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    DMH1聯(lián)合Forskolin誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞向神經(jīng)元分化的誘導(dǎo)效果分析

    2020-12-14 00:58:53楊建東
    關(guān)鍵詞:充質(zhì)骨髓干細胞

    顧 文,楊建東

    (1.揚州大學(xué)醫(yī)學(xué)院,江蘇 揚州 225000;2.江蘇省蘇北人民醫(yī)院,江蘇 揚州 225000)

    DMH1為一種小分子化合物,常用于骨形成蛋白(bone morphogenetic protein,BMP)的抑制劑中。近幾年的文獻報道,小分子化合物DMH1可促使hiPSCs產(chǎn)生神經(jīng)元細胞[1]。Forskolin在許多細胞類型中,是一種有效的腺苷酸環(huán)化酶激活劑,相關(guān)文獻報道,脂肪源性干細胞不僅有自我喚醒的能力,而且還具有萬能性,與其它干細胞一樣,是通過bFGF結(jié)合Forskolin誘導(dǎo)產(chǎn)生神經(jīng)細胞[2]。本文旨在敘述DMH1聯(lián)合Forskolin誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞的形態(tài)變化及NSE、Nestin、SOX1的表達水平分析,給神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療措施提供新的研究方向。

    1 資料與方法

    1.1 實驗動物

    采購(一月齡)SPF級SD大鼠2只作為研究對象,每只體重為(101±13)g。

    1.2 實驗試劑

    實驗試劑采用DMEM/F12培養(yǎng)基,胎牛血清,胰酶,盤尼西林,鏈黴素A,DMH1,F(xiàn)orskolin,蛋白提煉試劑盒,SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳技術(shù)試劑盒,牛血清白蛋白(BSA),抗NSE、Nestin、SOX1及β-actin抗體,單克隆抗體(CD34、CD44、CD45、CD90、CD105)。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 骨髓間質(zhì)干細胞培養(yǎng)

    使用頸椎脫臼法快速將SD大鼠殺死,然后進行酒精徹底消毒,在凈化工作臺上實施剖解,解剖時將大腿骨與脛骨分開,使用注射器吸取DMEM/F12培養(yǎng)基液(含10%FBS)清洗大腿骨與脛骨的骨髓腔,然后收集培養(yǎng)基液來回吹打成細胞懸液。對懸液進行細胞密度測定,再次使用培養(yǎng)基液稀釋細胞,細胞密度調(diào)成1×109/L后倒入培養(yǎng)皿里將其鋪勻。然后使用胞培養(yǎng)箱進行貼壁培植細胞,溫度為37℃,CO2濃度為5%。等細胞貼壁滋長后,2 d更換50%新鮮培養(yǎng)基,3 d將其全部更換,然后用顯微鏡查看細胞狀態(tài),若細胞滋長平穩(wěn),間隔2d更換所有新鮮培養(yǎng)基液,如果貼壁滋長的細胞匯合度為80%-90%時,能夠?qū)⒓毎M行傳代,其比列為1:2。

    1.2.2 骨髓間質(zhì)干細胞鑒定

    采集生長形態(tài)很好的P3代細胞,用0.25%胰酶消化細胞,離心4℃,轉(zhuǎn)速1000 r/min離心5 min,使用磷酸緩沖鹽溶液(含1%BSA)沖洗細胞3次,計算細胞數(shù),將單克隆抗體CD34、CD44、CD45、CD90、CD105按順序加入各細胞管。并且將每個細胞管都設(shè)置一個陰性作為參照對象。然后放于避光冰上孵育,時間為45 min,再次用磷酸緩沖液沖洗細胞3次,為清除細胞上沒有結(jié)合的抗體,最后用500 μL磷酸緩沖液重新懸浮細胞,采用流式細胞儀進行骨髓間質(zhì)干細胞鑒定。

    1.3.3 DMH1與Forskolin誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞分化

    使用第3代形態(tài)良好的細胞,將密度調(diào)成5×105個/mL在培養(yǎng)皿鋪勻培養(yǎng),其匯合度達到70~80%時,開始用Forskolin(0.01 mm)預(yù)誘導(dǎo),時間為1 d,進而用DMH1(0.04 mm)誘導(dǎo),時間為3d,并采用不誘導(dǎo)細胞為參照對象。最后查看細胞狀態(tài)情況。

    1.3.4 Western Bolt檢測骨髓間充質(zhì)干細胞特異性蛋白水平

    采集培養(yǎng)過的細胞將其裂解后提煉蛋白質(zhì),采用SDS聚丙烯酰胺凝膠實施蛋白質(zhì)電泳,后轉(zhuǎn)聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,用BSA封閉,進而將一抗NSE、β-actin、SOX1及Nestin抗體攙和,4度孵育一夜,最后進行二抗室內(nèi)溫度孵育2h顯色后照相。

