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    柚皮油對心肺復(fù)蘇后大鼠心肌壞死性凋亡的影響

    2021-01-27 15:06:44趙高陽謝露王文艷鄒鑫森田鑫悅陳蒙華
    天津醫(yī)藥 2021年1期
    關(guān)鍵詞:壞死性心肺低劑量

    趙高陽,謝露,王文艷,鄒鑫森,田鑫悅,陳蒙華△

    心搏驟停(cardiac arrest,CA)是指心臟泵血功能機械活動的突然停止,可造成全身血液循環(huán)中斷、呼吸停止和意識喪失。心肺復(fù)蘇后恢復(fù)自主循環(huán)(return of spontaneous circulation,ROSC)同時可引起嚴(yán)重的心肌缺血/再灌注損傷(myocardial ischemia/reperfusion injury,MI/RI)[1],其發(fā)生機制主要有氧化應(yīng)激、細(xì)胞凋亡等[2]。壞死性凋亡(necroptosis)是2005年由Degterev等[3]報道的一種新的細(xì)胞死亡方式。壞死性凋亡時細(xì)胞發(fā)生水腫,細(xì)胞膜破裂以及細(xì)胞器腫脹、崩解,是一種可調(diào)控的程序性細(xì)胞死亡。最近研究發(fā)現(xiàn)壞死性凋亡廣泛參與心血管等多個系統(tǒng)疾病的發(fā)生,在組織器官缺血再灌注損傷中發(fā)揮重要作用[4]。柚皮油(pomelo peel oil,PPO)是從柚子皮中提取的揮發(fā)性油,研究證實其富含D-苧烯、黃酮類等多種化合物[5],具有抗氧化[6-7]、抗自由基[8]等生物活性。本研究通過建立大鼠心臟驟停/心肺復(fù)蘇(CA/CPR)模型,初步探討PPO能否通過抑制壞死性凋亡減輕心肺復(fù)蘇后大鼠的MI/RI。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 柚皮油的提取沙田柚購于廣西容縣,將50 g外果皮洗凈并剪成約5 mm×5 mm大小碎片,與250 mL蒸餾水混合后放入蒸餾瓶中,加熱約2 h,待冷卻后分離PPO,置于4℃冰箱保存?zhèn)溆谩嶒炃皩⑺梵w積的PPO溶解于10%甘油中緩慢進(jìn)行靜脈注射。

    1.1.2 實驗動物成年健康雄性SPF級SD大鼠50只,體質(zhì)量250~300 g,購于廣西醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心(許可證編號:SCXK桂2014-0002)。實驗設(shè)計及操作通過廣西醫(yī)科大學(xué)倫理委員會批準(zhǔn),動物處置方法均符合動物倫理學(xué)標(biāo)準(zhǔn)。

    1.1.3 主要儀器與試劑小型動物呼吸機RWD407購于深圳市瑞沃德生命科技有限公司。Odyssey成像系統(tǒng)購于美國LI-COR公司。乳酸(LA)含量檢測試劑盒購于北京索萊寶科技公司。BCA蛋白質(zhì)測定試劑盒購于博士德生物(AR0146)。一抗:兔抗大鼠腫瘤壞死因子(TNF)-α抗體(WL01896,萬類生物,中國)、兔抗大鼠磷酸化混合譜系激酶結(jié)構(gòu)域蛋白(p-MLKL)抗體(AF7420,Affinity,中國)、兔抗大鼠GAPDH抗體(5174T,CST,美國)。山羊抗兔IgG熒光標(biāo)記二抗(5366P,CST,美國)。通用SP試劑盒(鼠/兔鏈霉素卵白素-生物素法監(jiān)測系統(tǒng),SP-9000,中杉金橋,中國),其中包括:內(nèi)源性過氧化物酶阻斷劑、封閉用正常山羊血清工作液、生物素標(biāo)記山羊抗鼠/兔IgG聚合物、辣根酶標(biāo)記鏈霉素卵白素工作液。

