劉旸,張麗宏,房玉國(guó),王勝男,王淼,黃艷玲
(1.黑龍江省綠色食品科學(xué)研究院哈爾濱150028;2.黑龍江省標(biāo)準(zhǔn)化研究院哈爾濱150028)
在畜牧養(yǎng)殖環(huán)節(jié),有些不法商販為獲得更多利益,不但對(duì)患病的奶牛濫用抗生素,而且對(duì)處于治療過(guò)程中的奶牛進(jìn)行榨奶[1-2],這就造成生鮮乳中殘留有抗生素。為達(dá)到分解殘留的抗生素目的就會(huì)采用生鮮乳中添加β-內(nèi)酰胺酶[3-5]。β-內(nèi)酰胺酶作用于抗生素產(chǎn)生的噻唑酸物質(zhì)會(huì)導(dǎo)致人體發(fā)生過(guò)敏反應(yīng)[6-8]。雖然現(xiàn)在人們開(kāi)始重視β-內(nèi)酰胺酶的添加對(duì)生鮮乳的品質(zhì)有不良的影響,但是近幾年關(guān)于β-內(nèi)酰胺酶檢驗(yàn)的研究并不是很多。早在2009年我國(guó)就將β-內(nèi)酰胺酶列為違禁添加物,不得檢出[9]。關(guān)于β-內(nèi)酰胺酶檢測(cè)方法有很多種,但主要還是采用微生物檢測(cè)方法。其中的杯碟法因其結(jié)果準(zhǔn)確、特異性強(qiáng)、重現(xiàn)性好被列為β-內(nèi)酰胺酶檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)方法[10]。
2009年衛(wèi)生部發(fā)布的《乳及乳制品中舒巴坦敏感β-內(nèi)酰胺酶類(lèi)藥物檢驗(yàn)方法:杯碟法》和2018年實(shí)施的NY/T 3313-2018《農(nóng)業(yè)行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)生乳中β-內(nèi)酰胺酶的測(cè)定(第一法杯碟法)》,都是采用杯碟法測(cè)定生鮮乳中的β-內(nèi)酰胺酶含量。雖然兩個(gè)方法標(biāo)準(zhǔn)中添加藤黃微球菌的方式略有不同,但是卻是國(guó)內(nèi)一直公認(rèn)的微生物檢驗(yàn)方法。2009年衛(wèi)生部發(fā)布的方法,在當(dāng)時(shí)是唯一能夠確證試劑盒檢驗(yàn)β-內(nèi)酰胺酶的方法,以避免試劑盒檢驗(yàn)出現(xiàn)假陽(yáng)性的判定。2018年發(fā)布的NY/T 3313-2018雖然在標(biāo)準(zhǔn)加入“第二法膠體金快速試紙條法”檢測(cè)方法,但是在該方法中明確規(guī)定了要用“第一法杯碟法”確證后,才能上報(bào)“β-內(nèi)酰胺酶檢出”。杯碟法在所有檢測(cè)β-內(nèi)酰胺酶的方法是成本最低的,但是也是操作起來(lái)最繁瑣的。2018年實(shí)施的NY/T 3313-2018《農(nóng)業(yè)行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)生乳中β-內(nèi)酰胺酶的測(cè)定(第一法杯碟法)》中就是簡(jiǎn)化了藤黃微球菌的添加方式。但是兩種方法判定生鮮乳中是否添加了β-內(nèi)酰胺酶的判定方式是相同的,都是觀察A、B兩個(gè)抑菌圈的差值來(lái)判定。所以能靈敏的檢測(cè)出越低濃度的β-內(nèi)酰胺酶和清晰的觀察到抑菌圈以便于能夠準(zhǔn)確的測(cè)出A、B兩個(gè)抑菌圈的差值是很有研究意義的。國(guó)外關(guān)于這方面的研究幾乎沒(méi)有,而且在國(guó)外一直也沒(méi)有相關(guān)的標(biāo)準(zhǔn)方法。
