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    PtsAGPase 在半夏試管塊莖發(fā)育過程中的表達(dá)模式分析

    2021-03-22 07:19:06朱艷芳薛建平
    關(guān)鍵詞:葉柄亞基塊莖

    朱艷芳,李 夏,薛 濤,盛 瑋,薛建平

    (淮北師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,安徽 淮北235000)

    半夏(Pinellia ternata)是常用的大宗中藥材,具降逆止嘔,燥濕化痰,消除痰濕等功效[1-2]。因而,市場每年的需求量很大,當(dāng)前的半夏產(chǎn)量無法滿足市場需求。半夏的塊莖是其藥用部位,在自然條件下,半夏繁殖率很低,加之野生環(huán)境的破壞和化學(xué)除草劑的使用,野生的半夏資源遭到毀滅性的破壞,導(dǎo)致了半夏塊莖產(chǎn)量嚴(yán)重不足。因此,如何提高半夏的產(chǎn)量成為一個重要的科學(xué)問題[3]。

    腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(ADP-glucose pyrophosphorylase,AGPase)在植物生長發(fā)育過程中起到影響淀粉合成的作用[4-9]。AGPase 在許多植物葉子及貯藏器官中都有存在,AGPase 催化1-磷酸葡萄糖(G-1-P)形成腺苷二磷酸葡萄糖,起到活化葡萄糖的作用使其可以用于淀粉合成[10-16]。AGPase 在淀粉代謝過程中與其他酶類組成了蛋白復(fù)合體,協(xié)同控制淀粉的合成和分解的過程。因而,AGPase 是淀粉生物合成過程中的關(guān)鍵酶,為淀粉合成提供所需的活化葡萄糖供體。

    在高等植物中AGPase 由大亞基和小亞基組成異型四聚體,每個亞基都由不同基因編碼,大亞基的作用是調(diào)節(jié)酶的活性,小亞基則是酶的催化中心[17]。在百合鱗莖的生長發(fā)育、膨大過程中,鱗莖中淀粉的含量與AGPase 的表達(dá)量呈正相關(guān)[18]。在玉米、馬鈴薯、小麥等作物中AGPase 均與儲藏器官的發(fā)育過程有一定聯(lián)系,起著促進(jìn)作用,其調(diào)控機(jī)理十分復(fù)雜[19-24]。在馬鈴薯中腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶小亞基基因(sAGPase)的表達(dá)與AGPase 的活性是直接相關(guān)的,故可用sAGPase 的表達(dá)反映AGPase 的活性。半夏塊莖發(fā)育過程中,干物質(zhì)不斷合成和積累,淀粉含量會逐步增加。半夏腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶小亞基基因(PtsAGPase)在半夏塊莖的發(fā)育過程中的表達(dá)模式如何,與塊莖的發(fā)育有何關(guān)系?到目前還不清楚。本研究重點(diǎn)探討了PtsAGPase 表達(dá)量與半夏塊莖發(fā)育的關(guān)系。通過研究PtsAGPase 在半夏試管塊莖發(fā)育過程中的表達(dá)模式,來分析該基因的表達(dá)量與塊莖發(fā)育的關(guān)系,為進(jìn)一步探究半夏塊莖發(fā)育的分子機(jī)理提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    半夏材料由淮北師范大學(xué)生物化學(xué)與分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)和提供的半夏無菌試管苗。

    1.2 主要試劑及儀器

    TotalRNAExtractor 試劑(生工生物工程上海股份有限公司),無水乙醇,氯仿,異丙醇,DEPC-treat ddH2O,5×All-In-one RT MasterMix(with AccuRT Genomic DNA Removal Kit)反轉(zhuǎn)錄試劑盒(ABM 生物科技有限公司),Genstar2×Taq PCR Master Mix with Loading Dye(深圳輝諾生物科技有限公司),瓊脂糖,DL 2000 DNA Marker,溴化乙錠(EB),ddH2O,SolarbioTAE 緩沖液(北京索萊寶科技有限公司),Vazyme2×AceQ qPCR SYBR Green Master Mix(南京諾唯贊生物科技有限公司)。

    NanoDrop 微量分光光度計、Eppendorf 5430/5430R 高速冷凍離心機(jī)、T100?Thermal Cycler PCR 儀、LightCycler96 實(shí)時熒光定量PCR 儀、ZHJH-C2112C 超凈工作臺、SHH.W21.420 型三用電熱恒溫水浴箱、Tanon-2500 凝膠成像儀、高壓蒸汽滅菌鍋。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1 培養(yǎng)與取樣

