王衛(wèi)強, 吳尚書, 崔 靜, 鮑天宇, 張海娟, 張政一
(1.遼寧石油化工大學(xué) 石油天然氣工程學(xué)院,遼寧 撫順 113001;2.中國石油 內(nèi)蒙古鄂爾多斯銷售分公司,內(nèi)蒙古 鄂爾多斯 017000;3.遼寧石油化工大學(xué) 石油化工學(xué)院,遼寧 撫順 113001;4.中國石油 大慶石化公司,黑龍江 大慶 163000)
在原油開采及輸送過程中,當(dāng)溫度和壓力降低時,石蠟在原油中的溶解度降低,出現(xiàn)蠟沉積現(xiàn)象[1-3]。蠟沉積會給原油開采及運輸帶來困難,導(dǎo)致生產(chǎn)效率降低、造成安全隱患[4]。此外,易凝原油中的長碳鏈烷烴在輸送過程中容易聚積,使原油黏度增加,流動性降低。因此,降解原油中的石蠟、降低原油的黏度、提高原油的流動性十分必要。
微生物清防蠟技術(shù)因具有成本低、效果好、無污染及作用周期長等特點被廣泛關(guān)注[5]。不同微生物對原油的作用效果不同;研究人員通過大量實驗篩選出能夠提高原油流動性能的微生物菌種。Amin等[6]從伊朗油田中篩選出一株地衣芽孢桿菌,其對原油降黏率為41.24%。王小通等[7]選用銅綠假單胞菌,配合嗜熱脂肪地芽孢桿菌和嗜熱脫氮地芽孢桿菌,將高凝油中長鏈飽和烴降解為短鏈烴,高凝油的黏度和瀝青質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別降低63.86%和31.35%。Puntus等[8]選用7種紅球菌對原油進(jìn)行處理,其中活性最佳的菌種對原油的降解率為55%~59%。
綜上所述,不同微生物菌種提高原油流動性能的能力不同,篩選高效菌種是微生物清防蠟技術(shù)的關(guān)鍵。近年來,采用單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù)在單細(xì)胞水平上篩選鑒別菌株活性的報道相繼出現(xiàn)。2015年,Berry等[9]采用單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù),實現(xiàn)在單細(xì)胞水平上對活性微生物進(jìn)行識別和分類;2018年,Zhang等[10]采用單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù)成功觀測到大腸桿菌進(jìn)入活而不可培養(yǎng)態(tài)(VBNC)后代謝活性的變化;2019年,Li等[11]采用單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù),快速準(zhǔn)確地篩選土壤中磷化物轉(zhuǎn)化性能最佳的解磷菌。在以石蠟為唯一碳源的條件下,活性越高的菌種,嗜蠟?zāi)芰υ綇?。因此,可采用單?xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù)篩選原油的優(yōu)勢嗜蠟菌。
筆者從遼河油田原油污染土壤中采集到5種嗜蠟菌,采用單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù)篩選出其中的優(yōu)勢嗜蠟菌種,確定其所屬菌屬;并優(yōu)化其生長條件,進(jìn)行排油圈及乳化性能測試,分析菌種代謝產(chǎn)物,測定其對原油的除蠟、降黏效果。
采集嗜蠟菌種的原油污染土壤和原油樣品均取自遼河油田。從污染土壤中采集到5種嗜蠟菌,分別命名為CJ11、CJ12、LB7、LB8和SS1。原油 20 ℃ 密度為862 kg/m3,蠟質(zhì)量分?jǐn)?shù)為9.65%,36 ℃下表觀黏度為87.526 mPa·s。
試劑:酵母膏、胰蛋白胨、氯化鈉、氯化銨、硫酸鎂(MgSO4·7H2O)、磷酸一氫鉀(K2HPO4)、磷酸二氫鉀(KH2PO4)、硝酸鈉(NaNO3)、營養(yǎng)瓊脂、三氯甲烷、甲醇、液體石蠟,均為分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品;裂解液,生物試劑,日本TaKaRa公司產(chǎn)品。