氯化鈉(AR,Lot 20150615),天津市科密歐化學(xué)時(shí)間有限公司;無(wú)水磷酸二氫鉀(Sigm a-VETEC),西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;無(wú)水磷酸氫二鉀,西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;營(yíng)養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基,北京陸橋技術(shù)股份有限公司;抗生素檢定培養(yǎng)基Ⅱ,廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;β-內(nèi)酰胺酶標(biāo)準(zhǔn)品(Sigm a),西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;舒巴坦標(biāo)準(zhǔn)品(D r Ehrenstorfer Gm bH)、青霉素G標(biāo)準(zhǔn)品(Sigm a-Fluka),西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司。
生化培養(yǎng)箱,MEMMER T;紫外可見(jiàn)光分光光度計(jì),上海光譜儀器;電子分析天平,北京賽多利斯;游標(biāo)卡尺,杭宇。
1.3.1 菌懸液的制備
將實(shí)驗(yàn)用菌株藤黃微球菌(Micrococcus luteus,CMCC(B)28001)(中國(guó)工業(yè)微生物菌種保藏管理中心(C ICC)),接種于營(yíng)養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基斜面上,37±1℃,培養(yǎng)18~24 h,連續(xù)傳三代備用。將活化好的藤黃微球菌,用無(wú)菌8.5%生理鹽水從斜面上洗下來(lái),制成實(shí)驗(yàn)用菌懸液[11]。用紫外分光光度計(jì)在450 nm的波長(zhǎng)下測(cè)其200倍稀釋液,吸光度值約為0.89,即終濃度為1×1010CFU/m L[10,12]。
1.3.2 模擬樣品的制備
由于對(duì)于β-內(nèi)酰胺酶穩(wěn)定性的研究很少[11,14],通常采用現(xiàn)用現(xiàn)配的方式制備β-內(nèi)酰胺酶模擬樣品。將0.01 U/m L的β-內(nèi)酰胺酶標(biāo)準(zhǔn)溶液用無(wú)菌無(wú)抗無(wú)β-內(nèi)酰胺酶的純牛奶[15-17]進(jìn)行定容稀釋?zhuān)謩e配制成含有 0.001、0.0005、0.00025、0.0002、0.0001、0.00005 U/m Lβ-內(nèi)酰胺酶模擬樣品[18-20]??瞻讟悠窞闊o(wú)菌無(wú)抗無(wú)β-內(nèi)酰胺酶的純牛奶(250 m L,保質(zhì)期室溫6個(gè)月),水系為去離子純水。
1.3.3 測(cè)定用培養(yǎng)基平皿的制備
方法一:取菌懸液(1.4)1 m L加入到滅好菌的100 m L、溫度在46~50℃之間的抗生素檢定培養(yǎng)基Ⅱ中,充分混勻,菌懸液最后終濃度為1×108CFU/m L;每個(gè)無(wú)菌培養(yǎng)皿中分裝15 m L培養(yǎng)基,靜置;待凝固后,將培養(yǎng)皿平分成四區(qū),每區(qū)中央放置滅好菌的牛津杯,待穩(wěn)定后加樣。
