賈曉瓊 孫秋穎 劉曉宇 信濤
膠質(zhì)瘤是臨床較為常見的原發(fā)性惡性顱腦腫瘤疾病,病灶組織呈浸潤性生長,故外科手術(shù)難以徹底切除,具有術(shù)后復(fù)發(fā)率高、治療困難、生存時間短等特點[1-2]。人膠質(zhì)瘤干細(xì)胞(Glioma stem cells,GSCs)具有自我更新、無限增殖、多向分化等生物學(xué)功能的腫瘤細(xì)胞,其可侵襲和播散至遠(yuǎn)處腦組織,是膠質(zhì)瘤疾病復(fù)發(fā)及難以根治的重要原因[3-4]。因此有效抑制GSCs生物學(xué)行為是治療膠質(zhì)瘤的關(guān)鍵所在。miR-182是一種定位于7q32.2染色體的微小核糖核酸(MicroRNA,miRNA),其可通過靶向調(diào)控磷脂酰肌醇-3-激酶/蛋白激酶B(Phosphatidylinositol 3 kinase/protein kinas B,PI3K/AKT)信號通路促進(jìn)肝癌細(xì)胞生長、增殖和抑制凋亡[5],且人類叉頭框O蛋白3a(FOXO3a)是PI3K/AKT信號通路的下游細(xì)胞因子,主要受AKT調(diào)控[6]。目前miR-182對于GSCs增殖、凋亡、遷移、侵襲等生物學(xué)行為的影響研究較少,且缺乏相關(guān)的機(jī)制研究,因此本研究擬觀察miR-182對GSCs生物學(xué)行為的影響,并探討其靶向調(diào)控PI3K/AKT/FOXO3a信號通路的作用機(jī)制,從而為膠質(zhì)瘤的臨床治療提供理論依據(jù)。
20例膠質(zhì)瘤患者均為內(nèi)蒙古自治區(qū)腫瘤醫(yī)院神經(jīng)外科2014年1月—2015年10月住院行外科手術(shù)切除治療的患者,男15例,女5例,年齡47~68歲,平均年齡(56.7±8.2)歲,術(shù)后病理確診為星形細(xì)胞瘤7例,混合膠質(zhì)瘤5例,多形性膠質(zhì)母細(xì)胞瘤4例,間變性室管膜瘤4例(其中1例經(jīng)實驗室分離,并最終成功培養(yǎng)出GSCs)。所有患者均知情本研究方案及研究目的,本研究方案已通過醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)。
1.2.1 GSCs分離、培養(yǎng)及分選 將采集到的新鮮膠質(zhì)瘤組織均勻剪成約1 mm×1 mm×1 mm大小的組織塊,然后消化處理制成含細(xì)胞上清液,置于DMEM/F12(1∶1)培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),同時加入培養(yǎng)細(xì)胞因子,培養(yǎng)2 d后收集懸浮細(xì)胞球,采用免疫磁珠技術(shù)細(xì)胞分選儀對CD133+GSCs進(jìn)行分選。
1.2.2 CD133+GSCs球免疫組織化學(xué)檢測 CD133+GSCs球貼壁玻片后采用PBS溶液洗滌,然后置于山羊血清溶液中在室溫環(huán)境下孵育1 h,依次加入一抗(兔抗-CD133,濃度為1∶100)抗體及鼠抗-nestin(濃度為1∶100)抗體,最后孵育過夜,再次PBS溶液洗滌后與二抗(濃度為1∶100)一起在室溫下孵育1 h,PBS洗滌后使用DAPI復(fù)染細(xì)胞核。磷酸緩沖鹽溶液替代一抗作為陰性對照組,正常人胚胎神經(jīng)干細(xì)胞作為陽性對照組,采用相關(guān)分析軟件采集和分析免疫組織化學(xué)圖像。
1.2.3 細(xì)胞分組及轉(zhuǎn)染 將處于對數(shù)生長期內(nèi)的CD133+GSCs接種至6孔板中,分為空白對照組(不做特殊處理)、miR-182 mimics組(采用Lipofectamine 2000將miR-182 mimic轉(zhuǎn)染細(xì)胞)及陰性對照組(采用Lipofectamine 2000將無意義序列轉(zhuǎn)染細(xì)胞),每組設(shè)3個重復(fù)。轉(zhuǎn)染后在倒置熒光顯微鏡下計算轉(zhuǎn)染效率。