3種培養(yǎng)基:(1)富集培養(yǎng)基:純水1000 mL、酵母膏5 g、氯化鈉5 g、氯化銨1 g、MgSO4·7H2O 0.25 g、KH2PO45 g,NaNO32 g。(2)液體石蠟培養(yǎng)基:純水1000 mL、K2HPO41.25 g、KH2PO41.25 g、MgSO4·7H2O 0.25 g、氯化鈉5 g、氯化銨1 g、NaNO32 g、液體石蠟10 mL。(3)Luria-Bertani(LB)固體培養(yǎng)基:純水1000 mL、酵母膏5 g、胰蛋白胨10 g、氯化鈉5 g、營養(yǎng)瓊脂10 g。
1.2.1 菌種采集
將5 g原油污染土壤加入到100 mL滅菌的富集培養(yǎng)基中,在37 ℃下培養(yǎng)24 h,取1 mL上清液轉(zhuǎn)接到30 mL新鮮富集培養(yǎng)基中培養(yǎng)24 h,重復(fù)轉(zhuǎn)接3次。然后,取1 mL上清液均勻涂布于LB固體培養(yǎng)基中[12],在37 ℃下恒溫培養(yǎng)。待長出菌落后,使用接種環(huán)挑出形態(tài)大小不一的菌落,分別加入 30 mL 液體石蠟培養(yǎng)基中,培養(yǎng)12 h后進(jìn)行平板劃線實驗,分離純化5種嗜蠟菌。
1.2.2 優(yōu)勢菌種篩選
采用單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù)確定優(yōu)勢菌種[11]。取適量菌體,懸浮于體積分?jǐn)?shù)30%的重水中,獲得菌懸液。重水與細(xì)胞充分結(jié)合,來自D2O的D同位素的引入導(dǎo)致部分菌種細(xì)胞中C—H鍵轉(zhuǎn)變?yōu)镃—D鍵。D同化速率越快,C—D峰越強,菌種活性越高。采用拉曼光譜儀(LabRAM Aramis,Horiba Jobin Yvon S.A.S. 公司產(chǎn)品)檢測菌體細(xì)胞中C—D鍵波峰強度來確定優(yōu)勢嗜蠟菌。
培養(yǎng)溫度優(yōu)化:在液體石蠟培養(yǎng)基pH值為7、鹽(NaCl)質(zhì)量濃度為5 g/L時,分別考察培養(yǎng)溫度為30、33、36、39、42 ℃時對菌株生長的影響。
培養(yǎng)基pH值優(yōu)化:在溫度36 ℃、鹽質(zhì)量濃度5 g/L時,考察培養(yǎng)基pH值分別為4、5、6、7、8、9時對菌株生長的影響。
鹽質(zhì)量濃度優(yōu)化:在溫度為36 ℃、pH值為7時,分別考察培養(yǎng)基鹽質(zhì)量濃度分別為0、2.5、5、7.5、10 g/L時對菌株生長的影響。
采用酶標(biāo)儀(Spectra Max ABS,美谷分子公司產(chǎn)品)測定菌培養(yǎng)物在波長600 nm下的光密度值(OD600 nm),可得到菌種在不同溫度、pH值、鹽質(zhì)量濃度下的生長曲線,確定出菌種的最佳生長溫度、pH值和鹽質(zhì)量濃度。
1.4.1 排油圈實驗
將1 mL油紅染色的液體石蠟滴加到30 mL滅菌純水上,形成油膜;取70 μL在富集培養(yǎng)基中培養(yǎng)48 h后的菌種上清液,滴加至油膜中心,觀察油膜變化。若菌種代謝產(chǎn)生表面活性劑,則油膜會被排開,形成排油圈。用相機拍攝,通過Nano Measure軟件進(jìn)行直徑測量。
1.4.2 乳化實驗
取2 mL培養(yǎng)48 h的菌培養(yǎng)物和2 mL富集培養(yǎng)基,分別在5 mL離心管中與2 mL液體石蠟混合均勻,在36 ℃恒溫靜置24 h,測量乳化層高度(h)和混合液高度(H),并計算乳化系數(shù)(E24,%)[13],算式如式(1)。
(1)
1.4.3 表面活性劑的提取與鑒定
取培養(yǎng)48 h后的培養(yǎng)基上清液,調(diào)節(jié)pH值=2,靜置、離心、收集沉淀;將沉淀物溶于三氯甲烷和甲醇的混合萃取劑(V(CHCl3)∶V(CH3OH)=2∶1)中, 40 ℃下蒸干有機相得到生物表面活性劑[14]。采用傅里葉紅外光譜儀(iS10,Thermo公司產(chǎn)品)對表面活性劑進(jìn)行分析。
