側(cè)流暗場成像技術(shù)觀察內(nèi)毒素休克兔小腸絨毛與舌下微循環(huán)改變*

高 飛， 傅小云， 錢明江， 張 宇， 李光素， 胡 杰

(遵義醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院重癥醫(yī)學(xué)科， 貴州 遵義 563003)

·實驗技術(shù)·

側(cè)流暗場成像技術(shù)觀察內(nèi)毒素休克兔小腸絨毛與舌下微循環(huán)改變*

高 飛， 傅小云△， 錢明江， 張 宇， 李光素， 胡 杰

(遵義醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院重癥醫(yī)學(xué)科， 貴州 遵義 563003)

目的： 利用側(cè)流暗場(sidestream dark-field，SDF)成像技術(shù)觀察比較內(nèi)毒素休克兔經(jīng)液體復(fù)蘇至同一目標(biāo)血壓水平下小腸絨毛微循環(huán)及舌下微循環(huán)變化的異同。方法: 新西蘭大白兔60只，隨機(jī)分為絨毛組及舌下組，每組30只。2組均行體外回腸造口術(shù)，用細(xì)菌脂多糖注射建立內(nèi)毒素休克模型。建模成功后用乳酸林格氏液以復(fù)蘇劑量30 mL·kg-1·h-1進(jìn)行液體復(fù)蘇使平均動脈壓(MAP)達(dá)到80 mmHg為目標(biāo)血壓。若經(jīng)單純液體復(fù)蘇，血壓仍不能達(dá)標(biāo)者，則予以去甲腎上腺素0.5～1 μg·kg-1·min-1維持至目標(biāo)血壓。通過SDF成像技術(shù)持續(xù)觀察2組動物休克前后以及液體復(fù)蘇后的小腸絨毛及舌下微循環(huán)灌注指標(biāo)：絨毛血管數(shù)量(vessels per villus，VV)、微血管血流指數(shù)(microvascular flow index，MFI)、灌注絨毛比例(proportion of perfused villi，PPVi)、絨毛邊界量化評分、絨毛血管評分、總的血管密度(total vessel density，TVD)、灌注血管密度(perfused vessel density，PVD)、灌注血管比例(proportion of perfused vessels，PPVe)等的變化并比較兩者灌注特點的異同。結(jié)果: 休克后，小腸絨毛MFI、PPVi以及舌下微循環(huán)MFI、PPVe、TVD、PVD較休克前均顯著下降(P<0.01)，其中小腸絨毛微循環(huán)MFI顯著低于舌下微循環(huán)(P<0.01)；經(jīng)液體復(fù)蘇至MAP達(dá)到目標(biāo)血壓后，小腸絨毛MFI、PPVi以及舌下微循環(huán)MFI、PPVe、TVD、PVD較休克后均有明顯上升(P<0.05)，但復(fù)蘇后的小腸絨毛微循環(huán)MFI仍明顯低于舌下微循環(huán)(P<0.01)。結(jié)論: 內(nèi)毒素休克兔小腸絨毛與舌下微循環(huán)灌注變化有差異，休克后小腸絨毛微循環(huán)灌注下降程度較舌下微循環(huán)更顯著，而液體復(fù)蘇后小腸絨毛微循環(huán)灌注恢復(fù)程度亦低于舌下微循環(huán)。

側(cè)流暗場成像； 微循環(huán)； 內(nèi)毒素休克； 液體復(fù)蘇

膿毒癥休克早期液體復(fù)蘇治療達(dá)標(biāo)后，宏觀的血流動力學(xué)恢復(fù)，但微循環(huán)功能障礙仍然可能存在[1]。膿毒癥休克期間，不同部位不同臟器的微循環(huán)功能障礙的發(fā)生時間和下降程度并非完全一致[2]，胃腸道是休克發(fā)生后最早受累的器官之一[3-4]。側(cè)流暗場(sidestream dark-field，SDF)成像技術(shù)是手持式正交極化頻譜(orthogonal polarization spectral，OPS)成像技術(shù)的衍生技術(shù)，由排列在探測器末端的二極管頻閃光源發(fā)出與血紅蛋白吸收波長(550 nm)相近的獨立極化綠色光源[(540±50) nm]，可以監(jiān)測到組織內(nèi)部的微循環(huán)血流變化。SDF技術(shù)上較OPS更成熟，形成圖像更清晰[5]，且更輕便、廉價。至1999年被用于臨床以后，其對器官微循環(huán)的監(jiān)測作用才逐漸被證實認(rèn)同[6]。目前主要應(yīng)用于舌下、骨骼肌、肝臟、膈肌以及小腸絨毛等組織的微循環(huán)監(jiān)測中[6]。因觀察部位的限制，既往的研究主要集中在舌下微循環(huán)，但據(jù)證實舌下微循環(huán)和腸道微循環(huán)結(jié)構(gòu)上及數(shù)據(jù)分析間均存在實質(zhì)性差異，故而舌下微循環(huán)的改變并不一定能完全反映腸道微循環(huán)的改變[7-8]。本實驗試圖獲得實時內(nèi)毒素休克下腸絨毛與舌下微循環(huán)變化的圖像及參數(shù)，為SDF成像技術(shù)用于膿毒癥休克時床旁器官微循環(huán)功能監(jiān)測、療效評估奠定前期研究基礎(chǔ)。

