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    維氏氣單胞菌acrR敲除株的構(gòu)建

    2020-12-21 07:24:40張伊動唐燕瓊
    生物學(xué)雜志 2020年6期
    關(guān)鍵詞:維氏同源生物膜

    胡 康, 張伊動, 唐燕瓊, 李 宏, 馬 香, 劉 柱

    (海南大學(xué) 生命科學(xué)與藥學(xué)院 熱帶生物資源教育部重點實驗室, ???570228)

    AcrR蛋白是轉(zhuǎn)錄抑制因子TetR家族的成員,是一種負調(diào)控因子[1]。在大腸桿菌中已經(jīng)對AcrR蛋白開展了廣泛研究,其N末端形成典型的螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋結(jié)構(gòu),是其與DNA鏈的結(jié)合位點。被誘導(dǎo)時,AcrR會抑制acrAB的表達[2]。研究發(fā)現(xiàn)四環(huán)素-鎂復(fù)合物與AcrR結(jié)合能降低AcrR與DNA結(jié)合的親和力,并使多藥物外排復(fù)合物AcrAB轉(zhuǎn)錄活性增強[3]。AcrAB-TolC作為大腸桿菌中最主要的多藥外排泵,包括外膜通道蛋白TolC、周質(zhì)融合蛋白AcrA和藥物質(zhì)轉(zhuǎn)運子AcrB。最新研究表明,在植物乳桿菌中,轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子AcrR可通過調(diào)節(jié)脂肪酸合成提高乙醇耐受性,還可通過調(diào)控醛-醇脫氫酶(AdhE)控制植物乳桿菌對甘露醇和山梨醇的利用[4-5]。在假單胞菌中,AcrR可以調(diào)節(jié)鐵清除劑的合成,提高細菌在環(huán)境中的競爭力[6]。在流感嗜血桿菌中,AcrR與細菌在熱應(yīng)激反應(yīng)中對亞胺培南抗性增強相關(guān)[7]。另外AcrR突變會導(dǎo)致大腸桿菌對苯酚的抗藥性增強[8]。多藥物外排泵能外排有機溶劑、氧化劑及細菌產(chǎn)生的有害代謝物,并且能外排多種抗生素[9]。研究表明acrR基因的缺失會造成細菌致病性、運動性、耐藥性以及生物膜等表型變化,表明在細菌生長代謝中AcrR蛋白具有多重功能[10]。

    維氏氣單胞菌(Aeromonasveronii)隸屬弧菌科氣單胞菌屬,是革蘭氏陰性桿菌,其普遍存在于自然環(huán)境中[11]。作為一種新型水生動物病原菌,維氏氣單胞菌主要感染諸如錦鯉、草魚等經(jīng)濟養(yǎng)殖魚類,可導(dǎo)致其大量死亡[12]。這些年有關(guān)其感染人的病例也有逐年增多的趨勢,人食用了維氏氣單胞菌菌株污染的水產(chǎn)品、蔬菜時可引發(fā)腹瀉、敗血癥、心內(nèi)膜炎等[13]。本研究以AcrAB-TolC多藥外排泵為切入點,構(gòu)建acrR基因敲除菌株,對其生長特性及生物膜成膜特性進行初步研究,試圖解析維氏氣單胞菌的致病機制及耐藥機理。研究結(jié)果對于防治重要水產(chǎn)病害、促進水產(chǎn)經(jīng)濟發(fā)展具有重要意義。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 質(zhì)粒、菌株及引物

    自殺質(zhì)粒pRE112以及大腸桿菌WM3064菌株(Escherichiacoli,WM3064)、維氏氣單胞菌C4菌株(A.veronii, C4)均由本實驗室提供。本實驗用到的驗證及擴增引物序列信息如表1所示,由上海生物工程股份有限公司提供測序及引物合成。

    表1 本實驗使用的引物序列

    1.1.2 試劑盒、酶及藥品

    細菌基因組DNA提取試劑盒購自上海生工生物工程有限公司;2×PCR Mix、質(zhì)粒提取試劑盒及DNA/膠純化試劑盒購自南京諾唯贊生物科技有限公司;T4連接酶、T4連接酶Buffer、BstX I、KpnI-HF和SacI-HF限制性內(nèi)切酶購自NEB公司;氯霉素(Cam)、氨卞青霉素(Amp)、二氨基庚二酸(Dap)及瓊脂粉購自索萊寶科技有限公司;蛋白胨、酵母提取物及氯化鈉均購自西隴科學(xué)股份有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1acrR基因上、下游同源序列擴增

    用相應(yīng)試劑盒提取維氏氣單胞菌C4的基因組DNA,隨后以其為模板,分別用acrR F1/R1和acrR F2/R2擴增目的片段。按照基因組DNA 1 μL,2×PCR Mix 13 μL,上或下游引物各1 μL,ddH2O 10 μL的體系配制好溶液后,再進行如下PCR程序:95 ℃ 預(yù)變性 8 min;95 ℃ 變性 30 s,55 ℃ 退火 30 s,72 ℃ 延伸 60 s,25 cycles;72 ℃ 再延伸 10 min。