將優(yōu)勢嗜蠟菌在LB固體培養(yǎng)基中培養(yǎng),提取DNA,使用基因擴增分析儀器(PCR儀)(Mastercycler nexus gradient,Eppendorf公司產(chǎn)品)進(jìn)行擴增。擴增產(chǎn)物由上海生工生物股份有限公司進(jìn)行16S rRNA測序,以確定該菌種菌屬。
采用掃描電子顯微鏡(SEM)(S-4800,日本日立公司產(chǎn)品)觀察菌種形態(tài)。采用差示掃描量熱儀(Q2000 DSC,美國TA公司產(chǎn)品)測定嗜蠟菌處理120 h前后原油的含蠟量、析蠟點、析蠟高峰點。采用流變儀(HAKKE流變儀,上海珩璟科技有限公司產(chǎn)品)測量嗜蠟菌處理120 h前后原油黏度的變化。
不同菌種的單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記拉曼光譜圖如圖1所示。在菌懸液中,菌種與重水D元素同化量越大,即C—D峰越強,表明菌種活性越高。在菌懸液的Raman-D2O拉曼譜圖中,2040~2300 cm-1對應(yīng)C—D鍵的振動吸收峰。由圖1可知,5種嗜蠟菌中,菌種SS1在2040~2300 cm-1內(nèi)C—D峰的強度最大,即菌種SS1在以石蠟為唯一碳源的環(huán)境中代謝能力最強,為優(yōu)勢菌種。另外,采用單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù)篩選優(yōu)勢嗜蠟菌所需時間為12~24 h,遠(yuǎn)遠(yuǎn)少于傳統(tǒng)方法所需的120~240 h。
圖1 不同嗜蠟菌種的單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記拉曼譜圖Fig.1 Spectra of single-cell Raman-D2O isotope labelingwith different paraffin-degrading bacteria
采用掃描電子顯微鏡觀察優(yōu)勢菌種的形態(tài),如圖2所示。由圖2可知,菌種SS1呈長桿狀,無鞭毛,菌株大小為(0.4~0.7) μm×(3~4) μm。將菌種16S rRNA測序結(jié)果在NCBI數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行Blast比對,結(jié)果表明菌種SS1屬于銅綠假單胞菌屬,與Pseudomonasaeruginosa同源度達(dá)到100%,序列號為MH378333.1。
圖2 菌種SS1的掃描電鏡照片F(xiàn)ig.2 SEM image of strain SS1
2.2.1 SS1最佳生長溫度
圖3為菌種SS1在不同溫度下的生長曲線。由圖3可知,在30 ℃下,由于溫度過低,菌種蛋白活性低、代謝減緩、生長量較少[15];隨著溫度的升高,菌種的代謝活性逐漸提高;在36 ℃下,菌種生長最為旺盛;當(dāng)溫度繼續(xù)升高時,菌種的生長量反而降低。這是因為溫度過高時,細(xì)胞的蛋白結(jié)構(gòu)被破壞,菌種生長受到抑制甚至失活[16-17]。菌種SS1在42 ℃下生長活性明顯較弱,說明該菌種對高溫耐受性差。因此,菌種SS1最佳生長溫度為36 ℃。
圖3 不同溫度下SS1菌種生長情況Fig.3 Growth of strain SS1 at different temperaturespH=7; ρNaCl=5 g/L
2.2.2 SS1最佳培養(yǎng)pH值
培養(yǎng)基pH值通過影響細(xì)胞質(zhì)膜的通透性及穩(wěn)定性來影響菌種對營養(yǎng)物質(zhì)的吸收,從而影響菌種的生長速率。大多數(shù)菌種可生存的pH值范圍一般在4~9,根據(jù)菌種生長的最佳pH值不同,可將菌種分為嗜酸、耐酸、中性和耐堿、嗜堿菌[18]。菌種SS1在不同pH值下生長曲線如圖4所示。由圖4可知,在不同pH值下SS1菌種生長狀態(tài)有明顯差異。pH=7時,SS1菌種生長最為旺盛,說明SS1菌種為中性嗜蠟菌;當(dāng)pH值為4、5時,由于H+濃度過高,細(xì)胞質(zhì)膜穩(wěn)定性低,菌種吸收營養(yǎng)物質(zhì)的能力較弱,菌種生長緩慢;當(dāng)pH值為8、9時,菌種蛋白酶活性較低,菌種代謝緩慢,生長速率降低。因此,菌種SS1最佳生長pH值為7,說明該菌適合生長于中性環(huán)境下,對偏酸性和偏堿性的環(huán)境適應(yīng)能力較差。
