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    熒光定量PCR測定粗品肝素鈉DNA提取液中反芻基因及豬基因的濃度

    2021-01-22 05:19:26李麗紅米文強張雪霞任風芝劉建芬
    化學與生物工程 2021年1期
    關(guān)鍵詞:粗品肝素鈉提取液

    李 寧,李麗紅,米文強,張雪霞,任風芝*,劉建芬

    (1.華北制藥集團新藥研究開發(fā)有限責任公司 微生物藥物國家工程研究中心河北省工業(yè)微生物藥物代謝工程技術(shù)中心,河北 石家莊 050015;2.華北制藥華坤河北生物技術(shù)有限公司,河北 石家莊 050000)

    肝素鈉是由不同分子量糖鏈的硫酸氨基葡聚糖的鈉鹽組成的混合物[1],是目前抗凝血和抗血栓的首選藥物[2],還具有抗平滑肌細胞增殖、抗炎癥、抗腫瘤及抗病毒等多種生物學功能[3]。肝素鈉可以從豬、牛的小腸黏膜和牛肺等組織中提取,但由于瘋牛病的出現(xiàn),使牛源肝素鈉的應(yīng)用受到了限制[4]。不同動物來源的肝素鈉具有不同的化學結(jié)構(gòu)和生物活性,其不良反應(yīng)也不同,牛源肝素鈉引起血小板減少的不良反應(yīng)約是豬源肝素鈉的2倍[5]?!吨腥A人民共和國藥典》2020年版中明確規(guī)定,肝素鈉應(yīng)從檢疫合格的豬腸黏膜中提取,并對肝素鈉的動物來源進行種屬鑒別[1]。因此,開發(fā)一種快速檢測粗品肝素鈉中反芻基因及豬基因的方法,對于判定肝素鈉的動物來源尤為重要。作者采用細胞裂解和蛋白酶K消化技術(shù),結(jié)合DNA制備柱選擇性吸附DNA的方法提取粗品肝素鈉中的動物DNA,將DNA標準溶液、粗品肝素鈉DNA提取液分別與相應(yīng)的PCR試劑混合,進行PCR擴增,測定粗品肝素鈉DNA提取液中反芻基因及豬基因濃度。

    1 實驗

    1.1 材料、試劑與儀器

    粗品肝素鈉(豬源),華北制藥華坤河北生物技術(shù)有限公司;粗品肝素鈉(羊源),廣東賽格生物技術(shù)有限公司。

    基因組DNA小量試劑盒(DNA制備柱、核糖核酸酶A、裂解液、蛋白酶K、蛋白去除液、洗滌液、去鹽液、洗脫液),康寧生命科學(吳江)有限公司;反芻基因熒光PCR檢測試劑盒(反芻基因PCR試劑預混劑、雙蒸餾水、TE緩沖液、反芻基因組DNA對照品)、豬基因熒光PCR檢測試劑盒(豬基因PCR試劑預混劑、雙蒸餾水、TE緩沖液、豬基因組DNA對照品)、?;蚪MDNA對照品、綿羊基因組DNA對照品、山羊基因組DNA對照品,廣東賽格生物技術(shù)有限公司。

    ABI Prism 7000型熒光定量PCR儀,美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司;XW-80A型渦旋混合器,上海精科實業(yè)有限公司;TGL-20M型高速臺式冷凍離心機,長沙湘儀離心機儀器有限公司;水浴鍋,泰特實驗儀器廠。

