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    STAT1的SUMO4修飾在高糖誘導(dǎo)的腎小管上皮細(xì)胞上皮-間葉性轉(zhuǎn)化中的作用

    2021-04-01 06:47:16谷存洋張怡晗劉淑霞吳怡瑤肖云飛劉金熹王曉丹劉青娟
    臨床與實驗病理學(xué)雜志 2021年2期
    關(guān)鍵詞:報告基因高糖腎小管

    谷存洋,張怡晗,劉淑霞,吳怡瑤,肖云飛,劉金熹,許 潔,王曉丹,劉青娟

    糖尿病腎病(diabetic kidney disease, DKD)是終末期腎病(end-stage renal disease, ESRD)的主要原因,約44%的DKD患者可能發(fā)展為ESRD。腎小管間質(zhì)纖維化(tubulointerstitial fibrosis, TIF)是DKD進(jìn)展到ESRD的主要病理基礎(chǔ),而腎近曲小管上皮細(xì)胞通過上皮-間葉性轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition, EMT)轉(zhuǎn)變?yōu)榧〕衫w維細(xì)胞是產(chǎn)生細(xì)胞外基質(zhì)的主要細(xì)胞,在TIF進(jìn)展中發(fā)揮重要作用[1]。有研究表明,DKD組織中STAT1被磷酸化激活,且STAT1的激活與TIF和EMT有關(guān)[2-3]。小泛素相關(guān)修飾物(small ubiquitin-related modifier, SUMO)是一種重要的蛋白質(zhì)翻譯后修飾[4],STAT1可發(fā)生SUMO化修飾且該修飾會影響STAT1的活性[5-6]。以往關(guān)于STAT1的SUMO化修飾的研究主要集中在SUMO1、SUMO2和SUMO3,而SUMO4主要在腎臟和免疫系統(tǒng)中表達(dá)[7-8]。本文以人腎小管上皮細(xì)胞為分析對象,探討STAT1的SUMO4修飾情況,以及該修飾在高糖誘導(dǎo)的腎小管上皮細(xì)胞EMT中的作用和機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 材料人腎近曲小管上皮細(xì)胞株HK-2購自美國ATCC公司,兔抗SUMO4、α-SMA購自美國Abcam公司;鼠抗vimentin、p-STAT1,購自美國Abcam公司;鼠抗STAT1、兔抗E-cadherin、β-actin、A/G beads,均購自美國ProteinTech公司;報告基因檢測試劑盒購自美國Promega公司;SUMO4與UBC9 siRNA購自上海Sangon Biotech公司;轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine 3000購自美國Thermo Scientific公司;STAT1-Luc質(zhì)粒購自上海Genonmeditech公司。

    1.2 方法

    1.2.1細(xì)胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染 HK-2細(xì)胞用含有10%胎牛血清與1%青鏈霉素混合液的DMEM培養(yǎng)基,在37 ℃ 5% CO2的培養(yǎng)箱中正常培養(yǎng)。待細(xì)胞融合至60%~80%時,隨機(jī)分為:空白對照組,給予正常糖(NG,5.5 mmol/L葡萄糖)培養(yǎng)、高糖組(HG,30 mmol/L葡萄糖)、SUMO4-siRNA(轉(zhuǎn)染SUMO4 siRNA)組、NC-siRNA(轉(zhuǎn)染scrimble siRNA)組、UBC9-siRNA(轉(zhuǎn)染UBC9 siRNA)組。用Lipofectamine 3000將20 nmol/L的SUMO4 siRNA、UBC9 siRNA與500 ng的STAT1-Luc質(zhì)粒轉(zhuǎn)染入HK-2細(xì)胞中,繼續(xù)用高糖培養(yǎng)基培養(yǎng),48 h后收集細(xì)胞進(jìn)行Western blot、Co-IP和雙熒光素酶報告基因分析。