    1.2 方法

    1.2.1 動物分組及模型制備按隨機數(shù)字表法將大鼠分為假手術(shù)組(Sham組)、模型組(CA組)、甘油組(GLY組)、低劑量柚皮油組(低劑量組)和高劑量柚皮油組(高劑量組),每組10只。根據(jù)Chen等[9]的方法制備大鼠CA/CPR模型。所有實驗大鼠在術(shù)前禁食12 h,自由飲水。經(jīng)大鼠右側(cè)腹腔內(nèi)注射10%水合氯醛(3 mg/kg)進(jìn)行麻醉,予以術(shù)區(qū)備皮,消毒,氣管插管,分離并暴露左側(cè)股動靜脈,心電監(jiān)測心律。將2根充滿5 IU/mL肝素鈉鹽水的20號導(dǎo)管分別置入大鼠左側(cè)股動脈和股靜脈中用于監(jiān)測血壓和給藥。采用經(jīng)食管交流電刺激誘導(dǎo)大鼠心臟發(fā)生心室顫動(VF),建立CA/CPR模型。CA成功判定標(biāo)準(zhǔn)及ROSC的恢復(fù)標(biāo)準(zhǔn)參照Chen等[9]的研究。Sham組僅進(jìn)行機械通氣,不誘導(dǎo)CA/CPR,并經(jīng)股靜脈注射與藥物組等體積的生理鹽水;其余4組均進(jìn)行機械通氣并誘導(dǎo)CA/CPR?;謴?fù)ROSC后30 min內(nèi),經(jīng)股靜脈緩慢注射PPO,低劑量組20 mg/kg,高劑量組40 mg/kg,CA組注射等體積生理鹽水,GLY組注射等體積10%甘油。監(jiān)測1 h后放回籠中繼續(xù)飼養(yǎng)。觀察24 h后,對所有大鼠進(jìn)行取材、采集血樣并分離血清200μL于-80℃低溫冰箱備用,分離心肌組織進(jìn)行HE染色、免疫組化染色及蛋白免疫印跡檢測。

    1.2.2 HE染色病理觀察取ROSC后24 h心肌組織,經(jīng)10%福爾馬林液固定后,梯度乙醇脫水,石蠟包埋后制作3μm厚度的切片,對切片進(jìn)行脫蠟水化,常規(guī)HE染色,封片,光學(xué)顯微鏡下觀察病理變化。

    1.2.3 血清乳酸檢測取ROSC后24 h各組大鼠血清,使用血清乳酸檢測試劑盒檢測乳酸含量,操作方法按照試劑盒說明書進(jìn)行。

    1.2.4 免疫組化染色檢測TNF-α及p-MLKL的表達(dá)取石蠟切片,常規(guī)脫蠟脫水,高壓修復(fù)抗原,滴加血清封閉液;加TNF-α(1∶2 000)、p-MLKL(1∶2 000)一抗稀釋液抗體,4℃孵育過夜;PBS沖洗后,加適量生物素標(biāo)記的山羊抗鼠/兔IgG聚合物,37℃孵育15 min,PBS沖洗3次(2.5 min/次);加辣根過氧化物酶標(biāo)記鏈霉素卵白素工作液室溫孵育10 min,PBS沖洗3次(2.5 min/次);DAB顯色,蘇木素染色,鹽酸乙醇分化,水洗返藍(lán),晾干,中性樹膠封片,鏡檢。光學(xué)顯微鏡下拍照,每片隨機讀取3個視野,陽性反應(yīng)為棕黃色或黃色顆粒,陽性表達(dá)率為每視野內(nèi)呈現(xiàn)陽性反應(yīng)面積占每視野面積的比率,采用Image J軟件定量分析,結(jié)果以3個視野陽性表達(dá)率的平均值表示。