    于超凈工作臺中,剪取葉柄2 cm 倒置接種于塊莖誘導(dǎo)培養(yǎng)基,每瓶接種10 根,將材料在光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。于塊莖的不同發(fā)育時期(0、5、10、15、20、25 d)取樣,剪取葉柄形態(tài)學(xué)下端,稱量后放入離心管中液氮冷凍保存。為后續(xù)測定半夏塊莖不同發(fā)育時期PtsAGPase 的表達(dá)量提供材料。

    同時,分別剪取葉片、葉柄、塊莖,稱量保存,為后續(xù)測定半夏不同部位PtsAGPase 的表達(dá)量提供材料。

    1.3.2 總RNA 提取

    用Trizol 法提取各樣品的總RNA。將提取的RNA 測定濃度和純度,滿足要求的RNA 于-80 ℃保存。

    1.3.3 RNA 的反轉(zhuǎn)錄

    反轉(zhuǎn)錄所需的試劑與用量如表1。

    表1 反轉(zhuǎn)錄體系

    將半夏塊莖不同發(fā)育時期(0、5、10、15、20、25 d)和半夏不同部位(葉片、葉柄、塊莖)的總RNA分別進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄后置于-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.4 熒光定量PCR 引物特異性的檢測

    1)本試驗(yàn)使用的熒光定量PCR(polymerase chain reaction)引物是根據(jù)前期半夏轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)設(shè)計而來,由上海生工生物工程有限公司合成。PtsAGPase 的熒光定量PCR 上下游引物序列如下:

    PCR 反應(yīng)體系見表2。

    2)以半夏不同部位(葉片、葉柄、塊莖)的總RNA 反轉(zhuǎn)錄的cDNA 為模板,用sAGP-qPCR-F和sAGP-qPCR-R 作為引物進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,以檢測引物的特異性。

    表2 PCR 反應(yīng)體系

    1.3.5 熒光定量PCR 檢測塊莖不同發(fā)育時期PtsAGPase 的表達(dá)量

    將0、5、10、15、20、25d 不同時期反轉(zhuǎn)錄得到的cDNA 用無菌水稀釋20 倍后用作熒光定量PCR 的模板。根據(jù)熒光定量試劑盒說明書,按表3 中的體系向熒光定量PCR 96 孔板中加入所需的量,使反應(yīng)總體積為每孔10 μL。為了防止材料失活,加樣的步驟需要在冰上進(jìn)行。以18S 基因?yàn)閮?nèi)參,通過熒光定量PCR,檢測半夏試管塊莖不同發(fā)育時期PtsAGPase 的相對表達(dá)量。

    表3 熒光定量PCR 反應(yīng)體系

    1.3.6 熒光定量PCR 檢測半夏不同部位PtsAGPase 的表達(dá)量

    同樣以18S 基因作為內(nèi)參基因,檢測半夏塊莖不同部位(葉片、葉柄、塊莖)PtsAGPase 的表達(dá)情況。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 總RNA 的質(zhì)量

    按照總RNA 提取步驟得到的RNA 通過檢測后A260/A280d 值在1.8~2.0 之間、A260/A230 值在1.8~1.9 之間,表明各樣品提取的總RNA 無降解、無污染、完整性好、質(zhì)量高,可用于后續(xù)試驗(yàn)。

    2.2 熒光定量PCR 引物特異性的檢測

    將PCR 擴(kuò)增后產(chǎn)物用1%的瓊脂糖凝膠電泳,每個部位的產(chǎn)物均得到明亮的單一條帶,說明引物特異性高,可以進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。

    2.3 半夏塊莖不同發(fā)育時期的形態(tài)

    由圖1 中不同時期的形態(tài)可知,半夏葉柄倒置于塊莖誘導(dǎo)培養(yǎng)基,5 d 左右進(jìn)入形態(tài)建成期,其形態(tài)學(xué)下端略微發(fā)白,開始有稍許膨大。到10d時其形態(tài)學(xué)下端繼續(xù)膨大,但變化較小,并不明顯。在15 d 左右進(jìn)入快速膨大期,出現(xiàn)明顯膨大,已經(jīng)可以看出小珠芽的形狀。之后20 d 和25 d的小珠芽繼續(xù)膨大,最終形成大小均一、發(fā)育一致的小塊莖。

    圖1 半夏塊莖不同發(fā)育時期的形態(tài)

    2.4 熒光定量PCR 的測定結(jié)果及分析

    2.4.1 PtsAGPase 在半夏塊莖不同發(fā)育時期的表達(dá)模式分析

    圖2 為半夏塊莖不同發(fā)育時期,PtsAGPase的表達(dá)量的變化。由圖中看出,PtsAGPase 在5 d(形態(tài)建成期)和15 d(快速膨大期)表達(dá)量為兩個峰值,均極顯著高于對照組,分別為對照組的11倍和35 倍。在10、20 和25 d 表達(dá)量降低,但仍高于對照組表達(dá)量。說明在半夏試管塊莖誘導(dǎo)的不同時期,PtsAGPase 的表達(dá)量均升高,在形態(tài)建成期和快速膨大期尤為顯著。