    1.2.2Western blot檢測 用含0.4%蛋白酶抑制劑和1%磷酸酶抑制劑混合物的RIPA裂解緩沖液裂解HK-2細(xì)胞,然后用BCA試劑盒對蛋白進(jìn)行定量。蛋白電泳、轉(zhuǎn)膜后分別用抗SUMO4、STAT1、p-STAT1、E-cadherin、vimentin、α-SMA和β-actin抗體封閉過夜。采用ECL化學(xué)發(fā)光試劑檢測底物蛋白。以β-actin為內(nèi)參,相對蛋白表達(dá)用Gel-Pro analyzer定量。

    1.2.3免疫細(xì)胞化學(xué)檢測 使用6孔板放置無菌蓋玻片培養(yǎng)細(xì)胞,應(yīng)用PV兩步法檢測E-cadherin和α-SMA的表達(dá)。4%多聚甲醛固定細(xì)胞30 min;0.1%Triton打孔30 min;3%H2O237 ℃孵育30 min去除內(nèi)源性過氧化物酶;一抗1 ∶250稀釋,4 ℃過夜;分別滴加反應(yīng)增強(qiáng)液和增強(qiáng)酶標(biāo)山羊抗兔IgG聚合物,37 ℃孵育30 min;DAB顯色,蘇木精復(fù)染核。光學(xué)顯微鏡下觀察陽性信號。

    1.2.4Co-IP檢測 用含0.4%蛋白酶抑制劑和1%磷酸酶抑制劑混合物的RIPA裂解緩沖液裂解HK-2細(xì)胞,然后用BCA試劑盒定量。將裂解物與鼠抗STAT1抗體(1 ∶2 000)在4 ℃搖架上孵育24 h,然后在4 ℃搖架上與蛋白A/G和瓊脂糖孵育過夜。用IP洗滌緩沖液4次,加入Buffer緩沖液,提取的蛋白質(zhì)在100 ℃下煮沸7 min,并用Western blot法檢測SUMO4的表達(dá)。

    1.2.5雙熒光素酶報告基因分析 將STAT1-Luc質(zhì)粒、SUMO4 siRNA或UBC9 siRNA共轉(zhuǎn)染HK-2細(xì)胞,每組均同時轉(zhuǎn)染海腎熒光素酶質(zhì)粒以消除轉(zhuǎn)染效率不同帶來的差異,高糖刺激24 h后加入細(xì)胞裂解液PLB,在室溫充分裂解。裂解液中首先加入LARⅡ試劑,檢測螢火蟲熒光素酶活性,隨后立即加入Stop&Glo試劑,檢測海腎熒光素酶活性。STAT1活性以螢火蟲熒光素酶活性與海腎熒光素酶活性的比值表示。

    2 結(jié)果

    2.1 高糖對HK-2細(xì)胞表型轉(zhuǎn)化的影響正常糖培養(yǎng)時,多數(shù)HK-2細(xì)胞呈典型的鵝卵石樣排列;而高糖培養(yǎng)48 h,多數(shù)細(xì)胞明顯拉長呈梭形(圖1A)。免疫細(xì)胞化學(xué)結(jié)果顯示,高糖刺激后HK-2細(xì)胞內(nèi)E-cadherin陽性信號減弱,而α-SMA陽性信號增強(qiáng)(圖1B)。Western blot結(jié)果表明,正常糖培養(yǎng)不影響vimentin、α-SMA和E-cadherin的表達(dá)(圖1C)。高糖刺激下,與0 h相比,隨刺激時間延長,HK-2細(xì)胞中vimentin、α-SMA的相對表達(dá)量逐漸增高,分別于高糖刺激24、48 h差異有統(tǒng)計學(xué)意義。高糖刺激12 h后E-cadherin的相對表達(dá)量有明顯下調(diào),且其表達(dá)變化呈時間依賴性(圖1D、E)。

    2.2 高糖對HK-2細(xì)胞中SUMO4、p-STAT1的影響HK-2細(xì)胞加入高糖刺激后,SUMO4的相對表達(dá)量增高,12 h達(dá)高峰,之后其表達(dá)量有所下降(圖2A、B)。p-STAT1(Tyr701)的相對表達(dá)量在高糖刺激后持續(xù)上升,呈時間依賴性(圖2C、D),但總STAT1的表達(dá)不受高糖影響。正常糖培養(yǎng)不改變SUMO4和p-STAT1的表達(dá)(圖2E)。

