陳昌梅,林明霞,蘭元
福建省茶葉質(zhì)量檢測與技術(shù)推廣中心 黃財標(biāo)技能大師工作室,福建 福州350001
福建是我國茶葉種植、生產(chǎn)和進(jìn)出口貿(mào)易大省,茶葉品類多,六大茶類中的烏龍茶、紅茶、白茶、綠茶以及再加工茶類茉莉花茶均在福建茶區(qū)較大規(guī)模種植和生產(chǎn)。福建茶區(qū)的茶葉品質(zhì)優(yōu)良,飲茶文化盛行,人們對茶葉衛(wèi)生質(zhì)量和安全也格外關(guān)注,其中關(guān)注度最高的是農(nóng)藥殘留[1]。2019年8月15日,國家市場監(jiān)督管理總局、國家衛(wèi)生健康委員會和農(nóng)業(yè)農(nóng)村部聯(lián)合發(fā)布了《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中農(nóng)藥最大殘留限量》(GB 2763—2019)[2],其中涉及茶葉的限量有65項,標(biāo)準(zhǔn)中對除特丁硫磷、丁醚脲、草銨膦和氯噻啉等4項農(nóng)藥組分外的61項推薦了26個檢測方法標(biāo)準(zhǔn),這些檢測方法標(biāo)準(zhǔn)大多為農(nóng)藥多殘留檢測方法。
近年來,越來越多的學(xué)者針對茶葉中農(nóng)藥多殘留的檢測技術(shù)進(jìn)行探索研究[3-4],氣相色譜-三重四級桿串聯(lián)質(zhì)譜法(GC-MS/MS)因具有選擇性高、靈敏度高、定性準(zhǔn)確性高和抗干擾能力強(qiáng)等優(yōu)勢越來越受青睞[5-7]。因茶葉中含有數(shù)百種化學(xué)成分、基質(zhì)相對復(fù)雜,對茶葉中的農(nóng)藥殘留進(jìn)行檢測時,容易受到基質(zhì)干擾。因此,前處理方法的選擇尤為重要。QuEChERS 前處理技術(shù)具有簡便快速的優(yōu)點,但鑒于茶葉基質(zhì)的復(fù)雜性,固相萃取法(SPE)對茶葉樣品的凈化更為完全,回收率也高。本文以福建省內(nèi)生產(chǎn)的綠茶、白茶、烏龍茶及紅茶等四大茶類(再加工茶類茉莉花茶的茶坯為綠茶)為研究對象,提供了一種基于SPE技術(shù)的可靠、簡便的GC-MS/MS 檢測方法,對GB 2763—2019標(biāo)準(zhǔn)中規(guī)定的使用氣相色譜儀、氣相質(zhì)譜儀及氣相色譜-三重四級桿串聯(lián)質(zhì)譜儀檢測的39種農(nóng)殘項目,以及其他農(nóng)業(yè)農(nóng)村部規(guī)定的茶園禁用的農(nóng)藥項目同時進(jìn)行定性篩查和準(zhǔn)確定量檢測。
(1)試劑
乙腈(色譜純,購自美國Merck公司);甲苯(色譜純,購自上海安譜有限公司);丙酮(色譜純,購自美國TEDIA 公司);氯化鈉(優(yōu)級純,購自天津科密歐化學(xué)試劑廠);無水硫酸鎂(優(yōu)級純,購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);實驗用水為超純水機(jī)制得的一級水。
(2)材料
固相萃取柱:石墨化炭黑-氨基復(fù)合柱(購自島津上海實驗器材有限公司,貨號5010-81804),微孔濾膜(有機(jī)相,尼龍):13 mm × 0.22 μm,2 mL的一次性針筒。
(3)標(biāo)準(zhǔn)品
環(huán)氧七氯B 內(nèi)標(biāo)和其他農(nóng)藥及代謝物標(biāo)準(zhǔn)品均購自農(nóng)業(yè)農(nóng)村部環(huán)境保護(hù)科研監(jiān)測所和北京壇墨質(zhì)檢科技有限公司。
三重四級桿氣相色譜儀-串聯(lián)質(zhì)譜聯(lián)用儀TQ-8050 (日本島津公司),配有電子轟擊源(EI);高速粉碎儀(A11,德國IKA);渦旋振蕩儀(VORTEX 3, 德 國IKA); 旋 轉(zhuǎn) 蒸 發(fā) 儀(RV 10,德國IKA);低速離心機(jī)(SC-3610,安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司);全自動氮吹儀(美國Turbo Vap Ⅱ);電子天平(BS-224S,德國Sartorius)。
(1)溶液配制
乙腈-甲苯溶液:量取100 mL 甲苯和300 mL乙腈置于500 mL儲液瓶中,混勻。
內(nèi)標(biāo)溶液:將購置的100 mg/L 內(nèi)標(biāo)儲備液用丙酮稀釋至5 mg/L作為內(nèi)標(biāo)溶液,冷藏備用。
混合農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)中間液:將購置的100 mg/L各農(nóng)藥及代謝物儲備液移入2 mL 棕色瓶中避光0~4 ℃保存,配制中間液時吸取六六六、滴滴涕和聯(lián)苯菊酯各50 μL,其余組分各100 μL 置于10 mL 的棕色容量瓶中,用丙酮定容至刻度,混合均勻后移入20 mL 棕色儲液瓶中,避光0~4 ℃保存。