1.2.4 miR-182 mRNA表達(dá)水平檢測 采用RT-PCR法檢測各組細(xì)胞miR-182 mRNA表達(dá)水平,首先提取細(xì)胞總RNA,合成cDNA,然后采用逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)檢測miR-182 mRNA表達(dá)水平,miR-182:上游引物,5′-ACACTCCAGCTGGGTTTGGCAATGGTAGAACTCAC ACT-3′,下游引物,5′-CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAG TTGAGAGTGTGAG-3′,電泳產(chǎn)物大小為435 bp。β-actin:上游引物,5′-TCACCAACTGG GACGACAT-3′,下游引物,5′-GCACAGCCTGGATAGCAAC-3′,電泳產(chǎn)物大小為173bp。PCR產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳,然后采用相應(yīng)軟件對目標(biāo)條帶予以分析和計算,miR-182/β-actin 作為miR-182 mRNA的相對定量表達(dá)水平。
1.2.5 GSCs增殖檢測 采用CCK-8細(xì)胞活性檢測試劑盒檢測三組GSCs增殖情況。各組細(xì)胞完成轉(zhuǎn)染12 h后,將細(xì)胞接種到96孔板中,接種密度為2×103個/100 μL,接種后12、36、60 h分別加入CCK-8溶液,37℃條件下培養(yǎng)4 h,在波長450 nm處進(jìn)行吸光度測定,對各組細(xì)胞增殖率進(jìn)行計算。
1.2.6 GSCs凋亡檢測 將腫瘤壞死因子(TNF-α)分別加入到空白對照組、陰性對照組和miR-182 mimics實驗組的培養(yǎng)基中,終濃度為100 ng/L,轉(zhuǎn)染后24、48和72 h采用流式細(xì)胞儀檢測各組GSCs凋亡情況(Annexin-V、PI染色陽性)。
1.2.7 GSCs遷移及侵襲能力檢測 采用細(xì)胞劃痕法檢測各組細(xì)胞遷移能力。選取對數(shù)生長期細(xì)胞,在6孔板進(jìn)行鋪板,細(xì)胞數(shù)量為5×105個/孔,細(xì)胞轉(zhuǎn)染24 h后,取各孔中央位置,用黃槍頭槍尖劃出一條劃痕,且劃痕貫穿培養(yǎng)整個孔,保持各孔細(xì)胞劃痕的寬度一致,用吸管吸除細(xì)胞培養(yǎng)液,PBS漂洗(2~3次),將懸浮細(xì)胞和細(xì)胞碎片移除,最后對各孔拍照并將其作為0 h細(xì)胞遷移狀況圖予以保存。隨后將完全培養(yǎng)基重新加入到每孔中,劑量為2.0 mL,放入培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),培養(yǎng)時間為24~48 h,計算各組遷移率。采用Transwell小室檢測各組細(xì)胞侵襲能力,選取對數(shù)生長期細(xì)胞,以DMEM/F12(1∶1)培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞數(shù)為5×105個/mL,取100 μL 細(xì)胞接種在Transwell上室內(nèi),細(xì)胞轉(zhuǎn)染24 h后,下室加入DMEM培養(yǎng)液500 μL,37℃、5%CO2培養(yǎng)24 h后,將濾膜上層的細(xì)胞用棉簽?zāi)ㄈィ瑸V膜以甲醇固定處理5 min,100倍光鏡下選擇5個不同視野的穿過膜的細(xì)胞數(shù),求平均值。
1.2.8 PI3K/AKT/FOXO3a信號通路相關(guān)蛋白檢測 采用蛋白質(zhì)印跡法(Western blot)檢測各組細(xì)胞PI3K(P110α)、p-AKT(Ser473)和FOXO3a蛋白表達(dá)水平,抗體工作濃度均為1∶100,同時選擇GAPDH作為內(nèi)參,采用相關(guān)軟件分析和計算目的蛋白相對密度值。
運用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件分析數(shù)據(jù)資料,多組間比較采用單因素方差分析和重復(fù)測量設(shè)計方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
GSCs經(jīng)培養(yǎng)和連續(xù)傳代5次后采用nestin及CD133染色處理后膠質(zhì)瘤干細(xì)胞球呈陽性表達(dá),且DAPI呈細(xì)胞核著染(圖1)。
圖1 GSCs培養(yǎng)染色鑒定圖像Figure 1 GSCs were identified by staining with nestin and CD133Note:A.GSCs were stained with nestin,showing blue color;B.GSCs were stained with CD133,showing red color;C.GSCs were stained with nestin and CD133,showing merge fluorescence image.