    2.3 高糖對STAT1的SUMO4修飾的影響Co-IP檢測HK-2細(xì)胞中STAT1的SUMO4化修飾。正常糖培養(yǎng)時,用STAT1抗體沉淀的蛋白中檢測不到SUMO4,而高糖刺激后可見明顯的SUMO4條帶(圖3),說明兩者在高糖條件下有明顯的結(jié)合,并且轉(zhuǎn)染UBC9 siRNA可明顯抑制兩者的結(jié)合,提示兩者間的結(jié)合是STAT1發(fā)生了SUMO4修飾。

    2.4 STAT1的SUMO4修飾對其轉(zhuǎn)錄活性的影響HK-2細(xì)胞中加入高糖刺激24 h后,STAT1的活性升高(圖4)。轉(zhuǎn)染SUMO4 siRNA或者UBC9 siRNA之后再給予高糖刺激,均可進(jìn)一步提升STAT1的活性。

    2.5 SUMO4低表達(dá)對高糖誘導(dǎo)HK-2細(xì)胞EMT的影響HK-2細(xì)胞中轉(zhuǎn)染SUMO4 siRNA后再給予高糖刺激48 h,與NC-siRNA組相比,SUMO4-siRNA組中SUMO4的表達(dá)顯著降低,提示敲低SUMO4 siRNA的效果顯著(圖5A、B)。與NC-siRNA組相比,SUMO4-siRNA組HK-2細(xì)胞中α-SMA表達(dá)量顯著升高,而E-cadherin的表達(dá)顯著降低(圖5A、B);提示敲低SUMO4可抑制HK-2細(xì)胞的表型轉(zhuǎn)變。

    3 討論

    DKD的主要病理改變是腎小球硬化及TIF。既往認(rèn)為腎小球病變?yōu)镈KD的主要病理改變,但越來越多的證據(jù)表明TIF與腎功能相關(guān)性比腎小球硬化更為密切。TIF是DKD發(fā)展為ESRD的重要病理基礎(chǔ),與腎小球病變相比,TIF能更好地預(yù)測腎臟疾病的進(jìn)展[3]。TIF的特點是腎成纖維細(xì)胞的異?;罨图?xì)胞外基質(zhì)的過量積累,而腎小管上皮細(xì)胞通過EMT轉(zhuǎn)變?yōu)榧〕衫w維細(xì)胞是產(chǎn)生細(xì)胞外基質(zhì)、促使TIF發(fā)生、發(fā)展的關(guān)鍵病理過程。腎小管上皮細(xì)胞發(fā)生EMT的特征是上皮細(xì)胞黏附分子如E-cadherin丟失,并出現(xiàn)肌成纖維細(xì)胞的標(biāo)志物如α-SMA和vimentin等的表達(dá)。本組應(yīng)用30 mmol/L的高糖刺激HK-2細(xì)胞,通過細(xì)胞形態(tài)的改變及E-cadherin的表達(dá)減少和α-SMA、vimentin的表達(dá)增加,再次驗證了高糖可促使HK-2細(xì)胞發(fā)生EMT。

    圖1 高糖對HK-2細(xì)胞中vimentin、α-SMA、E-cadherin表達(dá)的影響:A.光鏡觀察高糖對HK-2細(xì)胞形態(tài)的影響;B.免疫細(xì)胞化學(xué)檢測HK-2細(xì)胞中E-cadherin和α-SMA的表達(dá),PV兩步法;C.Western blot檢測正常糖培養(yǎng)時HK-2細(xì)胞中vimentin、α-SMA、E-cadherin的表達(dá);D.Western blot法檢測高糖培養(yǎng)下HK-2細(xì)胞中vimentin、α-SMA、E-cadherin的表達(dá);E.vimentin、α-SMA、E-cadherin相對表達(dá)量的統(tǒng)計學(xué)分析,與0 h相比,*P<0.05,**P<0.01