材 料 和 方 法

1 材料

1.1 實驗動物 新西蘭大白兔60只，體重2～2.5 kg，雌雄不拘，母兔未孕，產(chǎn)地重慶，許可證號為SCXK-(軍)2012-0003。

1.2 主要試劑及儀器 細(xì)菌脂多糖(lipopolysaccha-ride，LPS)購于Sigma。LH-SDF-1型側(cè)流暗場成像觀測儀、支架、X-Y工作臺、獨立極化光源及外置光源、微循環(huán)分析工作站中文版(徐州利華電子科技發(fā)展有限公司)；PM-9000監(jiān)護(hù)儀(上海杰韋弗醫(yī)療器械有限公司)；BL-420F生物機(jī)能實驗系統(tǒng)(成都泰盟軟件有限公司)。

2 方法

2.1 麻醉與術(shù)前準(zhǔn)備 手術(shù)前均被飼養(yǎng)在環(huán)境溫度為21 ℃的飼養(yǎng)籠內(nèi)，自由飲水進(jìn)食。術(shù)前禁食、不禁水過夜。腹腔內(nèi)注入戊巴比妥30 mg/kg誘導(dǎo)麻醉。剔除標(biāo)準(zhǔn)：不適應(yīng)飼養(yǎng)條件，術(shù)前、術(shù)中產(chǎn)生強(qiáng)烈應(yīng)激反應(yīng);建模時血壓下降超出標(biāo)準(zhǔn)或因休克死亡;復(fù)蘇后血壓不達(dá)標(biāo)。

2.2 實驗分組 實驗開始前將60只兔隨機(jī)分為絨毛組及舌下組，每組30只。

2.3 手術(shù)步驟 于股動脈內(nèi)置入24 G聚乙烯導(dǎo)管用于連續(xù)性有創(chuàng)動脈監(jiān)測。股靜脈內(nèi)置入24 G聚乙烯導(dǎo)管用于復(fù)蘇治療通道。為排除呼吸道風(fēng)險，行氣管切開，并置入14 G氣切導(dǎo)管開放氣道。經(jīng)腹正中線剖腹，根據(jù)大白兔回腸末端特有的“圓小囊”結(jié)構(gòu)確定回腸后，暴露回腸近端5 cm至遠(yuǎn)端4 cm段至體外，小心處理腸系膜，充分游離外置回腸段，并小心放置在可調(diào)節(jié)的小塑料板上以避免呼吸運動所產(chǎn)生的偽影。實驗中除在SDF成像取圖時，均間斷給予以37 ℃溫鹽水飽和藥棉拭子輕蘸腸管表面潤濕以減少脫水。術(shù)中維持肛溫及有創(chuàng)動脈血壓穩(wěn)定。

2.4 建立內(nèi)毒素休克模型 2組均行體外回腸造口成功后經(jīng)股靜脈注射LPS 2 mg/kg，建立內(nèi)毒素休克模型，在注入LPS后15 min內(nèi)，以較注藥前平均動脈壓(mean arterial pressure, MAP)下降30%～45%為建模成功的標(biāo)準(zhǔn)。

2.5 液體復(fù)蘇 建模成功后以乳酸林格氏液按復(fù)蘇劑量及目標(biāo)血壓進(jìn)行液體復(fù)蘇，最終維持MAP在目標(biāo)水平(80 mmHg)。若給予規(guī)定劑量乳酸林格氏液液復(fù)蘇后血壓仍不能達(dá)標(biāo)者，則予以適量去甲腎上腺素(0.5～1 μg·kg-1·min-1)維持至目標(biāo)血壓。實驗過程絨毛組7只，舌下組8只實驗兔，共計15只動物需要持續(xù)靜脈泵入去甲腎上腺素協(xié)助維持血壓至目標(biāo)血壓水平。