基質(zhì)混合標(biāo)準(zhǔn)工作液:將1 mL空白基質(zhì)溶液置于40 ℃水浴旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至近干,加入20 μL 內(nèi)標(biāo)溶液,再加入1 mL上述中間液稀釋成相應(yīng)濃度的混合農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)工作液復(fù)溶,過微孔濾膜,裝入加有0.5 mL內(nèi)插管的棕色樣品瓶,現(xiàn)配現(xiàn)用。
基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線溶液的配制:用基質(zhì)混合標(biāo)準(zhǔn)工作液配制一系列基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線溶液2 μg/L、5 μg/L、10 μg/L、50 μg/L、100 μg/L、200 μg/L、500 μg/L,并加入20 μL 內(nèi)標(biāo)溶液,其中六六六、滴滴涕和聯(lián)苯菊酯組分在儀器上具有較高的響應(yīng),配制成相應(yīng)較低的濃度系列0.5 μg/L、1.25 μg/L、2.5μg/L、5 μg/L、12.5 μg/L、25 μg/L、50 μg/L、125 μg/L。
經(jīng)GC-MS/MS 測定,以農(nóng)藥定量離子峰面積與內(nèi)標(biāo)定量離子峰面積的比值為縱坐標(biāo)(Y)、農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度與內(nèi)標(biāo)濃度的比值為橫坐標(biāo)(X)線性擬合,得到各農(nóng)藥組分的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線。
(2)試樣制備
用四分法分取茶樣250 g,用高速粉碎儀粉碎,直至全部過425 目的篩網(wǎng),混勻后于密封袋中保存待測。
(3)樣品前處理
提?。悍Q取上述茶樣粉末2.00 g(精確至0.01 g)于50 mL 塑料離心管中,加4 mL 水渦旋混勻,于4 ℃冷藏冰箱靜置30 min。加入8 mL 乙腈,用渦旋振蕩儀渦旋提取5 min,加入2.0~2.5 g氯化鈉劇烈渦旋1 min,冰浴超聲振蕩5 min 后5 000 r/min離心5 min,上清液即提取液,待凈化。
凈化:在固相萃取柱中加入約1 cm 高的無水硫酸鎂,用5 mL乙腈-甲苯預(yù)洗固相萃取柱,棄去流出液,待液面接近填料,關(guān)閉控制閥,接入100 mL茄形瓶,準(zhǔn)確移取茶樣提取液2 mL于固相萃取柱中,在柱上安裝25 mL 儲液器,待液面接近填料,加入10 mL 乙腈-甲苯溶液淋洗小柱,收集所有流出液于40 ℃水浴旋轉(zhuǎn)濃縮至近干,加入20 μL內(nèi)標(biāo)溶液,1.0 mL 丙酮渦旋振蕩復(fù)溶,過微孔濾膜,上機(jī)檢測。
(4)測定參數(shù)
氣相色譜條件:色譜柱Agilent DB-5ms(30 m × 0.25 mm × 0.25 μm);載氣為氦氣(≥99.999%),流速1.65 mL/min;進(jìn)樣口溫度250 ℃,進(jìn)樣量1.0 μL,不分流進(jìn)樣;柱溫50 ℃保持1 min,以25 ℃/min 的速率升至125 ℃,再以10 ℃/min的速率升至300 ℃,保持13.5 min。
質(zhì)譜條件:離子源溫度200 ℃,接口溫度280 ℃,溶劑延遲時間3 min,檢測器電壓為相對于調(diào)諧結(jié)果+0.5 kV。多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)模式:每種農(nóng)藥分別選擇1 對定量離子、1 ~2 對定性離子。
特征離子的選擇:在氣相色譜條件下,質(zhì)譜采用Q3 Scan 模式在45~500 m/z 范圍內(nèi)對農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行全掃描,對照美國技術(shù)與標(biāo)準(zhǔn)研究院(NIST)譜庫識別各農(nóng)藥組分,在此基礎(chǔ)上進(jìn)行產(chǎn)物離子掃描,并優(yōu)化碰撞電壓,將優(yōu)化結(jié)果注冊到島津SmartDatebase 數(shù)據(jù)庫中,選擇響應(yīng)較高的離子依次作為定量和定性離子,由此建立MRM檢測方法。
每種農(nóng)藥的保留時間、定量定性離子對和碰撞電壓見表1。
(5)基質(zhì)效應(yīng)試驗
購買市售有機(jī)紅茶、有機(jī)烏龍茶、有機(jī)綠茶和有機(jī)白茶樣品,分別按照樣品前處理過程進(jìn)行處理后上機(jī)檢測,在儀器參考條件下,4種茶樣在農(nóng)藥組分出峰處均未檢出,故選擇這4 種茶葉混合樣品作為茶葉空白基質(zhì)。