    圖2 高糖對HK-2細(xì)胞中SUMO4與p-STAT1表達(dá)的影響:A.Western blot法檢測高糖培養(yǎng)下SUMO4的表達(dá);B.SUMO4相對表達(dá)量的統(tǒng)計學(xué)分析,與0 h相比,*P<0.05,**P<0.01;C.Western blot法檢測高糖培養(yǎng)時p-STAT1(Tyr701)及STAT1在HK-2中的表達(dá);D.p-STAT1(Tyr701)相對表達(dá)量的統(tǒng)計學(xué)分析,與0 h相比 **P<0.01;E.Western blot法檢測正常糖培養(yǎng)時SUMO4、p-STAT1(Tyr701)在HK-2中的表達(dá)

    圖4 雙熒光素酶報告基因分析檢測STAT1的轉(zhuǎn)錄活性:與NG組相比,*P<0.05,**P<0.01;與HG組相比,##P<0.01

    文獻(xiàn)報道STAT1的磷酸化水平與DKD或其它慢性腎臟疾病的TIF和EMT有關(guān)[2-3,9-10]。STAT1有一個特定的SUMO化識別位點 —— ΨKXE,Ψ代表大的疏水殘基,K為賴氨酸,X為任意氨基酸,E為谷氨酸[11],即STAT1可以發(fā)生SUMO化修飾,多數(shù)研究認(rèn)為STAT1的SUMO化修飾通過影響STAT1的磷酸化進(jìn)而影響其活性[12],但以往的研究主要關(guān)注STAT1的SUMO1、SUMO2和SUMO3修飾。本實驗檢測HK-2細(xì)胞中STAT1的SUMO4修飾,結(jié)果表明:高糖可上調(diào)HK-2細(xì)胞內(nèi)STAT1的SUMO4修飾。雙熒光素酶報告基因結(jié)果顯示,高糖可提升STAT1的轉(zhuǎn)錄活性,而抑制SUMO化修飾可進(jìn)一步上調(diào)STAT1活性。此外,與單純高糖組相比,細(xì)胞轉(zhuǎn)染SUMO4 siRNA后再給予高糖刺激,HK-2細(xì)胞中E-cadherin的蛋白量增加,α-SMA的蛋白量降低,提示抑制STAT1的SUMO4修飾可緩解高糖誘導(dǎo)的EMT。

    綜上所述,高糖誘導(dǎo)HK-2細(xì)胞發(fā)生EMT的同時,亦可提升STAT1的SUMO4修飾,盡管此時STAT1的活性上調(diào),但抑制SUMO化修飾使STAT1活性進(jìn)一步上調(diào)后,高糖誘導(dǎo)的EMT得到緩解。上述結(jié)果提示,高糖條件下STAT1活性增強(qiáng)可能是一種保護(hù)因素,因高糖會同時增加STAT1的SUMO化修飾,該修飾可抑制STAT1的活性,因此STAT1活性上調(diào)不足以對抗高糖誘導(dǎo)的EMT。當(dāng)然,高糖還能誘導(dǎo)其它致EMT的因素,比如TGF-β1的合成增多、STAT3的激活等[13-14],這些都是STAT1不能發(fā)揮有效保護(hù)作用的原因。本組結(jié)果不同于文獻(xiàn)報道的STAT1活化受抑可緩解EMT及TIF,可能的原因有以下幾個方面:本實驗應(yīng)用SUMO4 siRNA處理會影響HK-2細(xì)胞中所有能被SUMO4修飾的蛋白,并不能特異抑制STAT1的SUMO4修飾;EMT緩解的原因也可能是其它蛋白的SUMO4修飾受抑導(dǎo)致的;文獻(xiàn)報道的腎臟病變緩解時除觀察到STAT1的磷酸化水平下調(diào)外,也有其它因素的變化,究竟哪些因素介導(dǎo)了病變的緩解尚不明確。因此,我們還需進(jìn)一步特異性的靶向抑制STAT1的活性,以明確STAT1的激活在TIF中的作用。

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