    1.2.2 pRE112-ΔacrR載體構(gòu)建

    首先用質(zhì)粒提取試劑盒獲得自殺質(zhì)粒pRE112,在37 ℃的培養(yǎng)箱中孵育經(jīng)KpnⅠ-HF和ScaⅠ-HF內(nèi)切酶處理過的酶切產(chǎn)物30 min,隨后用純化試劑盒回收酶切產(chǎn)物。在37 ℃的培養(yǎng)箱中孵育經(jīng)BstXⅠ內(nèi)切酶處理過的酶切產(chǎn)物30 min,再用純化試劑盒回收酶切產(chǎn)物。按以下連接體系(10 μL):pRE112載體酶切產(chǎn)物(12 ng/μL) 5.0 μL、acrR上/下游同源臂酶切產(chǎn)物(60 ng/μL)各1 μL,10×T4 Buffer 1 μL,T4連接酶1 μL,ddH2O 1 μL,將質(zhì)粒酶切產(chǎn)物與片段酶切產(chǎn)物在22 ℃下體外連接2 h。吸取1 μL上述連接產(chǎn)物電轉(zhuǎn)化到E.coliWM3064感受態(tài)細胞中,在37 ℃下于含有Dap和Cam的抗性平板中培養(yǎng),隔天挑菌驗證陽性克隆。

    1.2.3 雙親接合及acrR基因敲除菌株的篩選

    將維氏氣單胞菌C4于含Amp的LB液體培養(yǎng)基中過夜培養(yǎng),并將攜帶有pRE112-ΔacrR質(zhì)粒的大腸桿菌WM3064于含Dap和Cam的LB液體培養(yǎng)基中過夜培養(yǎng)。將過夜培養(yǎng)的菌分別轉(zhuǎn)接培養(yǎng)至OD600為0.4~0.6,將維氏氣單胞菌C4和大腸桿菌WM3064按1∶1、1∶3和1∶7的比例混合至終體積為800 μL。6 000 r/min離心3 min 后除去大部分上清液,將剩余菌液混勻后滴于含有DAP的LB平板上,30 ℃ 倒置培養(yǎng)24 h后,在平板上滴加1 mL液體LB培養(yǎng)基并用涂布棒將長出的菌落刮下,取100 mL菌液涂布于含有Cam和Amp的雙抗平板上,待菌落長出后PCR驗證接合結(jié)果。將接合成功的維氏氣單胞菌C4于含有Amp的LB液體培養(yǎng)基中過夜培養(yǎng),取100 μL涂布于含有22%蔗糖和Amp的LB固體培養(yǎng)基上30 ℃倒置培養(yǎng)16 h。菌落PCR驗證敲除菌株。

    1.2.4 生長曲線測定

    挑取野生型維氏氣單胞菌C4和ΔacrR菌株的單菌落,在含Amp的LB液體培養(yǎng)基中30 ℃,150 r/min振蕩過夜培養(yǎng),次日轉(zhuǎn)接菌液于含Amp的新鮮LB培養(yǎng)基中至終濃度OD600為0.02,每間隔1 h取樣,分別測定培養(yǎng)菌的OD600數(shù)值,然后繪制野生型維氏氣單胞菌C4和ΔacrR菌株的生長曲線。

    1.2.5 生物膜測定

    在24孔聚苯乙烯培養(yǎng)板中每孔添加1 mL含Amp的LB液體培養(yǎng)基,按OD600為0.01分別接種過夜培養(yǎng)的野生型維氏氣單胞菌C4及ΔacrR的菌液,30 ℃靜置孵育24 h;將培養(yǎng)液吸出,每孔加入1 mL無菌PBS緩沖液沖洗;再向每孔中加入1 mL甲醇處理20 min,隨后將培養(yǎng)孔中殘余的甲醇吸出;向每孔中加入1 mL 0.5%結(jié)晶紫溶液,染色10 min;吸出培養(yǎng)孔中的結(jié)晶紫染色液后,用流水把殘余的染料沖凈;隨后將培養(yǎng)板倒置在濾紙上以便除去殘余的水分,并于37 ℃烘箱中徹底烘干水分;再向每孔加入1 mL 33%醋酸溶液,在37 ℃下反應(yīng)30 min以溶解結(jié)晶紫;用酶標(biāo)儀測定培養(yǎng)孔中溶液的OD570值。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 pRE112-ΔacrR載體的構(gòu)建