由于茶葉中復(fù)雜成分可能會對儀器的進(jìn)樣口、檢測器等產(chǎn)生干擾,從而影響方法的檢出限和靈敏度[8],因此,為考察茶葉基質(zhì)對測定結(jié)果的影響,分別以丙酮和上述茶葉空白基質(zhì)溶液按5%、10%、30%、50%、100%的比例稀釋為10 μg/L、50 μg/L、200 μg/L 系列農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液,上機(jī)測定。
表1 農(nóng)藥的保留時間、定量定性離子對和碰撞電壓
續(xù)表1
基質(zhì)常常對分析物的分析過程有顯著的干擾,并影響分析結(jié)果的準(zhǔn)確性,復(fù)雜的茶樣基質(zhì)對不同的農(nóng)藥組分表現(xiàn)出不同程度的增強(qiáng)或抑制效應(yīng),部分農(nóng)藥組分如樂果、西瑪津、莠去津在基質(zhì)比例為30%時峰面積就達(dá)到峰值并隨著基質(zhì)比例的增加保持穩(wěn)定,部分農(nóng)藥組分如五氯硝基苯、噻螨酮、對硫磷隨著基質(zhì)比例的增加峰面積不斷增加,直至全基質(zhì)(100%比例)時達(dá)到峰值。
按照公式基質(zhì)效應(yīng)(%) =(A2-A1)/ A1×100[8]計算基質(zhì)效應(yīng),其中A1為丙酮溶液中農(nóng)藥的峰響應(yīng),A2為茶葉空白基質(zhì)溶液中農(nóng)藥的峰響應(yīng),得到農(nóng)藥組分受基質(zhì)影響的總體情況見圖1。從圖1可見,使用純?nèi)軇┡渲频臉?biāo)準(zhǔn)曲線不能準(zhǔn)確地對樣品中農(nóng)藥組分進(jìn)行定量,因此,本研究選擇茶葉空白全基質(zhì)配制的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作曲線進(jìn)行定量分析。
圖1 農(nóng)藥組分受基質(zhì)影響情況分布圖
各農(nóng)藥組分在相應(yīng)線性范圍內(nèi)均具有良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)為0.994 4~0.999 9(表2),滿足分析測定要求。以3倍信噪比(S/N=3)和10倍信噪比(S/N=10) 分別作為方法的檢出限(LOD)和定量限(LOQ),結(jié)果(表2)表明本方法具有較高的檢測靈敏度。
表2 各農(nóng)藥組分線性相關(guān)系數(shù)、檢出限(S/N=3)與定量限(S/N=10)
續(xù)表2
為考察檢測方法的準(zhǔn)確度與精密度,對茶葉空白基質(zhì)分別進(jìn)行0.05 mg/kg、0.10 mg/kg、0.50 mg/kg 3個水平的加標(biāo)實驗,加標(biāo)回收率與相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)見表3。結(jié)果顯示,除甲胺磷、乙酰甲胺磷外,茶葉樣品3 個水平的農(nóng)藥加標(biāo) 回 收 率 分 別 為82.7% ~119.5% 、 78.6% ~114.2%、80.4%~109.3%,并且精密度滿足檢測方法的要求。茶葉空白基質(zhì)、基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液和樣品加標(biāo)回收色譜圖如圖2。
表3 加標(biāo)回收率與相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)
續(xù)表3
續(xù)表3
圖2 總離子色譜圖
應(yīng)用本文所建立的方法對100 份茶葉樣品(7份綠茶、56份白茶、15份烏龍茶、22份紅茶)進(jìn)行檢測,結(jié)果顯示,所有檢出農(nóng)藥組分的濃度范圍均未超出《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中農(nóng)藥最大殘留限量》(GB 2763—2019)所規(guī)定的限量值,供試茶葉樣品中其他農(nóng)藥組分均未檢出,合格率為100%(表4)。
表4 實際樣品農(nóng)殘檢出情況一覽表
本研究建立了茶葉樣品中76 種農(nóng)藥組分的檢測方法,該方法采用固相萃取凈化技術(shù),不需進(jìn)行耗時耗試劑的均質(zhì)提取,僅需1 次蒸發(fā)濃縮,靈敏度高,準(zhǔn)確度與精密度好,能夠滿足茶葉基質(zhì)中多種農(nóng)藥組分的痕量檢測,可作為GB 2763—2019 中針對茶葉提出的部分使用氣相色譜或氣質(zhì)聯(lián)用方法的檢測項目和其他農(nóng)業(yè)農(nóng)村部規(guī)定的茶園禁用農(nóng)藥提供一種準(zhǔn)確可靠、簡便快捷的檢測方法,具有實際的參考應(yīng)用價值。對于甲胺磷、乙酰甲胺磷等極性較強(qiáng)的有機(jī)磷類農(nóng)藥,采用本方法選擇的色譜柱檢測會受基質(zhì)干擾而影響分離,導(dǎo)致二者的加標(biāo)回收率偏低,對此可在今后的研究中進(jìn)一步改進(jìn)。