2.2.3 SS1最佳生長鹽質(zhì)量濃度
微生物對鹽濃度的適應(yīng)范圍不同,鹽濃度是影響微生物生長的重要影響因素[19-20],鹽濃度主要通過改變細(xì)胞的滲透壓來影響菌種的生長[21]。不同鹽質(zhì)量濃度下,菌種SS1在生長情況如圖5所示,培養(yǎng)基的鹽質(zhì)量濃度主要由其NaCl含量決定。由圖5可知,NaCl質(zhì)量濃度為0和2.5 g/L時,由于滲透壓過低,大量水分子會滲入菌種細(xì)胞內(nèi),導(dǎo)致細(xì)胞破裂,菌種生長活性較低。當(dāng)NaCl質(zhì)量濃度為 5 g/L 時,菌種生長活性最佳。隨著NaCl質(zhì)量濃度繼續(xù)提高,菌種生長環(huán)境滲透壓過大,導(dǎo)致細(xì)胞失水死亡。因此,菌種SS1最佳生長鹽質(zhì)量濃度為5 g/L。
圖5 不同NaCl質(zhì)量濃度下SS1菌種生長情況Fig.5 Growth of SS1 under different NaClmass concentrationsT=36 ℃; pH=7
2.3.1 排油圈測試
菌培養(yǎng)物上清液滴加在油膜中心后,油膜向四周排開,形成穩(wěn)定的排油圈,如圖6所示。排油圈直徑與菌種代謝生成生物表面活性劑的性能成正比,排油圈直徑較大說明菌種產(chǎn)生的生物表面活性劑性能較好[22]。經(jīng)測量,菌種SS1培養(yǎng)物上清液的排油圈直徑(d)較大,為5.04 cm。這表明菌種SS1代謝產(chǎn)生的生物表面活性劑性能好,有助于提高蠟在原油中的溶解度,減少蠟組分的析出。
圖6 菌種SS1培養(yǎng)物上清液的排油圈照片F(xiàn)ig.6 Oil-displacement photo of strain SS1 medium supernatantd—The diameter of oil-displacement
2.3.2 乳化性能分析
菌種SS1培養(yǎng)物與液體石蠟混合靜置24 h后,出現(xiàn)明顯乳化層,如圖7所示。由圖7可知:空白培養(yǎng)基與液體石蠟不能形成乳狀液;菌種SS1培養(yǎng)物與液體石蠟形成水包油的乳狀液,其乳化層高度約為2.55 cm,乳化系數(shù)為63.75%。乳狀液能增加嗜蠟菌與蠟組分的接觸面積,提高嗜蠟菌的除蠟?zāi)芰?。因此,將菌種SS1引入原油中,能夠減少原油中蠟組分附著于采油設(shè)備及管道表面,達(dá)到除蠟、防蠟效果[23]。
圖7 菌種SS1培養(yǎng)物和空白培養(yǎng)基與液體石蠟的乳化效果Fig.7 Emulsifying results of strain SS1 culture medium anduntreated culture medium with liquid paraffin(a) Control group: Untreated culture medium with liquid paraffin;(b) Experimental group: Strain SS1 culture medium with liquid paraffin
2.3.3 表面活性劑提取與鑒定
菌種SS1代謝產(chǎn)物的傅里葉紅外光譜如圖8所示。圖8中,3214.34 cm-1處為N—H鍵伸縮振動引起的特征峰;2923.75與2858.57 cm-1為脂肪族的CH2對稱拉伸振動;1642.89 cm-1顯示酰胺的CO—N鍵拉伸振動;1387.64 cm-1處為CH3—基團(tuán)做不對稱形變振動;1094.91 cm-1處是糖環(huán)縮醛結(jié)構(gòu)C—O—C的振動;955.74 cm-1顯示為C—O鍵伸縮振動。綜上,菌種SS1代謝產(chǎn)物生物表面活性劑的特征峰與糖脂類化合物特征峰一致,表明該菌種在生長代謝過程中產(chǎn)生糖脂類生物表面活性劑。這與Nie等[24]研究結(jié)果一致。