    1.3.5 RT-PCR分析

    采取3×106cells/mL未誘導(dǎo)及誘導(dǎo)的骨髓間充質(zhì)干細胞,通過TRIZOL法抽提核糖核酸(RNA)。以試劑盒說明進行RT—PCR分析。共30個循環(huán),采用濃度為2%的瓊脂糖凝膠電泳進行檢測,觀察凝膠成像系統(tǒng)并拍照。

    2 結(jié) 果

    2.1 誘導(dǎo)前后的細胞狀態(tài)觀察

    誘導(dǎo)前,使用顯微鏡觀察細胞,細胞狀態(tài)分開并貼壁滋長,參差不齊,形態(tài)各異,滋長狀態(tài)優(yōu)異。DMH1聯(lián)合Forskolin誘導(dǎo)第1d,細胞折射產(chǎn)生變化,并發(fā)現(xiàn)部分細胞突起。誘導(dǎo)第3d,細胞折射性顯著高于誘導(dǎo)第1天,其狀態(tài)顯著變化,并且細胞長突起,構(gòu)成網(wǎng)狀。

    2.2 Western Bolt 檢測特異性蛋白水平

    誘導(dǎo)后,檢測誘導(dǎo)細胞的NSE、Nestin、SOX1及內(nèi)參β-actin蛋白的表達情況,結(jié)果顯示,NSE、Nestin及SOX1蛋白的表達水平提高。

    2.3 RT—PCR檢測骨髓間充質(zhì)干細胞中的蛋白基因表達水平

    采用RT—PCR檢測誘導(dǎo)與未誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞中的蛋白基因表達水平情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn),NSE、Nestin、SOX1及內(nèi)參β-actin蛋白在骨髓間充質(zhì)干細胞中均有表達,而且NSE、Nestin、SOX1的表達水平明顯上升。

    3 討 論

    化學(xué)生物學(xué)是一門交叉學(xué)科,是通過活躍的小分子化合物干擾蛋白質(zhì)與分解生物,可識別生物特點與內(nèi)在規(guī)律[3]。小分子化合物可迅速誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞向神經(jīng)元分化,能夠準確把握誘導(dǎo)時間,而且將小分子的濃度調(diào)整,作用效果可反向進行。小分子化合物混合后具有穩(wěn)定性、有效性和極易量化,可重復(fù),而且成本較低,對培養(yǎng)細胞來說至關(guān)重要。隨進一步的研究顯示,小分子化合物在干細胞誘導(dǎo)中具有至關(guān)重要的作用[4]。相關(guān)研究顯示,有學(xué)者采用小分子化合物誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞的萬能性,如使用β-巰基乙醇、二甲亞砜及丁基大茴香醚等小分子化合物成功誘導(dǎo)細胞向神經(jīng)元分化[5]。而且用丙戊酸鈉(VPA)、CHIR99021、Repsox 化學(xué)雞尾酒聯(lián)合誘導(dǎo)后,向小鼠與人的神經(jīng)元分化。

    本研究采用DMH1聯(lián)合Forskolin誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞后,轉(zhuǎn)變成神經(jīng)元細胞。開始使用Forskolin預(yù)誘導(dǎo)細胞,是因該小分子化合物為一種腺苷酸環(huán)化酶激活劑,能夠調(diào)控細胞轉(zhuǎn)變成神經(jīng)元,而且Forskolin可進一步使神經(jīng)細胞軸突生長。進而用DMH1誘導(dǎo),是因DMH1為一種BMP的有效抑制劑,可阻礙BMP的路線,骨髓間充質(zhì)干細胞就不會往中胚層分化,所以,可幫助細胞產(chǎn)生神經(jīng)元。本研究結(jié)果表明,誘導(dǎo)后,細胞折射性顯著增強,其狀態(tài)顯著變化,并細胞長突起,構(gòu)成網(wǎng)狀。誘導(dǎo)后,通過Western Bolt 檢測結(jié)果顯示,特異性NSE、Nestin及SOX1蛋白的表達水平提高。并且RT—PCR檢測骨髓間充質(zhì)干細胞中的蛋白基因表達水平顯示,內(nèi)參β-actin蛋白的表達水平無明顯變化,而NSE、Nestin、SOX1的表達水平明顯上升。

    綜上所述,采用DMH1聯(lián)合Forskolin誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞后,產(chǎn)生神經(jīng)元細胞。由于DMH1、Forskolin的小分子化合物還不明確,誘導(dǎo)時存在一定的安全隱患,仍需改進DMH1、Forskolin聯(lián)合協(xié)作誘導(dǎo)的方法,如果深入探究或許對再生醫(yī)學(xué)迅速進展有幫助。

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