    1.2 粗品肝素鈉DNA提取液的制備

    將1.0 g粗品肝素鈉用水溶解至10 mL,10 000 r·min-1離心5 min;取上清液100 μL于離心管中,加入250 μL雙蒸餾水、0.9 μL 核糖核酸酶A,渦旋混合30 s;然后加入150 μL裂解液,渦旋混合30 s,再加入20 μL 蛋白酶 K,渦旋混合30 s, 56 ℃水浴30 min,得消化液;向消化液中加入350 μL 蛋白去除液,輕輕搖勻,12 000 r·min-1離心10 min;上清液轉(zhuǎn)移至DNA制備柱中,靜置5 min后,12 000 r·min-1離心1 min;棄去濾液,DNA制備柱用500 μL洗滌液離心洗滌后,用去鹽液離心洗滌2次,每次700 μL;最后在DNA制備柱中加入150 μL 65 ℃預熱的洗脫液,靜置2 min,離心,收集洗脫液至潔凈的滅菌離心管中,得粗品肝素鈉DNA提取液,即供試溶液。

    1.3 DNA標準溶液的配制

    1.3.1 反芻基因組DNA標準溶液的配制

    取10 ng·μL-1反芻基因組DNA標準溶液,用TE緩沖液稀釋至濃度分別為1 000 pg·μL-1、100 pg·μL-1、10 pg·μL-1、1 pg·μL-1、0.1 pg·μL-1、0.01 pg·μL-1的反芻基因組DNA標準溶液。

    1.3.2 豬基因組DNA標準溶液的配制

    取10 ng·μL-1豬基因組DNA標準溶液,用TE緩沖液稀釋至濃度分別為10 000 pg·μL-1、1 000 pg·μL-1、100 pg·μL-1、10 pg·μL-1、1 pg·μL-1、0.1 pg·μL-1的豬基因組DNA標準溶液。

    1.4 熒光定量PCR擴增檢測

    1.4.1 反應(yīng)液的配制

    按每孔PCR試劑預混劑11.5 μL、雙蒸餾水6.5 μL的比例分別混合稀釋反芻基因PCR試劑預混劑及豬基因PCR試劑預混劑;將粗品肝素鈉DNA提取液與DNA標準溶液按2 μL/孔分別添加至對應(yīng)的PCR反應(yīng)孔中,混合均勻。

    1.4.2 測試程序

    PCR擴增程序:95 ℃ 120 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,45個循環(huán)。計算溶液中反芻基因及豬基因濃度。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 反芻基因PCR試劑和豬基因PCR試劑的專屬性

    在反芻基因PCR試劑和豬基因PCR試劑中分別加入?;蚪MDNA標準溶液、綿羊基因組DNA標準溶液、山羊基因組DNA標準溶液、豬基因組DNA標準溶液、雙蒸餾水(空白對照),進行PCR擴增,考察反芻基因PCR試劑和豬基因PCR試劑的專屬性,結(jié)果見表1。

    表1 反芻基因PCR試劑和豬基因PCR試劑的專屬性

    從表1可知,反芻基因PCR試劑對?;蚪MDNA、綿羊基因組DNA、山羊基因組DNA可正常擴增,結(jié)果均為陽性;對豬基因組DNA、空白對照的擴增結(jié)果均為陰性。豬基因PCR試劑對豬基因組DNA正常擴增,結(jié)果為陽性;對?;蚪MDNA、綿羊基因組DNA、山羊基因組DNA與空白對照的擴增結(jié)果均為陰性。表明反芻基因PCR試劑和豬基因PCR試劑的專屬性滿足檢測要求。

    2.2 線性范圍

    2.2.1 反芻基因濃度的線性范圍

    以濃度為0.01~1 000 pg·μL-1的反芻基因組DNA標準溶液為模板進行PCR擴增,以雙蒸餾水為空白對照。以反芻DNA濃度的對數(shù)(logc)為橫坐標、擴增CT值為縱坐標,繪制標準曲線(圖1),擬合得線性回歸方程為:CT=-3.46logc+25.95,R2=0.9990,擴增效率=94.54%。表明反芻基因濃度在0.01~1 000 pg·μL-1范圍內(nèi)與擴增CT值線性關(guān)系良好。