方法二:每個(gè)無(wú)菌培養(yǎng)皿中底層先加入10 m L滅好菌的抗生素檢定培養(yǎng)基Ⅱ,作為培養(yǎng)基基礎(chǔ)。待冷卻凝固后,上層再加入加入5 m L含有濃度為1×108CFU/m L的菌懸液的抗生素檢定培養(yǎng)基Ⅱ(配制方法參考方法一),靜置;待凝固后,將培養(yǎng)皿平分成四區(qū),每區(qū)中央放置滅好菌的牛津杯,待穩(wěn)定后加樣[21]。
1.3.4 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制
稱取8.0 g無(wú)水磷酸二氫鉀、2.0 g無(wú)水磷酸氫二鉀,溶解于水中,用鹽酸(0.1 m ol/L)調(diào)節(jié)pH至6.0,定容至1 L,于121℃高壓滅菌15 min,為磷酸鹽緩沖液。用配制好的磷酸鹽緩沖液將β-內(nèi)酰胺酶標(biāo)準(zhǔn)品、舒巴坦標(biāo)準(zhǔn)品、青霉素G標(biāo)準(zhǔn)品分別配制成0.1 U/m L、1 m g/m L、0.1 m g/m L標(biāo)準(zhǔn)溶液。
根據(jù)《NY/T 3313-2018生乳中β-內(nèi)酰胺酶的測(cè)定(第一法杯碟法)》中“試樣測(cè)定”的規(guī)定,在1 m L水系、空白、添加β-內(nèi)酰胺酶模擬樣品中加入β-內(nèi)酰胺酶標(biāo)準(zhǔn)溶液、舒巴坦標(biāo)準(zhǔn)溶液、青霉素G標(biāo)準(zhǔn)溶液體系,添加方式如表1。
表1 標(biāo)準(zhǔn)溶液體系的添加
將培養(yǎng)皿于37℃,培養(yǎng)22 h后,按照標(biāo)準(zhǔn)中“試驗(yàn)數(shù)據(jù)處理”進(jìn)行判定。在實(shí)驗(yàn)結(jié)果判定之前,應(yīng)先確定水系及空白試驗(yàn)結(jié)果成立。然后再根據(jù)模擬樣品中β-內(nèi)酰胺酶濃度的不同,在測(cè)量抑菌圈進(jìn)行判定[22-23]。
當(dāng)水系、空白試驗(yàn)結(jié)果滿足如下條件時(shí),樣品結(jié)果應(yīng)按以下規(guī)則進(jìn)行判定:
(1)若B和D均產(chǎn)生抑菌圈,且C的抑菌圈小于D的抑菌圈,差異≥3mm時(shí):A的抑菌圈小于B的抑菌圈,滿足抑菌圈差異≥3mm時(shí),該結(jié)果判定為檢出β-內(nèi)酰胺酶;2次平行測(cè)定同時(shí)滿足A的抑菌圈與B的抑菌圈差異<3mm時(shí),該結(jié)果判定為未檢出β-內(nèi)酰胺酶。
(2)若A和B均不產(chǎn)生抑菌圈,應(yīng)將樣品稀釋后再重新進(jìn)行測(cè)定。
由表2、表3可知,方法一與方法二的水系都成立,空白樣品也都為β-內(nèi)酰胺酶未檢出,可見(jiàn)整個(gè)實(shí)驗(yàn)測(cè)定體系成立。陽(yáng)性對(duì)照分別選用了添加β-內(nèi)酰胺酶時(shí),最接近“A的抑菌圈小于B的抑菌圈,滿足抑菌圈差異≥3mm”這個(gè)條件的濃度,即方法一β-內(nèi)酰胺酶陽(yáng)性添加濃度為0.00025 U/m L,方法二β-內(nèi)酰胺酶陽(yáng)性添加濃度為0.0001 U/m L。但是可以看出方法一的抑菌圈邊緣比較模糊,在用游標(biāo)卡尺進(jìn)行測(cè)量時(shí),不好測(cè)定。方法二的抑菌圈的邊緣就很清晰,測(cè)量方便,便于肉眼觀察。在相同培養(yǎng)溫度、培養(yǎng)時(shí)間的條件下,方法一的藤黃微球菌在培養(yǎng)基中生長(zhǎng)的情況比方法二也較稀疏。