2.6 SDF成像技術(shù)觀察微循環(huán) 回腸造口術(shù)成功后連同專門制作的兔臺可靠放置在X-Y工作臺上，保證SDF設(shè)備放置合理、穩(wěn)定，連接光源，電腦，啟動微循環(huán)工作站。分別采集2組動物休克前、休克時以及復(fù)蘇過程中的SDF圖像及視頻片段、收集數(shù)據(jù)并記錄時間。術(shù)前、術(shù)中盡量減少和/或排除可能影響腸道微循環(huán)的因素。

2.7 各定量及半定量參數(shù)的記錄與測定 參照2014年荷蘭圓桌會議推薦的小腸絨毛微循環(huán)參數(shù)評價系統(tǒng)[9]與2007年荷蘭圓桌會議推薦的舌下微循環(huán)參數(shù)系統(tǒng)[10]分別記錄小腸絨毛與舌下微循環(huán)變化，利用中國徐州利華電子科技發(fā)展有限公司研發(fā)的微循環(huán)分析工作站(中文版)聯(lián)合進(jìn)行同步圖像及視頻幀分析，整理小腸絨毛及舌下微循環(huán)定量參數(shù)。

3 統(tǒng)計學(xué)處理

采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析，正態(tài)分布資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示，重復(fù)測量資料采用重復(fù)測量方差分析，以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

結(jié) 果

1 小腸灌注絨毛比例(proportion of perfused villi，PPVi)與絨毛微血管血流指數(shù)(microvascular flow index，MFI)的變化

休克后小腸絨毛的PPVi和MFI分別較休克前顯著降低(P<0.01)；液體復(fù)蘇后的PPVi和MFI則較休克后增加(P<0.01)，但均未恢復(fù)至休克前水平,見表1。

表1 小腸灌注絨毛比例及絨毛微血管血流指數(shù)的變化

Table 1.The changes of proportion of perfused villi (PPVi) and microvascular flow index (MFI) of villi in the small intestine villus (Mean±SD.n=30)

GroupPPViMFIBeforeshock0.43±0.052.92±0.12Aftershock0.13±0.03**1.05±0.03**Afterfluidresuscitation0.38±0.05**#1.97±0.11**#

**P<0.01vsbefore shock;#P<0.05vsafter shock.

2 舌下微循環(huán)總的血管密度(total vessel density，TVD)、灌注血管密度(perfused vessel density，PVD)及灌注血管比例(proportion of perfused vessels，PPVe)的變化

休克后舌下微循環(huán)的TVD、PVD及PPVe較休克前均明顯下降，差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)；液體復(fù)蘇后的TVD、PVD及PPVe則均較休克后增加(P<0.01)，但與休克前比較差異仍有統(tǒng)計學(xué)顯著性(P<0.05)，見表2。

表2 舌下微循環(huán)TVD、PVD和PPVe的變化

Table 2.The changes of TVD, PVD and PPVe in the sublingual microcirculation (Mean±SD.n=30)

GroupTVD(vessels/mm2)PVD(vessels/mm2)PPVe(%)Beforeshock17.76±3.3412.78±3.0576.67±3.65Aftershock11.12±1.02*6.34±1.55*43.24±1.86*Afterfluidresuscitation16.74±2.09*#12.04±2.75*#68.13±3.13*#

*P<0.05vsbefore shock;#P<0.05vsafter shock.

3 小腸絨毛MFI與舌下微循環(huán)MFI變化程度的比較

休克后小腸絨毛MFI和舌下MFI較休克前均有顯著下降(P<0.01)。經(jīng)液體復(fù)蘇至目標(biāo)血壓后，小腸絨毛MFI與舌下微循環(huán)MFI較休克后增加(P<0.05)，但均未恢復(fù)至休克前水平。休克后絨毛微循環(huán)MFI的變化程度較舌下微循環(huán)MFI的變化程度大，但液體復(fù)蘇后，絨毛微循環(huán)MFI的變化程度較舌下微循環(huán)MFI的變化程度小，見表3。

表3 小腸絨毛MFI及舌下MFI的比較

Table 3.Comparison of MFI between small intestine villus and sublingual microcirculation (Mean±SD.n=30)

GroupMFIofsmallintestinevilliMFIofsublingualmicrocirculationBeforetheshock2.92±0.142.99±0.12Aftertheshock1.05±0.08*2.16±0.14*Afterfluidresuscitation1.97±0.11*#2.76±0.22*#

*P<0.05vsbefore shock;#P<0.05vsafter shock.