    圖1 反芻基因的標準曲線Fig.1 Standard curve of ruminant gene

    2.2.2 豬基因濃度的線性范圍

    以濃度為0.1~10 000 pg·μL-1的豬基因組DNA標準溶液為模板進行PCR擴增,以雙蒸餾水為空白對照。以豬DNA濃度的對數(shù)(logc)為橫坐標、擴增CT值為縱坐標,繪制標準曲線(圖2),擬合得線性回歸方程為CT=-3.18logc+32.63,R2=0.9952,擴增效率=106.11%。表明豬基因濃度在0.1~10 000 pg·μL-1范圍內(nèi)與擴增CT值線性關(guān)系良好。

    2.3 準確度

    2.3.1 反芻基因檢測準確度

    分別將濃度為10 000 pg·μL-1、1 000 pg·μL-1、100 pg·μL-1、10 pg·μL-1、1 pg·μL-1的?;蚪MDNA標準溶液與粗品肝素鈉DNA提取液按1∶9的比例混合,作為模板進行PCR擴增,結(jié)果見表2。

    由表2可知,反芻基因的平均回收率為107.66%,RSD為7.11%,表明該方法測定反芻基因濃度的準確度滿足檢測要求。

    圖2 豬基因的標準曲線Fig.2 Standard curve of porcine gene

    表2 反芻基因檢測準確度

    2.3.2 豬基因檢測準確度

    分別將濃度為10 000 pg·μL-1、8 000 pg·μL-1、6 000 pg·μL-1、4 000 pg·μL-1、2 000 pg·μL-1的豬基因組DNA標準溶液與粗品肝素鈉DNA提取液按1∶9的比例混合,作為模板進行PCR擴增,結(jié)果見表3。

    表3 豬基因檢測準確度

    由表3可知,豬基因的平均回收率為105.92%,RSD為7.77%,明該方法測定豬基因濃度的準確度滿足檢測要求。

    2.4 精密度

    取1批豬源粗品肝素鈉與1批羊源粗品肝素鈉等比例混合均勻,由 2 名實驗人員在不同時間分別制備供試溶液6份,測定反芻基因與豬基因濃度,結(jié)果見表4。

    由表4可知,反芻基因和豬基因濃度的RSD分別為7.01%、5.60%,表明該方法的精密度滿足檢測要求。

    表4 檢測精密度

    2.5 穩(wěn)定性

    取1批豬源粗品肝素鈉與1批羊源粗品肝素鈉等比例混合均勻,制備供試溶液,將DNA標準溶液、供試溶液于(4±2) ℃分別放置0 h、12 h、24 h、36 h、48 h,測定反芻基因與豬基因濃度,結(jié)果見表5。

    表5 供試溶液的穩(wěn)定性

    由表5可知,反芻基因和豬基因濃度的RSD分別為3.16%、4.62%,表明DNA標準溶液和供試溶液于(4±2) ℃放置48 h內(nèi)穩(wěn)定。

    2.6 樣品測定

    對3批粗品肝素鈉進行檢測,批號MHC190601、MHC190602、MHC190603的樣品中反芻基因濃度分別為3.02×10-2pg·μL-1、3.21×10-2pg·μL-1、1.64×10-2pg·μL-1,豬基因濃度分別為604.81 pg·μL-1、1 063.24 pg·μL-1、886.60 pg·μL-1。

    3 結(jié)論

    采用細胞裂解和蛋白酶K消化技術(shù),結(jié)合DNA制備膜選擇性吸附DNA的方法,可同時處理多個樣品,快速提取粗品肝素鈉中的動物DNA。將DNA標準溶液分別與含有針對豬或反芻動物特有基因序列設(shè)計的探針、引物的PCR試劑混合,進行PCR擴增,反芻基因濃度在0.01~1 000 pg·μL-1范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,豬基因濃度在0.1~10 000 pg·μL-1范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。該方法具有良好的專屬性、準確度、精密度,適用于粗品肝素鈉動物來源的種屬鑒別。

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