表2 方法一水系與空白實(shí)驗(yàn)的判定
表3 方法二水系與空白實(shí)驗(yàn)的判定
在水系成立、空白樣品成立的前提下,同時(shí)進(jìn)行方法一和方法二的檢出限的比對(duì),如表4所示。
表4 方法一與方法二的檢出限的比對(duì)
方法一的β-內(nèi)酰胺酶檢出限在0.0002~0.00025 U/m L之間,方法二的β-內(nèi)酰胺酶檢出限在0.00005~0.0001 U/m L之間,由此可見(jiàn)方法二的靈敏度明顯高于方法一的靈敏度。但是方法一的藤黃微球菌添加方式相比于方法二操作簡(jiǎn)單。
通過(guò)比對(duì)研究,兩種藤黃微球菌的添加方式,對(duì)β-內(nèi)酰胺酶的檢出限和實(shí)際觀察測(cè)量抑菌圈有影響。通過(guò)分析,方法一中藤黃微球菌在15 m L培養(yǎng)基里,處于培養(yǎng)基內(nèi)部,呈分散的狀態(tài),要克服瓊脂的張力的作用;同時(shí)藤黃微球菌是好氧菌,其耗氧量也受到影響,造成藤黃微球菌在相同的培養(yǎng)條件下生長(zhǎng)的不夠充分,在培養(yǎng)基中含量較少,是造成抑菌圈的邊緣模糊的主要原因。方法二中菌懸液5 m L的培養(yǎng)基覆蓋在10 m L的培養(yǎng)基基礎(chǔ)上,相比于方法一培養(yǎng)基的營(yíng)養(yǎng)含量減少了2/3,但下層的10 m L的培養(yǎng)基也會(huì)為上層菌懸液提供營(yíng)養(yǎng),菌懸液只要克服5 m L培養(yǎng)基的張力,而且處于培養(yǎng)基上層,幾乎不影響藤黃微球菌微球菌耗氧量。所以在相同實(shí)驗(yàn)條件下,方法二的藤黃微球菌在培養(yǎng)基中能夠充分生長(zhǎng),菌含量濃度較大,抑菌圈更加清晰。在相同的培養(yǎng)條件下對(duì)β-內(nèi)酰胺酶的靈敏度更高,反應(yīng)時(shí)間更短,檢出限更準(zhǔn)確。
β-內(nèi)酰胺酶是明令禁止添加到生鮮乳中的違禁添加物,雖然杯碟法中藤黃微球菌這兩種添加方式對(duì)β-內(nèi)酰胺酶檢出限的區(qū)別很小,但是對(duì)生鮮乳中β-內(nèi)酰胺酶檢測(cè)有深遠(yuǎn)意義。
因?yàn)榘凑辙r(nóng)業(yè)農(nóng)村部要求,β-內(nèi)酰胺酶檢驗(yàn)檢測(cè)時(shí)間為18~22 h。如果在相同時(shí)間內(nèi)藤黃微球菌生長(zhǎng)的越充分,抑菌圈越清晰,對(duì)β-內(nèi)酰胺酶的靈敏度越高,對(duì)β-內(nèi)酰胺酶的檢出更加準(zhǔn)確。此外,對(duì)于各檢驗(yàn)機(jī)構(gòu)在參加β-內(nèi)酰胺酶能力驗(yàn)證或該項(xiàng)目考核時(shí),對(duì)于樣品制備和郵寄過(guò)程中產(chǎn)生的β-內(nèi)酰胺酶樣品衰減的問(wèn)題,對(duì)檢測(cè)結(jié)果的正確性也具有一定影響[24]。同理,對(duì)于乳品企業(yè)采用快速試紙條初篩出β-內(nèi)酰胺酶陽(yáng)性的樣品,要第一時(shí)間采用杯碟法進(jìn)行確認(rèn),以免快速試紙條的假陽(yáng)性造成的錯(cuò)判。含有β-內(nèi)酰胺酶的生鮮乳樣品由于溫度的變化,存放的時(shí)間長(zhǎng)短,以及冷凍樣品反復(fù)凍融的影響,都會(huì)增加β-內(nèi)酰胺酶衰減的風(fēng)險(xiǎn)。所以,提高β-內(nèi)酰胺酶的檢出靈敏度,對(duì)乳制品安全也具有重要意義。