4 小腸絨毛和舌下微循環(huán)隨休克進(jìn)展及液體復(fù)蘇過程的變化

休克尚未發(fā)生前，小腸絨毛微循環(huán)灌注血管充盈良好，小腸絨毛及舌下微循環(huán)內(nèi)的微血管網(wǎng)內(nèi)紅細(xì)胞流動狀態(tài)清晰可見，小腸絨毛結(jié)構(gòu)完整無碎裂。休克發(fā)生后，隨MAP下降，小腸絨毛與舌下微循環(huán)灌注血管管徑變細(xì)，血流速度逐漸減慢、間歇停止甚至出現(xiàn)血液完全停止流動，灌注微血管數(shù)逐漸減少甚至消失。小腸絨毛腫脹程度迅速進(jìn)展并繼之出現(xiàn)絨毛頂端碎裂且碎裂程度逐漸加重，最終絨毛結(jié)構(gòu)完整性遭到完全破壞。經(jīng)液體復(fù)蘇后，小腸絨毛及舌下微循環(huán)灌注較休克后改善，但舌下微循環(huán)灌注恢復(fù)優(yōu)于同期小腸絨毛，但部分區(qū)域微血管灌注仍不均衡,小腸絨毛結(jié)構(gòu)無恢復(fù)，見圖1。

討 論

微循環(huán)是指微動脈和微靜脈之間的血液循環(huán)，基本功能是進(jìn)行新陳代謝及物質(zhì)的交換[7]。它是直徑(diameter,D)小于100 μm脈管的總和，根據(jù)直徑不同分成小微血管(D<20 μm)、中微血管(20 μm≤D<50 μm)和大微血管(50 μm≤D<100 μm)。一個完善的微循環(huán)系統(tǒng)保障了全身器官的灌注。膿毒癥時的病理生理改變是以微循環(huán)障礙為主的全身炎癥反應(yīng)。休克發(fā)生時，重要器官微循環(huán)血流灌注減少，引起缺血、缺氧，使微循環(huán)內(nèi)皮細(xì)胞腫脹，微血管管壁通透性升高，組織水腫，氧攝取障礙逐漸加重，嚴(yán)重影響細(xì)胞的能量代謝，導(dǎo)致細(xì)胞功能障礙。因此，膿毒癥本質(zhì)上也是一種微循環(huán)疾病[11]。

Figure 1.The changes of small intestine villus and sublingual microcirculation perfusion in the rabbits during endotoxic shock observed by SDF.

圖1 小腸絨毛微循環(huán)及舌下微循環(huán)在休克不同時期的變化

SDF成像數(shù)據(jù)分析為定量、半定量分析，圖像處理軟件進(jìn)行半自主化血管識別以形成在活體組織拍攝基礎(chǔ)上更為清晰的血管圖像。參照2014年荷蘭圓桌會議推薦的小腸絨毛微循環(huán)參數(shù)評價系統(tǒng)[9]與2007年荷蘭圓桌會議推薦的舌下微循環(huán)參數(shù)系統(tǒng)[10]，要求每個觀測視野內(nèi)必須包括3～10個絨毛便于分析，每個單個的、獨立的絨毛微循環(huán)為一個分析單元，分析時盡量計數(shù)每個單元內(nèi)的微血管數(shù)、每個視野中絨毛微血管平均數(shù)，其中重點關(guān)注視野內(nèi)每條微血管內(nèi)的血流狀態(tài)即絨毛微血管血流指數(shù)：正常為連續(xù)流動狀態(tài)，計3分；低灌注為緩慢或間歇流動狀態(tài)，計2分；無流動狀態(tài)，計1分，據(jù)此量化視野內(nèi)所有絨毛的平均MFI。灌注絨毛比例也可根據(jù)視野內(nèi)正常流量(MFI=3)的絨毛數(shù)量與視野內(nèi)可供分析的總的絨毛數(shù)量的比值×100%而獲得；絨毛邊界量化評分：邊界完整者計2分；邊界破壞<50%者計1分；邊界破壞>50%者計0分。舌下MFI與絨毛血流狀態(tài)量化方法相同。但因舌下微循環(huán)的圖像呈現(xiàn)的是一個平面，而反映絨毛微循環(huán)的圖像卻是一個三維立體呈現(xiàn)，基于這樣的差異，所以用于舌下微循環(huán)測量中的總的血管密度、灌注血管密度等指標(biāo)則不推薦應(yīng)用于腸道絨毛微循環(huán)的監(jiān)測中。

本實驗通過建立內(nèi)毒素休克模型，獲得了活體微循環(huán)觀測窗并利用SDF成像技術(shù)成功采集到高質(zhì)量小腸絨毛及舌下微循環(huán)灌注圖像及視頻片段，觀察記錄到休克前、休克達(dá)標(biāo)時及液體復(fù)蘇至目標(biāo)血壓后的小腸絨毛及舌下微循環(huán)灌注情況，應(yīng)用特定的定量、半定量及定性參數(shù)評價系統(tǒng)[9-10]，比較了液體復(fù)蘇前后對腸道微循環(huán)與舌下微循環(huán)灌注變化的異同。結(jié)果表明：休克尚未發(fā)生前，觀測到小腸絨毛的微循環(huán)灌注血管充盈良好，血流速度快，小腸絨毛及舌下微循環(huán)內(nèi)的微血管網(wǎng)內(nèi)紅細(xì)胞流動狀況清晰可見。注入內(nèi)毒素后，隨著MAP下降，休克進(jìn)展，小腸絨毛灌注血管管徑變細(xì)，血流速度逐漸減慢、間歇停止甚至出現(xiàn)血液停止流動，灌注微血管數(shù)逐漸減少甚至消失殆盡，PPVi迅速下降，小腸絨毛微循環(huán)灌注銳減。同樣的變化在舌下微循環(huán)中亦能觀察到。這與之前的一些研究膿毒癥及膿毒癥休克狀態(tài)下微循環(huán)改變的動物實驗或臨床研究的相關(guān)發(fā)現(xiàn)一致，例如：灌注血管密度的減少，血液流動狀態(tài)的改變(緩慢、間歇甚至停止流動)等[12-21]。另一方面從形態(tài)上觀察，休克未發(fā)生前，小腸絨毛結(jié)構(gòu)完整無碎裂。隨休克進(jìn)展，絨毛灌注微血管數(shù)明顯減少，小腸絨毛腫脹程度迅速進(jìn)展并繼之出現(xiàn)絨毛頂端碎裂且碎裂程度逐漸加重，最終絨毛結(jié)構(gòu)完整性遭到完全破壞。絨毛碎裂嚴(yán)重程度與MAP降低程度相關(guān)。

休克發(fā)生后，上述由灌注下降導(dǎo)致絨毛及舌下微循環(huán)內(nèi)各種變化的原因可能與小腸與口腔頜面頸部的血液供應(yīng)的解剖學(xué)構(gòu)筑特點的不同、休克發(fā)生后對重要器官血流的2次分配以及腸絨毛與舌下微血管本身的異質(zhì)性3種因素有關(guān)?？谇活M面頸部擁有充足的血液供應(yīng)，而回腸的血液供應(yīng)則主要來源為腸系膜上動脈，吻合血管網(wǎng)相對較少且需供應(yīng)的器官組織較多。因此，舌及舌下與小腸血液供應(yīng)的解剖學(xué)構(gòu)筑特點的不同可能是造成兩者微循環(huán)灌注變化不同的一個重要因素。其次，休克早期，由于有效循環(huán)血量的減少，動脈血壓的降低，導(dǎo)致一系列壓力、體液調(diào)節(jié)機(jī)制發(fā)生，選擇性地收縮外周和內(nèi)臟血管使循環(huán)血量重新分配，以達(dá)到保證心、腦等重要器官的有效灌注的目的。休克發(fā)生時，胃腸道、皮膚及骨骼肌等部位的血管首先收縮，尤以腸系膜上動脈阻力明顯增高[22]，血供顯著減少，因此成為休克后兩者微循環(huán)灌注變化不同的另一個重要因素。再次，腸絨毛微血管呈彎曲的線圈狀，其直徑在10 μm以下，尤其在血管彎曲的襻頂部分，血流速度較襻直部分更慢，而舌下微血管直而長且血管直徑普遍較絨毛微血管更大，當(dāng)相同的病理狀態(tài)發(fā)生后，腸絨毛微血管的自身調(diào)節(jié)能力較舌下微血管更弱，更易受灌注血流減少的影響。這也可能是說明在休克早期，腸道功能會因灌注的改變而較早發(fā)生功能損傷的原因。

實驗中亦觀察到液體復(fù)蘇后絨毛微循環(huán)內(nèi)灌注上升的變化低于舌下微循環(huán)。目前已證實膿毒癥性休克時，因血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷，多糖包被暴露，微血栓形成、毛細(xì)血管滲漏、白細(xì)胞滾動和紅細(xì)胞疊連，引起微循環(huán)血流異常，而內(nèi)皮細(xì)胞的調(diào)節(jié)能力在此過程中起著核心作用。液體復(fù)蘇后腸絨毛及舌下微循環(huán)灌注恢復(fù)程度不同可能與休克時對腸絨毛微循環(huán)功能的影響及打擊更大以及絨毛微血管的自身調(diào)節(jié)能力較舌下微血管更弱等原因有關(guān)。

本實驗著眼于觀察分析活體動物內(nèi)毒素休克時及液體復(fù)蘇至不同目標(biāo)血壓后腸道絨毛及舌下微血管灌注的實時變化。研究表明，即使在相同的病理生理狀態(tài)下，不同器官組織之間微循環(huán)功能狀態(tài)可能存在差異，其變化特點仍需大量實驗研究揭示。

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(責(zé)任編輯： 陳妙玲， 羅 森)

Changes of small intestine villus and sublingual microcirculation in rabbits during endotoxic shock observed by sidestream dark-field imaging

GAO Fei, FU Xiao-yun, QIAN Ming-jiang, ZHANG Yu, LI Guang-su, HU Jie

(DepartmentofCriticalCareMedicine,TheFirstAfiliatedHospitalofZunyiMedicalCollege,Zunyi563003,China.E-mail: 422318085@qq.com)

AIM: To investigate the changes of small intestine villus and sublingual microcirculation perfusion in the rabbits during endotoxic shock by sidestream dark-field imaging (SDF) after resuscitation to a mean arterial pressure (MAP) level.METHODS: New Zealand white rabbits (n=60) were randomly divided into 2 groups (group of villus and group of sublingua). The fistula operation of ileum was performed. Lipopolysaccharide was injected to establish endotoxic shock model, and fluid resuscitation (lactated Ringer’s solution, 30 mL·kg-1·h-1) was given to maitain the MAP of the animals to 80 mmHg. Continuous norepinephrine was intravenously injected at 0.5～1 μg·kg-1·min-1only if fluid therapy did not maintain the MAP level. The changes of microcirculatory perfusion indexes in small intestine villus and sublingual tissues such as vessels per villus (VV), microvascular flow index (MFI), proportion of perfused villi (PPVi), villus border score, villus vessel score, total vessel density (TVD), perfused vessel density (PVD) and proportion of perfused vessels (PPVe) were continuously observed and recorded by SDF before shock, during shock and after fluid resuscitation. RESULTS: MFI and PPVi in small intestine villus, and MFI, PPVe, TVD and PVD in sublingual tissues were significantly decreased after shock (P<0.01). Compared with MFI in sublingual microcirculation, MFI in villus was significantly decreased (P<0.01). MFI and PPVi in small intestine villus, and MFI, PPVe, TVD and PVD in sublingual tissues were improved after recovered to the target MAP by fluid resuscitation (P<0.05). However, MFI in small intestine villus was significantly lower than that in sublingual tissues after fluid resuscitation (P<0.01).CONCLUSION: The difference between small intestine villus and sublingual microcirculation perfusion during endotoxic shock is observed. The descent degree of microcirculation perfusion in small intestine villus is larger than that in sublingual tissues after shock, and the recovery degree of small intestine villus microcirculation is lower than that of sublingual microcirculation afer fluid resuscitation.

Sidestream dark-field imaging; Microcirculation; Endotoxic shock; Fluid resuscitation

1000- 4718(2017)04- 0764- 05

2016- 10- 14

2016- 12- 29

國家自然科學(xué)基金資助項目(No. 81560308)；貴州省科學(xué)技術(shù)基金資助項目(黔科合J字[2010]2180號)

R363; R515.3

A

10.3969/j.issn.1000- 4718.2017.04.032

△通訊作者 Tel: 0851-28608514; E-mail: 422318085@qq.com