    以野生型維氏氣單胞菌C4(WT)基因組DNA為模板,PCR擴增得到acrR上、下游同源臂片段。凝膠電泳結(jié)果顯示,acrR上游同源臂和下游同源臂的PCR產(chǎn)物均在300 bp左右,而且PCR產(chǎn)物條帶單一、明亮(圖1)。acrR上游同源臂長度為304 bp,acrR下游同源臂片段長度為311 bp,表明目的產(chǎn)物擴增成功。

    M: DL5000 DNA Marker; 1: acrR上游同源臂; 2: acrR下游同源臂

    將提取的pRE112質(zhì)粒以及PCR擴增得到的acrR上、下游同源臂片段分別進行酶切,然后用T4連接酶22 ℃孵育2 h,通過電轉(zhuǎn)將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入大腸桿菌WM3064感受態(tài)細胞,并涂布于氯霉素抗性板中用于篩選,次日隨機挑選單菌落,然后使用載體驗證引物pRE112F/R進行菌落PCR擴增驗證,并用空載體pRE112為模板作為陽性對照,以篩選陽性克隆。結(jié)果顯示,空載體pRE112的PCR產(chǎn)物長度約為500 bp, 驗證片段大小約為1 100 bp (圖2),說明pRE112-ΔacrR載體構(gòu)建成功。

    M: DL5000 DNA Marker; 1~6: pRE112-ΔacrR基因敲除質(zhì)粒菌落PCR產(chǎn)物; 7: 陽性對照; 8: 陰性對照

    2.2 雙親接合及ΔacrR菌株的篩選

    將上述轉(zhuǎn)入大腸桿菌WM3064中的重組載體pRE112-ΔacrR通過雙親接合實驗轉(zhuǎn)入到野生型維氏氣單胞菌中,在含Cam和Amp的雙抗平板上篩選陽性菌株,并用載體驗證引物pRE112F/R進行菌落PCR擴增驗證。結(jié)果顯示,擴增條帶大約為1 100 bp,pRE112-ΔacrR載體質(zhì)粒已經(jīng)成功接合至維氏氣單胞菌中(圖 3)。然后利用22%蔗糖壓力篩選以獲得陽性突變菌株。使用acrR-F0/R0引物進行菌落PCR,選取野生型維氏氣單胞菌C4基因組PCR產(chǎn)物為陽性對照。結(jié)果顯示,突變株菌落PCR擴增條帶明顯低于野生型維氏氣單胞菌C4的擴增條帶。挑取3個陽性突變株進行PCR擴增,回收PCR產(chǎn)物并送測序,測序結(jié)果顯示ΔacrR菌株構(gòu)建成功(圖 4)。

    M: DL5000 DNA Marker; 1~6: PCR驗證產(chǎn)物; 7: 陽性對照; 8: 陰性對照

    2.3 ΔacrR敲除對生長的影響

    為了探究acrR基因的敲除是否會影響維氏氣單胞菌的生長,分別在LB培養(yǎng)基中培養(yǎng)野生型維氏氣單胞菌C4和ΔacrR菌株,并每隔1 h對OD600值進行測定。結(jié)果顯示ΔacrR菌株同野生型菌株生長速率一致,即acrR基因的敲除不會影響維氏氣單胞菌的生長(圖5)。

    M: DL5000 DNA Marker; 1~6: 敲除株驗證PCR產(chǎn)物; 7: 陽性對照; 8: 陰性對照

    圖5 野生型維氏氣單胞菌C4及acrR敲除株生長曲線測定

    2.4 ΔacrR敲除對生物膜形成的影響

    為了探究acrR基因敲除對維氏氣單胞菌生物膜形成的影響,將在24孔板中培養(yǎng)24 h后的野生型維氏氣單胞菌C4及ΔacrR菌株的培養(yǎng)液吸出,經(jīng)PBS洗滌、甲醇固定、0.5%結(jié)晶紫染色、PBS洗滌及33%醋酸染色后,用酶標(biāo)儀測定培養(yǎng)孔中溶液的OD570值。結(jié)果顯示ΔacrR菌株測出的OD570值顯著高于野生型菌株,即敲除acrR基因后,細菌形成生物膜的能力顯著增強(圖 6)。

    圖6 野生型維氏氣單胞菌C4及acrR敲除株生物膜形成測定

    3 結(jié)論

    本研究鑒定了AcrR蛋白對于維氏氣單胞菌生長和成膜能力的影響。通過對野生型菌株及ΔacrR菌株的生長特性分析發(fā)現(xiàn),AcrR蛋白的缺失并不影響維氏氣單胞菌的生長,維氏氣單胞菌株中敲除acrR基因?qū)е戮晷纬缮锬さ哪芰︼@著增加,這一結(jié)果與醫(yī)院不動桿菌acrR基因敲除株的表型一致,暗示AcrR蛋白通過調(diào)控AcrAB外排泵而參與生物膜的形成[10]。本研究結(jié)果為抵抗生物膜形成相關(guān)的病原菌提供了新的研究思路和作用靶標(biāo)。

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