miR-182 mimics內(nèi)有綠色熒光基團(tuán)(FITC),轉(zhuǎn)染24 h后將空白對照組、陰性對照組及miR-182 mimics組在倒置熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染效率,miR-182 mimics組轉(zhuǎn)染效率為87.5%,而空白對照組、陰性對照組未見綠色熒光表達(dá)(圖2)。
miR-182 mimics組miR-182 mRNA表達(dá)水平(0.527±0.116)明顯高于空白對照組(0.125±0.012)及陰性對照組(0.130±0.015)(P<0.01),空白對照組與陰性對照組比較無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05)(圖3,圖4)。
miR-182 mimics組細(xì)胞轉(zhuǎn)染后24、48及72 h時的細(xì)胞增殖率明顯高于空白對照組、陰性對照組(P<0.01),而空白對照組與陰性對照組比較無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05)(表1)。
miR-182 mimics組細(xì)胞轉(zhuǎn)染后24、48及72 h時的細(xì)胞凋亡率明顯低于空白對照組、陰性對照組(P<0.05),而空白對照組與陰性對照組比較無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05)(表2)。
圖2 各組細(xì)胞轉(zhuǎn)染后熒光顯微鏡下圖像Figure 2 GSC fluorescence microscope images in each group after transfectionNote:A.Fluorescence microscope image showed more cells with green fluorescence after transfection of miR-182 mimics in GSCs(the miR-182 mimics group);B.Fluorescence microscope image showed no cells with green fluorescence(the blank control group);C.Fluorescence microscope image showed no cells with green fluorescence(the negative control group).
圖3 各組細(xì)胞miR-182 mRNA表達(dá)水平比較Figure 3 The expression of miR-182 mRNA in each groupNote:**P<0.01,when compared with the miR-182 mimics group.
圖4 各組細(xì)胞miR-182 mRNA電泳圖Figure 4 The expression of miR-182 mRNA in each group by electrophoresisNote:A.RT-PCR products in the miR-182 mimics group;B.RT-PCR products in the blank control group;C.RT-PCR products in the negative control group.
表1 各組細(xì)胞不同時間增殖率比較(%)
表2 各組細(xì)胞不同時間凋亡率比較(%)
miR-182 mimics組細(xì)胞遷移率[(41.37±3.91)%]和侵襲能力(203±25個)均明顯高于陰性對照組[(19.54±1.87)%,114±11個]及空白對照組[(19.17±1.92)%,118±12個](P<0.01),而空白對照組與陰性對照組比較無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05)(圖5,圖6)。
miR-182 mimics組膠質(zhì)瘤干細(xì)胞轉(zhuǎn)染后PI3K、p-AKT蛋白表達(dá)水平明顯高于空白對照組、陰性對照組(P<0.01),F(xiàn)OXO3a蛋白表達(dá)水平明顯低于空白對照組、陰性對照組(P<0.01),而空白對照組與陰性對照組PI3K、p-AKT、FOXO3a蛋白表達(dá)水平比較無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05)(表3,圖7)。
圖7 各組細(xì)胞PI3K、p-AKT、FOXO3a蛋白表達(dá)水平比較Figure 7 The expression of PI3K,p-AKT and FOXO3a proteins in each group
