨噬細(xì)胞上、下調(diào)miR-29b 后相關(guān)基因的表達(±s)Tab 4 Expression of relative genes after regulating miR‐29b in macrophages(±s)

    表4 巨噬細(xì)胞上、下調(diào)miR-29b 后相關(guān)基因的表達(±s)Tab 4 Expression of relative genes after regulating miR‐29b in macrophages(±s)

    組別NC 對照組miR‐29b 干擾組miR‐29b 過表達組IFN‐γ 0.96±0.04 0.22±0.06*0.87±0.15 52.87<0.001 FP IL‐4Rα 1.01±0.04 3.61±0.45*1.17±0.20 78.45<0.001 CD206/MRC1 0.93±0.13 5.91±0.35*1.29±0.04 481.02<0.001 IL‐4 0.88±0.13 3.84±0.54*0.81±0.11 83.33<0.001 IL‐5 0.86±0.16 3.99±0.32*0.68±0.02 246.05<0.001 IL‐13 1.06±0.12 3.55±0.44*0.75±0.23 82.17<0.001

    表5 不同處理方式的巨噬細(xì)胞中STAT3 及B7-H3 mRNA 的相對表達量(±s)Tab 5 mRNA expression of STAT3 and B7-H3 in macro?phages(±s)

    表5 不同處理方式的巨噬細(xì)胞中STAT3 及B7-H3 mRNA 的相對表達量(±s)Tab 5 mRNA expression of STAT3 and B7-H3 in macro?phages(±s)

    注:與NC 對照組相比,*P<0.05。

    B7‐H3 1.06±0.07 0.49±0.04*1.70±0.15*111.6<0.001組別NC 對照組miR‐29b 干擾組miR‐29b 過表達組FP STAT3 0.94±0.06 0.39±0.02*1.75±0.14*175.96<0.001

    圖3 巨噬細(xì)胞B7?H3 與STAT3 mRNA 相對表達量相關(guān)性分析Fig 3 Correlation between mRAN expression of STAT3 and B7-H3 in macrophages

    表6 不同分組中T 細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子的表達量(±s)Tab 6 Expression of transcription factors of T cel(l±s)

    表6 不同分組中T 細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子的表達量(±s)Tab 6 Expression of transcription factors of T cel(l±s)

    注:K D 為下調(diào)miR‐29b 的巨噬細(xì)胞;NC 為空載病毒巨噬細(xì)胞組;與CD4+T 細(xì)胞組相比,*P<0.05。

    ROR‐γt 1.04±0.04 0.38±0.04*0.75±0.02*261.3<0.001組別CD4+T KD/CD4+T NC/CD4+T FP T‐bet 0.95±0.06 0.25±0.01*0.67±0.04*186.42<0.001 GATA3 0.99±0.02 1.86±0.14*1.48±0.05*73.38<0.001

    3 討論

    我國第三次城市兒童哮喘流行病學(xué)調(diào)查顯示我國城市0~14 歲兒童哮喘兩年現(xiàn)患率為0.42%~5.73%,平均為2.32%,累計患病率為0.48%~7.57%,平均為3.02%,患病率較10 年前有所增加[12]。具有哮喘家族史的兒童較無哮喘家族史的兒童更易罹患哮喘,相對危險度為6.20[13,14],遺傳因素在哮喘的發(fā)病中起著重要的作用。有研究表明,具有變應(yīng)性疾病的患兒更易患哮喘,而且患有變應(yīng)性疾病的患兒哮喘易持續(xù)至青春期。本研究中哮喘急性發(fā)作期與非急性發(fā)作期哮喘家族史的比例及其他變應(yīng)性疾病的比例遠高于對照組,與他人的研究結(jié)果相似。

    根據(jù)不同的微環(huán)境,巨噬細(xì)胞可以分化成不同的亞型,主要分為兩個類型:經(jīng)典的M1 型巨噬細(xì)胞以 及 旁 路M2 型 巨 噬 細(xì) 胞[17,18]。其 中M2 型 巨 噬 細(xì)胞在抑制Th1 型炎癥反應(yīng)和適應(yīng)性免疫反應(yīng)中發(fā)揮作用,增強Th2 型炎癥反應(yīng)[19,20]。參與巨噬細(xì)胞極化的信號分子及通路眾多,如JNK、PI3K/Akt、Notch、JAK/STAT、TGF- β/SMAD 以 及TLR/NF-κB 等信號途徑。文獻報道稱LPS 處理后巨噬細(xì)胞IL-6/STAT3 信號通路受到抑制,但IL-4 誘導(dǎo)后巨噬細(xì)胞激活。IL-6/STAT3 信號通路參與了M1/M2 巨噬細(xì)胞極化[21]。本研究得出在巨噬細(xì)胞中下調(diào)miR-29b,巨噬細(xì)胞向M2 方向極化,且巨噬細(xì)胞中miR-29bDE 靶基因STAT3 表達增多,證實STAT3 參與巨噬細(xì)胞的極化,且下調(diào)miR-29b 的巨噬細(xì)胞與CD4+T 細(xì)胞共培養(yǎng),CD4+T 細(xì)胞向Th2細(xì)胞分化;在哮喘患兒外周血單個核細(xì)胞中存在miR-29b 的低表達,因此哮喘患兒體內(nèi)的巨噬細(xì)胞向M2 方向極化,表現(xiàn)為高Th2 型炎癥反應(yīng)。

    B7-H3 作為抗原提呈細(xì)胞細(xì)胞表面的共刺激分子,對CD4+T 細(xì)胞的分化具有重要的作用,既往研究提示,哮喘患者體內(nèi)存在高表達的sB7-H3,其與哮喘患者體內(nèi)低水平的IFN-γ 成正相關(guān),在動物實驗中也證明B7-H3 可以加重哮喘小鼠氣道炎癥表現(xiàn),以Th2 細(xì)胞型免疫反應(yīng)為主[8]。本研究得出B7-H3 與STAT3 存在協(xié)同作用,兩者可協(xié)同增強Th2型炎癥反應(yīng)。

    所述哮喘患者體內(nèi)存在低表達的miR-29b,巨噬細(xì)胞中STAT3 表達增加,影響巨噬細(xì)胞向M2 極化,協(xié)同共刺激分子B7-H3 促進CD4+T 細(xì)胞向Th2方向極化,加重哮喘癥狀。

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