    1.2.5 蛋白免疫印跡檢測TNF-α及p-MLKL的表達(dá)取-80℃超低溫冰箱保存的心肌組織,勻漿,離心取上清液,通過BCA蛋白質(zhì)測定試劑盒進(jìn)行總蛋白質(zhì)濃度測定,然后與適量上樣緩沖液混合,100℃煮沸10 min,冷卻后進(jìn)行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳,并轉(zhuǎn)移到PVDF膜(0.22μm孔徑),然后用5%脫脂牛奶封閉60 min。用含有0.1%Tween 20的Tris緩沖液(TBST)洗滌5min×3次后,與TNF-α(1∶500)、p-MLKL(1∶1 000)和GAPDH(1∶1 000)抗體孵育過夜,TBST洗滌后,再與山羊抗兔IgG熒光二抗(1∶20 000)進(jìn)一步室溫孵育1 h。通過3次TBST洗滌后,使用Odyssey成像系統(tǒng)分析蛋白條帶的灰度值。各條帶的灰度值用Image J軟件進(jìn)行定量分析,以GAPDH為內(nèi)參校正,量化值以目的蛋白/GAPDH表示。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)方法采用SPSS 17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析,符合正態(tài)分布的計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析(ANOVA),組間多重比較行LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 HE染色結(jié)果Sham組心肌組織細(xì)胞排列整齊,胞質(zhì)及胞核清晰,細(xì)胞膜完整,細(xì)胞間隙適中;CA組及GLY組心肌纖維排列明顯紊亂,部分區(qū)域細(xì)胞壞死明顯,細(xì)胞明顯腫脹,部分核固縮,間質(zhì)水腫;低劑量組心肌組織排列較紊亂,細(xì)胞水腫及細(xì)胞破壞程度稍減輕。高劑量組上述損傷明顯減輕,見圖1。

    2.2 血清乳酸水平Sham組、CA組、GLY組、低劑量組、高劑量組血清乳酸水平(mmol/L)分別為0.91±0.10、1.50±0.11、1.45±0.11、1.21±0.08、1.07±0.09,5組間比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=37.692,P<0.05)。與Sham組相比,CA組、GLY組顯著升高(P<0.05);CA組與GLY組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);低劑量組、高劑量組較CA組、GLY組降低,高劑量組較低劑量組降低(均P<0.05)。

    2.3 心肌組織中TNF-α及p-MLKL免疫組化染色結(jié)果與Sham組比較,CA和GLY組心肌組織中TNF-α及p-MLKL的陽性表達(dá)率升高(P<0.05);低劑量組及高劑量組心肌組織中TNF-α及p-MLKL陽性表達(dá)率較CA組下降(P<0.05),且高劑量組心肌組織中TNF-α及p-MLKL陽性表達(dá)率較低劑量組更低(P<0.05),CA組與GLY組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),見圖2、3,表1。

    Tab.1 The positive expression rates and relative protein expressions of TNF-αand p-MLKL in myocardium of rats in five groups表1 5組大鼠心肌TNF-α和p-MLKL免疫組化陽性表達(dá)率及蛋白相對表達(dá)量

    2.4 心肌組織中TNF-α及p-MLKL蛋白表達(dá)蛋白免疫印跡結(jié)果與Sham組比較,CA和GLY組心肌組織中TNF-α及p-MLKL蛋白的表達(dá)明顯升高(P<0.05);低劑量及高劑量組心肌組織中TNF-α及p-MLKL蛋白表達(dá)較CA組明顯下降(P<0.05),且高劑量組心肌組織中TNF-α及p-MLKL蛋白表達(dá)較低劑量組更低(P<0.05)。見圖4、表1。

    Fig.4 The expressions of TNF-α與p-MLKL at 24 h of ROSC in five groups圖4 ROSC后24 h 5組大鼠心肌TNF-α與p-MLKL蛋白的表達(dá)