圖5 各組細(xì)胞遷移能力實驗圖(200×)Figure 5 The ability of cell migration in each group(200×)
圖6 各組細(xì)胞侵襲能力實驗圖(200×)Figure 6 The ability of cell invasion in each group(200×)
表3 各組細(xì)胞PI3K、p-AKT、FOXO3a蛋白表達(dá)水平比較
雖然近些年我國醫(yī)療診治技術(shù)得到迅猛的發(fā)展,但膠質(zhì)瘤患者5年生存率仍低于5%,其發(fā)病機(jī)制尚未研究清楚,臨床上也缺乏治療此疾病的靶向藥物[7-8]。miRNAs作為一類新發(fā)現(xiàn)的癌基因或抑癌基因,其表達(dá)水平出現(xiàn)異常在各種惡性腫瘤疾病發(fā)生發(fā)展過程中起著重要作用,可通過影響腫瘤細(xì)胞的生物學(xué)行為對惡性腫瘤產(chǎn)生影響[9]。其中miR-182是一種具有癌基因作用的miRNAs,可明顯增強(qiáng)多種惡性腫瘤細(xì)胞的增殖、侵襲等功能。國內(nèi)外研究均發(fā)現(xiàn)[10-12],miR-182可通過調(diào)控多種基因或蛋白表達(dá)而影響膠質(zhì)母細(xì)胞瘤、膠質(zhì)瘤細(xì)胞的增殖和侵襲能力,但其對GSCs生物學(xué)行為的文獻(xiàn)報道相對較少。
GSCs是類似于神經(jīng)干細(xì)胞的細(xì)胞群,其可通過調(diào)控PI3K/AKT、成纖維細(xì)胞生長因子2、細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶1/2等信號通路促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的增殖、侵襲、免疫逃避,從而促進(jìn)腫瘤組織內(nèi)新生血管形成、術(shù)后疾病復(fù)發(fā)、異質(zhì)性形成,同時還可提高細(xì)胞對放化療的耐受性[13-14]。因此本研究從1例膠質(zhì)瘤患者病灶組織中成功分離出GSCs,經(jīng)實驗室培養(yǎng)及連續(xù)傳代5次后予以nestin、CD133染色鑒定驗證。將miR-182 mimics轉(zhuǎn)染至GSCs后倒置熒光顯微鏡下顯示其轉(zhuǎn)染效率符合隨后的實驗要求,采用RT-PCR法檢測發(fā)現(xiàn),miR-182 mimics組miR-182 mRNA表達(dá)水平明顯高于空白對照組及陰性對照組,提示miR-182 mimics轉(zhuǎn)染細(xì)胞后可明顯提高miR-182 mRNA的表達(dá)水平。然后檢測各組細(xì)胞轉(zhuǎn)染后的各種生物學(xué)行為改變,結(jié)果顯示miR-182 mimics組細(xì)胞的增殖、遷移、侵襲能力均強(qiáng)于空白對照組及陰性對照組,而凋亡率低于空白對照組及陰性對照組,提示miR-182高水平表達(dá)可增強(qiáng)GSCs增殖、遷移、侵襲能力和抑制細(xì)胞凋亡,對GSCs也具有明顯的類癌基因作用。
研究進(jìn)一步分析miR-182通過何種信號通路影響GSCs的生物學(xué)行為,PI3K/AKT信號通路是連接細(xì)胞內(nèi)外信號傳遞的重要橋梁,AKT則是該信號通路的關(guān)鍵環(huán)節(jié),其磷酸化后可使得PI3K/AKT信號通路活化,從而有效調(diào)控處于下游部位的相關(guān)信號分子,對細(xì)胞生物學(xué)行為產(chǎn)生重要的影響[15]。而FOXO3a正是PI3K/AKT信號通路下游部位的重要轉(zhuǎn)錄因子,其受到蛋白激酶B和核因子KB激酶B的抑制劑等修飾活化后,其生物學(xué)活性功能出現(xiàn)顯著性改變,從而在腫瘤細(xì)胞增殖、侵襲等方面發(fā)揮重要作用[16]。國外較多研究均證實[17-18],PI3K/AKT/FOXO3a信號通路參與了細(xì)胞增殖、凋亡、氧化應(yīng)激反應(yīng)等過程。本研究也發(fā)現(xiàn),miR-182 mimics組PI3K、p-AKT蛋白表達(dá)水平明顯高于空白對照組和陰性對照組,而FOXO3a蛋白表達(dá)水平明顯低于空白對照組和陰性對照組,提示miR-182高水平表達(dá)可激活活化GSCs的PI3K/AKT/FOXO3a信號通路。
綜上所述,miR-182可能通過激活活化PI3K/AKT/FOXO3a信號通路而起到增強(qiáng)GSCs增殖、遷移及侵襲能力和抑制細(xì)胞凋亡的作用,有可能成為臨床治療膠質(zhì)瘤的新靶點。本研究還需通過動物實驗研究加以驗證,此外miR-182是否還可通過其他信號通路影響GSCs的生物學(xué)行為仍需繼續(xù)進(jìn)一步探討。