    圖2 半夏塊莖不同發(fā)育時期PtsAGPase 相對表達(dá)量

    2.4.2 PtsAGPase 在半夏不同部位表達(dá)模式分析

    由圖3 可以看出,PtsAGPase 在半夏塊莖中表達(dá)量最高,是葉柄的69 倍左右;其次為葉片,表達(dá)量是葉柄的26 倍左右,葉柄中表達(dá)量最低;且PtsAGPase 在塊莖和葉片中的表達(dá)量極顯著高于葉柄中的表達(dá)量。說明PtsAGPase 在半夏不同部位的表達(dá)量也有差異,在塊莖中表達(dá)量最高,葉片次之,葉柄中表達(dá)量最低。

    圖3 半夏不同部位PtsAGPase 相對表達(dá)量

    3 討論

    熒光定量PCR 是對PCR 反應(yīng)中每個循環(huán)產(chǎn)物熒光信號的實(shí)時檢測,從而實(shí)現(xiàn)對模板的定量及定性分析[25-28]。

    在馬鈴薯的相關(guān)研究中,已知腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶小亞基基因(sAGPase)的表達(dá)與AGPase 的活性是正相關(guān)的,當(dāng)sAGPase 的表達(dá)量增大時,AGPase 的活性升高,且馬鈴薯塊莖中的淀粉含量會隨之增大;反之則減少。所以,sAGPase 表達(dá)量可以反映AGPase 的活性,從而影響馬鈴薯中淀粉與還原糖的轉(zhuǎn)化。在馬鈴薯中sAGPase 的表達(dá)量與馬鈴薯塊莖中淀粉合成呈正相關(guān)[29]。在玉米相關(guān)的研究中,也發(fā)現(xiàn)即使品種不同,但在玉米胚乳生長發(fā)育過程中sAGPase 的表達(dá)量均顯著性增高。同樣,在小麥籽粒灌漿期時sAGPase 的表達(dá)量有明顯的升高,籽粒中AGPase 的活性明顯增大,并且與籽粒中淀粉的合成速率呈正相關(guān)[30]。由此看來,sAGPase 與植物貯藏器官的生長發(fā)育有著密切的聯(lián)系,能夠促進(jìn)植物淀粉合成,同時促進(jìn)貯藏器官生長發(fā)育。

    對熒光定量數(shù)據(jù)進(jìn)行分析并結(jié)合半夏塊莖不同發(fā)育時期的形態(tài)特征,結(jié)果顯示PtsAGPase 在半夏塊莖發(fā)育過程中表達(dá)量有明顯升高,且在半夏塊莖形態(tài)建成期、快速膨大期表達(dá)量極顯著升高,與半夏塊莖生長發(fā)育形態(tài)變化相對應(yīng)。說明PtsAGPase 表達(dá)量與半夏塊莖發(fā)育有明顯關(guān)系。

    在半夏塊莖發(fā)育過程中,其干物質(zhì)會不斷累積增加,淀粉也在不斷合成和積累,結(jié)合半夏不同時期、不同部位PtsAGPase 的表達(dá)量分析,PtsAGPase 與半夏塊莖的發(fā)育有明顯聯(lián)系,推測PtsAGPase 的表達(dá)量增大會使PtAGPase 的活性增大,促進(jìn)半夏塊莖中葡萄糖向淀粉轉(zhuǎn)化,從而促進(jìn)淀粉的合成,對半夏塊莖發(fā)育起促進(jìn)作用。但是在半夏塊莖發(fā)育過程中,PtsAGPase 的表達(dá)調(diào)控機(jī)制還不清楚,需進(jìn)行深入研究。

    4 小結(jié)

    由半夏塊莖不同發(fā)育時期的形態(tài)和PtsAGPase 表達(dá)模式分析的數(shù)據(jù)可知,PtsAGPase 的表達(dá)與半夏塊莖發(fā)育時期相互關(guān)聯(lián),在半夏塊莖的形態(tài)建成期和快速膨大期PtsAGPase 的表達(dá)量極顯著升高。PtsAGPase 的表達(dá)促進(jìn)淀粉的合成和積累,促進(jìn)了半夏塊莖的發(fā)育,但并未明確其調(diào)控機(jī)理。本研究為后續(xù)半夏塊莖發(fā)育過程調(diào)控機(jī)理的研究提供參考。

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