    3 討論

    臨床上,心臟驟停患者在經(jīng)歷心肺復(fù)蘇后,組織器官存在缺血再灌注損傷,其中MI/RI一定程度上會影響患者的心臟功能及其預(yù)后。本研究采用食管電刺激法誘導(dǎo)大鼠心室顫動,建立CA/CPR模型,模擬臨床CA/CPR所致的MI/RI,結(jié)果表明,CA組和GLY組HE染色可見明顯心肌組織損傷,血清乳酸水平顯著升高;接受PPO治療后的大鼠,心肌病理損傷程度明顯減輕,血乳酸水平明顯下降,提示PPO能夠改善心肺復(fù)蘇后心肌灌注和減輕MI/RI。壞死性凋亡是一種不同于自噬和凋亡的細(xì)胞死亡過程,其特征是同時具備壞死的形態(tài)學(xué)特征和凋亡的規(guī)律性調(diào)控機制[3]。多個信號分子以及信號通路參與體內(nèi)壞死性凋亡的調(diào)控,其中TNF-α誘導(dǎo)發(fā)生的分子途徑是壞死性凋亡最重要的一條途徑,而MI/RI的TNF-α水平明顯升高[10]?;旌献V系激酶結(jié)構(gòu)域蛋白(MLKL)是壞死性凋亡終末效應(yīng)器,p-MLKL破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu)使細(xì)胞膜破裂,最終導(dǎo)致細(xì)胞死亡[11]。目前已有研究證實壞死性凋亡參與動脈粥樣硬化、MI/RI、心肌梗死等心血管疾病的病理生理過程[12-13],抑制壞死性凋亡對心肌具有保護(hù)作用[14]。本研究結(jié)果顯示ROSC后大鼠心肌壞死性凋亡關(guān)鍵蛋白TNF-α和p-MLKL表達(dá)均上調(diào),表明壞死性凋亡參與了心肺復(fù)蘇后MI/RI。Chtourou等[15]研究發(fā)現(xiàn)對高膽固醇飲食大鼠給予柚皮素可抑制壞死性凋亡,從而保護(hù)大鼠心臟。本研究發(fā)現(xiàn)心肺復(fù)蘇后大鼠給予PPO后也可顯著抑制壞死性凋亡關(guān)鍵蛋白TNF-α和p-MLKL的表達(dá),減輕心肌病理損傷,改善心肌灌注損傷,提示PPO可能通過抑制壞死性凋亡緩解心肺復(fù)蘇后MI/RI。

    PPO含有黃酮類物質(zhì)等成分,具有抗氧化、抗自由基等生物活性[8]。心肺復(fù)蘇后缺血再灌注損傷引起氧自由基(過氧化氫等)的生成增多,過氧化氫可以激活p38促有絲分裂蛋白激酶(p38MAPK),從而啟動TNF-α基因的瀑布反應(yīng),導(dǎo)致缺血再灌注心肌TNF-α的產(chǎn)生增多[10]。依據(jù)本研究結(jié)果,推測PPO可能通過抗氧化,抑制TNF-α表達(dá)及其介導(dǎo)的壞死性凋亡來減輕心肺復(fù)蘇后心肌損傷。

    綜上所述,PPO可抑制壞死性凋亡,減輕心肺復(fù)蘇后MI/RI。本研究尚有不足之處,首先PPO為混合物,需進(jìn)一步分離純化PPO并鑒定其具體有效成分。其次,需要研究PPO減輕MI/RI的量效關(guān)系以確定其最佳劑量,為進(jìn)一步的機制探討提供參考依據(jù)。

    Fig.1 The comparison of hematoxylin-eosin staining results in five groups(×400)圖1 5組大鼠心肌HE染色結(jié)果(×400)

    Fig.2 Immunohistochemical staining of TNF-αin myocardium of rats in five groups(×400)圖2 5組大鼠心肌TNF-α免疫組化染色圖(×400)

    Fig.3 Immunohistochemical staining of p-MLKL in myocardium of rats in five groups(×400)圖3 5組大鼠心肌p-MLKL免疫組化染色圖(×400)

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