張 凡 孟 莉 劉蓬蓬王 旭王 銳宋 成賈天柱*
(1.遼寧中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,遼寧大連 116600;2.遼寧省中藥炮制工程技術(shù)研究中心,遼寧大連 116600)
黃柏為蕓香科植物黃皮樹(shù)Phellodendron chinenseSchneid.的干燥樹(shù)皮。其味苦,性寒,歸腎、膀胱、大腸經(jīng),具有清熱燥濕、瀉火除蒸、解毒療瘡的功效,為中醫(yī)傳統(tǒng)的清熱燥濕藥[1]。《本草綱目》 載有“黃檗性寒而沉,生用則降實(shí)火,熟用則不傷胃,酒炙則治上,鹽炙則治下,蜜炙則治中”。這是對(duì)黃柏炮制作用最精辟的論述。生黃柏具苦寒之性,清熱燥濕作用強(qiáng),酒炙緩和苦寒之性,而鹽炙則增強(qiáng)苦寒之性,又引藥下行入腎,還可增強(qiáng)滋陰降火的作用。此外在其他醫(yī)書(shū)中,針對(duì)黃柏的鹽炙也有相關(guān)的記載。黃柏經(jīng)鹽炙后可引藥下行入腎,其滋腎陰、瀉腎火、退虛熱的功效增強(qiáng),可用于陰虛發(fā)熱、夢(mèng)遺滑精、骨蒸勞熱、盜汗、咳嗽咯血等證。而目前黃柏的“鹽炙入腎”的炮制理論仍然停留在傳統(tǒng)表述之中,并無(wú)現(xiàn)代科研數(shù)據(jù)支撐。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)大鼠腎組織中對(duì)黃柏有效成分的吸收差異,對(duì)其“鹽炙入腎” 的理論進(jìn)行驗(yàn)證[2]。
黃柏中富含生物堿類及少部分檸檬苦素類成分,其中生物堿類包含小檗堿、黃柏堿、巴馬汀、藥根堿、木蘭花堿等,這些都是黃柏中具有代表性的活性成分,具有清熱、抗炎、降血壓等功效[3]。此外,除生物堿成分,黃柏還含有少量的檸檬苦素類成分,如黃柏酮和黃柏內(nèi)酯等[4]。本實(shí)驗(yàn)擬通過(guò)對(duì)黃柏生品及鹽炙品的水煎液進(jìn)行大鼠灌胃給藥后,并分別在不同時(shí)間點(diǎn)摘取其腎組織,采用液質(zhì)聯(lián)用的方法對(duì)腎組織臟器中生物堿類成分進(jìn)行含有量測(cè)定,從而分析黃柏生制品在腎組織臟器的吸收差異。
1.1 儀器 Waters ACQUITY UPLC/Xevo TQD超高效液相色譜串聯(lián)飛行質(zhì)譜儀 (美國(guó)Waters公司);METTLER AE240型分析天平(十萬(wàn)分之一,瑞士Mettler公司);FA1004B型電子天平(上海精密科學(xué)儀器有限公司);KQ-250DB型數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);TGL-16G型離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠);FSH-2可調(diào)高速電動(dòng)勻漿器(江蘇佳美儀器有限公司);XW-80A渦旋混合器 (上海青浦滬西儀器廠);Thermo Fisher Finnpipette Steppers單道連續(xù)分配移液器(芬蘭雷勃公司);HGC-12A氮吹儀(天津恒奧科技有限公司);Milli-Q純水儀(德國(guó)Millipore公司)。
1.2 試劑與藥物 黃柏堿、木蘭花堿、鹽酸藥根堿、鹽酸巴馬汀、鹽酸小檗堿、尼莫地平對(duì)照品(大連美倫生物技術(shù)有限公司,批號(hào)分別為M0107AS、M0717AS、B0613AS、S0913AS、J0918AS、M0503AS);質(zhì)譜級(jí)甲醇、乙腈、色譜級(jí)甲醇(美國(guó)Sigma公司);水為超純水,無(wú)碘鹽(大連鹽業(yè)有限公司);其他試劑均為高級(jí)分析純。
1.3 藥材 黃柏藥材采自四川省雅安市滎經(jīng)縣,經(jīng)遼寧中醫(yī)藥大學(xué)王冰教授鑒定為蕓香科植物黃皮樹(shù)Phellodendron chinenseSchneid.的干燥樹(shù)皮。
2.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 SD雄性大鼠66只,體質(zhì)量180~200 g,6~8周齡,遼寧長(zhǎng)生生物技術(shù)有限公司提供,許可證號(hào)SCXK (遼)2010-0001。在正式實(shí)驗(yàn)前,大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)一周,預(yù)飼養(yