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    miR-29對(duì)GnRH基因啟動(dòng)子區(qū)特定位點(diǎn)甲基化的影響研究

    2020-12-23 06:37:06李曉寧陳佳賢肖君華周宇荀
    生物學(xué)雜志 2020年6期
    關(guān)鍵詞:區(qū)域

    王 欣, 李曉寧, 陳佳賢, 陳 貞, 肖君華, 李 凱, 周宇荀

    (東華大學(xué) 生物科學(xué)與技術(shù)研究所, 上海 201620)

    人類(lèi)和小鼠的miR-29家族由miR-29a、miR-29b-1、miR-29b-2和miR-29c組成[1]。研究[2]發(fā)現(xiàn),miR-29家族在神經(jīng)元分化、突觸生長(zhǎng)及記憶的形成等相關(guān)生理過(guò)程中發(fā)揮了重要的生物學(xué)功能。

    DNA甲基化是一種重要的表觀遺傳修飾方式,是基因組DNA在DNA甲基化轉(zhuǎn)移酶的作用下使CpG二核苷酸5′端的胞嘧啶(C)轉(zhuǎn)化為5′端甲基胞嘧啶(mC)的過(guò)程[3]。基因啟動(dòng)子區(qū)域CpG島的甲基化是抑制基因表達(dá)的重要途徑。與DNA甲基化密切相關(guān)的基因有以下兩類(lèi):DNA甲基轉(zhuǎn)移酶基因DNMT3A/B和DNA羥甲基化酶基因TET1/2/3,其中DNMT3A/B主要介導(dǎo)CpG位點(diǎn)發(fā)生甲基化[4],而TET蛋白可使5-甲基胞嘧啶(5-mC)羥化生成5-羥甲基胞嘧啶(5-hmC),啟動(dòng)DNA去甲基化過(guò)程[5]。已有研究[6]表明,DNMT3A/B和TET1/2/3均為miR-29的靶基因,Takada等[7]研究發(fā)現(xiàn)miR-29b可通過(guò)靶向Dnmt3a/b進(jìn)而調(diào)控小鼠原始生殖細(xì)胞PGCs中基因組DNA的甲基化。Zhang等[8]發(fā)現(xiàn)miR-29可直接靶向Tet1/2/3的3'UTR,實(shí)現(xiàn)調(diào)控5-mC和5-hmC的動(dòng)態(tài)轉(zhuǎn)化,從而調(diào)控胚胎發(fā)育過(guò)程中的表觀遺傳修飾。

    促性腺激素釋放激素(GnRH)是由下丘腦分泌的一種十肽激素,是參與下丘腦-垂體-性腺軸調(diào)控的關(guān)鍵激素[9-10]。Kim等[11]將熒光素酶報(bào)告基因置于GnRH啟動(dòng)子下游構(gòu)建轉(zhuǎn)基因小鼠,發(fā)現(xiàn)攜帶轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)到-1 005 bp的啟動(dòng)子區(qū)域的小鼠卵巢中熒光素酶活性最高。Kurian等[12]則在研究恒河猴GnRH神經(jīng)元發(fā)育過(guò)程時(shí)發(fā)現(xiàn),包括GnRH基因在內(nèi)的很多基因都存在明顯的CpG島低甲基化現(xiàn)象。

    實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn),在小鼠下丘腦來(lái)源的神經(jīng)元的GT1-7細(xì)胞中敲除miR-29可使GnRH的表達(dá)量提高2倍左右[13],而miR-29通過(guò)靶向Dnmt3a/b和Tet1/2/3影響GnRH啟動(dòng)子區(qū)域的甲基化水平是其參與調(diào)控GnRH表達(dá)的可能機(jī)制之一。為了解該調(diào)控機(jī)制是否存在,選取GnRH啟動(dòng)子上游-1005 ~ +1區(qū)域作為目的區(qū)段,利用二代測(cè)序技術(shù)檢測(cè)GnRH啟動(dòng)子區(qū)域的7個(gè)CpG位點(diǎn)甲基化程度,并利用CRISPR-dCas9技術(shù)在甲基化水平差異明顯的位點(diǎn)CpG6分別富集Dnmt3a和Tet1酶,研究與miR-29相關(guān)的這兩種酶對(duì)該CpG6位點(diǎn)和其他CpG位點(diǎn)甲基化程度的影響,以及該影響與GnRH表達(dá)水平的相關(guān)性。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 供試材料

    CRISPR-dCas9載體、去除Cas9蛋白的42230-EGFP載體、鼠源GT1-7及miR-29敲除GT1-7細(xì)胞、Hepa1c1c-7細(xì)胞均由本實(shí)驗(yàn)室保存提供。

    1.1.2 主要試劑與儀器

    DMEM高糖培養(yǎng)基、胰酶、PBS(上海元象生物科技有限公司);胎牛血清FBS、Opti-MEM培養(yǎng)基(Gibco,美國(guó));LipofectamineTM3000(Invitrogen,美國(guó));AgeI-HF、BbSI核酸內(nèi)切酶(New England Biolabs,美國(guó));DNA重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化試劑盒(北京天根生化科技有限公司);動(dòng)物基因組DNA快速抽提試劑盒(上海生工生物有限公司);逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Thermo Scientific,美國(guó));一步定向克隆試劑盒、Novostart?SYBR qPCR SuperMix Plus(近岸蛋白質(zhì)科技有限公司);MPXTaqDNA聚合酶(蘇州新海生物股份有限公司);PCR引物由蘇州泓訊生物科技有限公司合成。

    NanoDrop微量紫外分光光度計(jì)(Thermo Scientific,美國(guó));PCR擴(kuò)增儀(BIO-RAD,美國(guó));倒置相差熒顯微鏡(OLYMPUS,日本);7500型ABI Real-Time PCR System(Applied Biosystems Inc,美國(guó));Partec CyFlow?Space流式細(xì)胞儀(Partec,德國(guó))。

    1.2 方法

    1.2.1 基因組DNA提取及重亞硫酸鹽修飾

    按照基因組DNA抽提說(shuō)明書(shū)提取細(xì)胞DNA,用NanoDrop紫外分光光度計(jì)測(cè)定濃度后保存至-20 ℃。根據(jù)重亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化試劑盒說(shuō)明書(shū),對(duì)已獲取的每個(gè)基因組DNA樣本各取1 μg進(jìn)行轉(zhuǎn)化處理,轉(zhuǎn)化程序:95 ℃ 10 min,64 ℃ 60 min。

    1.2.2 BSP法擴(kuò)增GnRH啟動(dòng)子目的區(qū)段

    利用Methyl Primer軟件和Oligo 7軟件在線(xiàn)設(shè)計(jì)BSP引物,分成5個(gè)區(qū)段(M1、M2、M3、M4、M5)PCR擴(kuò)增GnRH基因啟動(dòng)子-1005~+1的7個(gè)CpG位點(diǎn)。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性 15 min;98 ℃ 變性15 s,55 ℃ 退火1 min,72 ℃ 延伸30 s,共40個(gè)循環(huán);72 ℃ 再延伸10 min。擴(kuò)增區(qū)段詳見(jiàn)圖1,BSP引物序列見(jiàn)表1。

    圖1 BSP法擴(kuò)增GnRH啟動(dòng)子目的區(qū)段

    表1 BSP引物

    1.2.3 CRISPR-dCas9-Dnmt3a/Tet1過(guò)表達(dá)載體的構(gòu)建

    利用NCBI網(wǎng)站找到鼠源Dnmt3a的編碼區(qū)序列(CDS)并設(shè)計(jì)含有同源臂的引物序列,Trizol法提取小鼠GT1-7細(xì)胞RNA,經(jīng)逆轉(zhuǎn)錄得到cDNA后,PCR獲得含有同源臂的Dnmt3a的CDS序列,利用同源重組的方法構(gòu)建重組載體CRISPR-dCas9-Dnmt3a(dCas9-Dnmt3a)。同樣獲取Tet1的催化結(jié)構(gòu)域序列(CD)構(gòu)建Tet1過(guò)表達(dá)載體CRISPR-dCas9-Tet1(dCas9-Tet1),重組載體示意圖及引物序列見(jiàn)圖2和表2。載體送上海生工生物有限公司測(cè)序鑒定后使用。

    圖2 CRISPR-dCas9-Dnmt3a(a)/Tet1(b)過(guò)表達(dá)載體的構(gòu)建

    表2 同源重組PCR引物序列

    1.2.4 42230-sgRNA-EGFP載體的構(gòu)建

    針對(duì)GnRH啟動(dòng)子區(qū)的CpG6位點(diǎn)和CpG2位點(diǎn)分別設(shè)計(jì)sgRNA(sgRNA-CpG6、sgRNA-CpG2),針對(duì)Sp1基因的sgRNA-Sp1用作實(shí)驗(yàn)對(duì)照,將sgRNA構(gòu)建到42230-EGFP載體上獲得重組載體,sgRNA設(shè)計(jì)及引物序列詳情見(jiàn)圖3和表3。載體送上海生工生物有限公司測(cè)序鑒定后使用。

    sgRNA-Sp1由本實(shí)驗(yàn)室保存提供

    1.2.5 CRISPR-dCas9-Dnmt3a/Tet1載體和42230-sgRNA-EGFP載體的共轉(zhuǎn)染

    按照Lipo3000轉(zhuǎn)染試劑說(shuō)明書(shū)將成功構(gòu)建好的CRISPR-dCas9-Dnmt3a/Tet1質(zhì)粒和42230-sgRNA-EGFP質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染至6孔板培養(yǎng)的miR-29KO-GT1-7和GT1-7細(xì)胞中。轉(zhuǎn)染方案如下:每孔轉(zhuǎn)染質(zhì)??偭? μg,miR-29KO-GT1-7組(實(shí)驗(yàn)組共4個(gè)):dCas9-Dnmt3aonly;dCas9-Dnmt3a+sgRNA-Sp1;dCas9-Dnmt3a+sgRNA-CpG2;dCas9-Dnmt3a+sgRNA-CpG6;miR-29KO-GT1-7對(duì)照組:未經(jīng)處理的野生型miR-29KO-GT1-7細(xì)胞。GT1-7組(共4個(gè)實(shí)驗(yàn)組):dCas9-Tet1 only;dCas9-Tet1+sgRNA-Sp1;dCas9-Tet1+sgRNA-CpG2;dCas9-Tet1+sgRNA-CpG6;GT1-7對(duì)照組:未經(jīng)處理的野生型GT1-7細(xì)胞。各組培養(yǎng)24 h后觀察綠色熒光,48 h后收集細(xì)胞用于流式分選。

    1.2.6 流式細(xì)胞分選技術(shù)富集陽(yáng)性細(xì)胞

    將6孔板中培養(yǎng)的各組細(xì)胞經(jīng)過(guò)胰酶消化后用500 μL培養(yǎng)基重懸,利用Sysmex CyFlow流式細(xì)胞儀上機(jī)分選,分選得到的各組陽(yáng)性熒光細(xì)胞一半細(xì)胞量用于二代測(cè)序檢測(cè)位點(diǎn)甲基化狀態(tài),另一半則用于實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)GnRH表達(dá)變化。

    1.2.7 二代測(cè)序數(shù)據(jù)分析

    為確定每個(gè)CpG位點(diǎn)的甲基化程度,將測(cè)序平臺(tái)收集的亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化后DNA測(cè)序讀段與參考區(qū)段原始序列比對(duì),每個(gè)位點(diǎn)C的總數(shù)(甲基化C)和T的總數(shù)(未發(fā)生甲基化C)的比例則反映各個(gè)CpG位點(diǎn)的甲基化水平(%),即methylation ration of each CpG site = C/(C+T)。

    1.2.8 逆轉(zhuǎn)錄和實(shí)時(shí)熒光定量PCR

    Trizol法提取實(shí)驗(yàn)細(xì)胞總RNA,每組取1 μg經(jīng)DNA酶處理的RNA,用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄成cDNA產(chǎn)物。cDNA稀釋5倍后用作實(shí)時(shí)熒光定量PCR模板,利用ABI7500熒光定量PCR儀進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè),結(jié)果采用2-ΔΔCt值分析基因相對(duì)表達(dá)量。

    1.2.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法與作圖

    實(shí)驗(yàn)中關(guān)于基因表達(dá)量的檢測(cè)均重復(fù)3次以上,數(shù)據(jù)使用GraphPad Prism 7.0軟件進(jìn)行結(jié)果分析和繪圖,各組之間比較采用t-test,其中P<0.05(*)表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 miR-29敲除對(duì)GnRH、Dnmt3a及Tet1基因表達(dá)量的影響

    GnRH在GT1-7、miR-29KO-GT1-7、Hepa1c1c-7細(xì)胞中的表達(dá)差異見(jiàn)圖4(a)。其中,在Hepa1c1c-7中,GnRH表達(dá)量過(guò)低(P<0.001),表明該基因的表達(dá)具有組織特異性,miR-29KO-GT1-7細(xì)胞中GnRH表達(dá)量較GT1-7中表達(dá)顯著上升(P<0.05)。圖4(b)中,miR-29KO-GT1-7細(xì)胞中Dnmt3a、Tet1的表達(dá)相比于GT1-7細(xì)胞顯著增加(Dnmt3a:P<0.001;Tet1:P<0.01)。

    * P<0.05;** P<0.01;*** P<0.001

    2.2 二代測(cè)序數(shù)據(jù)分析GT1-7、miR-29KO-GT1-7、Hepa1c1c-7細(xì)胞中GnRH啟動(dòng)子區(qū)域CpG位點(diǎn)甲基化程度

    GT1-7、miR-29KO-GT1-7、Hepa1c1c-7細(xì)胞中GnRH啟動(dòng)子目的區(qū)段的7個(gè)CpG位點(diǎn)甲基化程度詳見(jiàn)表3。結(jié)果顯示,miR-29KO-GT1-7的CpG6位點(diǎn)甲基化程度最低,為51.28%,較其他組下降約20%~40%。

    表3 GT1-7、miR-29KO-GT1-7和Hepa1c1c-7細(xì)胞中GnRH啟動(dòng)子區(qū)域甲基化結(jié)果

    2.3 二代測(cè)序檢測(cè)流式分選的miR-29KO-GT1-7及GT1-7實(shí)驗(yàn)組陽(yáng)性細(xì)胞中的GnRH啟動(dòng)子區(qū)域甲基化程度

    miR-29KO-GT1-7及GT1-7實(shí)驗(yàn)組陽(yáng)性細(xì)胞中GnRH啟動(dòng)子區(qū)域甲基化狀態(tài)詳見(jiàn)表4和表5。表4的miR-29KO-GT1-7實(shí)驗(yàn)組結(jié)果顯示,載體轉(zhuǎn)染后,各CpG位點(diǎn)都發(fā)生不同程度的改變,其中,變化最大的為dcas9-Dnmt3a+sgRNA-CpG6組的CpG6位點(diǎn),較其他組增加約10%~20%。同樣在表5的GT1-7實(shí)驗(yàn)組中,變化最大的是dCas9-Tet1+sgRNA-CpG6組的CpG6位點(diǎn),較其他組下降約10%~20%。

    2.4 實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)流式分選的miR-29KO-GT1-7及GT1-7實(shí)驗(yàn)組陽(yáng)性細(xì)胞中的GnRH表達(dá)變化

    圖5(a)所示,與對(duì)照組相比,miR-29KO-GT1-7實(shí)驗(yàn)組中GnRH的表達(dá)出現(xiàn)不同程度的變化,其中dCas9-Dnmt3a+sgRNA-CpG6組,GnRH變化最為顯著,下降約40%(P<0.01)。同樣在圖5(b)中對(duì)比發(fā)現(xiàn),GnRH表達(dá)有不同程度的上升,其中dCas9-Tet1+sgRNA-CpG6組變化較大,上升約50%(P<0.05)。

    表4 miR-29KO-GT1-7實(shí)驗(yàn)組陽(yáng)性細(xì)胞中GnRH啟動(dòng)子區(qū)域CpG位點(diǎn)的甲基化程度

    表5 GT1-7實(shí)驗(yàn)組陽(yáng)性細(xì)胞中GnRH啟動(dòng)子區(qū)域CpG位點(diǎn)的甲基化程度

    *P<0.05;** P<0.01;***P<0.001

    3 討論與結(jié)論

    本實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn),在GT1-7細(xì)胞中敲除miR-29可導(dǎo)致GnRH表達(dá)上升,轉(zhuǎn)錄激活因子Tbx21作為miR-29的靶基因,可通過(guò)直接與GnRH啟動(dòng)子區(qū)域結(jié)合和促進(jìn)轉(zhuǎn)錄激活因子Dlx1的表達(dá)間接影響GnRH的表達(dá)[13]。然而,在GT1-7細(xì)胞中過(guò)表達(dá)Tbx21并不能完全達(dá)到miR-29敲除導(dǎo)致的GnRH表達(dá)提高的程度,這提示除了Tbx21以外,miR-29可能還通過(guò)其他的靶基因影響GnRH的表達(dá),比如可能通過(guò)靶向Dnmt3a/b、Tet1/2/3等DNA甲基化修飾酶調(diào)節(jié)GnRH的表達(dá)[14]。

    DNA甲基化通常發(fā)生在富含CpG島的啟動(dòng)子區(qū)域,細(xì)胞內(nèi)基因組DNA甲基化水平由DNMT3A/B酶介導(dǎo)的甲基化和TET酶介導(dǎo)的去甲基化協(xié)同調(diào)控[15]。為了解miR-29是否能通過(guò)上述兩類(lèi)酶調(diào)控GnRH啟動(dòng)子區(qū)域CpG位點(diǎn)的甲基化程度影響GnRH的表達(dá),我們?cè)诩谆町惷黠@的CpG6位點(diǎn)附近設(shè)計(jì)sgRNA,利用CRISPR-dCas9技術(shù)特異性地在該位點(diǎn)分別富集miR-29的靶蛋白DNMT3A和Tet1后發(fā)現(xiàn),這兩種酶可引起CpG6位點(diǎn)甲基化程度顯著上升或下降,同時(shí)GnRH的表達(dá)量也同步降低(P<0.01)或增加(P<0.05)。Aleksandar等[16]利用CRISPR-dCas9技術(shù)在IL6ST和BACH2基因的多個(gè)CpG島區(qū)域富集Dnmt3a后發(fā)現(xiàn),與單個(gè)sgRNA轉(zhuǎn)染相比,多個(gè)sgRNA的共轉(zhuǎn)染會(huì)導(dǎo)致基因啟動(dòng)子區(qū)域甲基化水平顯著增加并抑制基因的表達(dá)。Choudhury等[17]同樣利用該技術(shù)在BRCA1啟動(dòng)子多個(gè)CpG島附近富集Tet1,使其啟動(dòng)子區(qū)域發(fā)生去甲基化,促進(jìn)了基因表達(dá)。我們?cè)谄渌腃pG位點(diǎn)之一進(jìn)行同樣的富集,并未觀察到GnRH表達(dá)量的明顯變化。Shimada等[18]在研究發(fā)作性睡病調(diào)控機(jī)制時(shí)發(fā)現(xiàn),CCR3基因中單個(gè)位點(diǎn)甲基化是引起該病發(fā)生的候選區(qū)域之一,這表明單個(gè)CpG位點(diǎn)甲基化的改變也可影響基因的表達(dá)。因此,推測(cè)在GnRH基因的表達(dá)調(diào)控區(qū),CpG6位點(diǎn)的甲基化狀態(tài)相對(duì)于其他位點(diǎn)而言是一個(gè)更為敏感的調(diào)控位點(diǎn)。另外,該位點(diǎn)所處序列Tm值較低,在復(fù)制過(guò)程中可能更容易發(fā)生解鏈、結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子和其他的DNA修飾酶等,更為精確的分子機(jī)制有待進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證。

    本實(shí)驗(yàn)研究表明:miR-29可能通過(guò)其靶基因Dnmt3a和Tet1影響GnRH啟動(dòng)子調(diào)控區(qū)的甲基化程度,而這也是其參與調(diào)控GnRH表達(dá)的分子機(jī)制之一;特定CpG位點(diǎn)甲基化水平的改變會(huì)顯著影響GnRH基因的表達(dá),這為后續(xù)解析表觀遺傳修飾調(diào)控性發(fā)育的精細(xì)機(jī)制提供了新的依據(jù)。

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