圖8 菌種SS1代謝產(chǎn)物的紅外光譜Fig.8 Fourier infrared spectrum of strain SS1 metabolites
2.4.1 菌種SS1的除蠟性能
經(jīng)菌種SS1處理120 h前、后,原油析蠟過程的DSC熱譜圖如圖9所示;原油經(jīng)菌種SS1處理120 h前后的析蠟性質(zhì)見表1。由圖9可知:原油處理前析蠟點(TC)為24.49 ℃,蠟結(jié)晶釋放出的熱量Q1為20.272 J/g;經(jīng)菌種處理后,析蠟點為24.42 ℃,蠟結(jié)晶釋放出的熱量Q2為9.496 J/g。經(jīng)菌種SS1處理后,原油蠟結(jié)晶釋放出的熱量(Q)、析蠟點溫度(TC)與析蠟高峰點溫度(TP)均下降。由蠟結(jié)晶釋放出的熱量值,采用式(2)可計算原油中蠟的質(zhì)量分?jǐn)?shù)y。
(2)
圖9 原油經(jīng)菌種SS1處理120 h前、后的析蠟過程的DSC熱譜Fig.9 DSC thermal spectra of wax evolution from crude oil before and after strain SS1 treatment for 120 h(a) Untreated sample; (b) Treated by strain SS1
由表1可以看出:由式(2)計算得到菌種SS1處理120 h前、后原油中蠟的質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為9.65%和4.52%。經(jīng)菌種SS1處理后,原油中的蠟含量大幅降低,蠟去除率為53.16%,可有效減輕蠟沉積現(xiàn)象[15]。原油中蠟含量的降低、及析蠟點和析蠟高峰點降低,減少了蠟沉積現(xiàn)象出現(xiàn),從而提高原油開采及運輸?shù)陌踩院徒?jīng)濟(jì)性。
表1 原油經(jīng)菌種SS1處理120 h前、后的析蠟性質(zhì)Table 1 Wax evolution properties of crude oil before andafter strain SS1 treatment for 120 h
2.4.2 菌種SS1的降黏性能
菌種SS1處理前、后原油的黏度變化如圖10所示。由圖10可知:在菌種SS1處理前,原油在非牛頓流體溫度段(27~43 ℃)的黏度范圍為14~301 mPa·s;菌種SS1處理后,原油在該溫度段的黏度范圍降至8~155 mPa·s;36 ℃下原油的降黏率達(dá)72.84%。原油經(jīng)菌種SS1處理后黏度降低,是因為菌種以原油中長鏈烷烴為碳源進(jìn)行生長代謝,將原油的長碳鏈烷烴降解為短碳鏈烷烴,降低原油中大分子組分的比例;同時菌種在生長代謝過程中產(chǎn)生生物表面活性劑,使原油分散乳化于水中,形成水包油乳狀液。兩方面共同作用使原油黏度降低,從而提高原油流動性能[25]。
圖10 SS1菌處理前、后原油黏度的變化Fig.10 The viscosity change of crude oil before andafter treated by SS1 bacteria
采用單細(xì)胞Raman-D2O同位素標(biāo)記技術(shù)和16S rRNA測序鑒定,快速準(zhǔn)確確定出遼河油田原油優(yōu)勢嗜蠟菌種(SS1)為銅綠假單胞菌(Pseudomonasaeruginosa);其最佳生長溫度為36 ℃,最佳生長pH值為7,最佳生長鹽(NaCl)質(zhì)量濃度為5 g/L。
菌種SS1在生長代謝過程中產(chǎn)生糖脂類生物表面活性劑,其乳化系數(shù)為63.75%,能使原油形成水包油型乳狀液,提高蠟組分在原油中的溶解度。菌種SS1對原油處理120 h后,原油的蠟去除率為53.16%,降黏率達(dá)72.84%。說明菌種SS1對原油具有良好的除蠟、降黏作用,可以提高原油流動性。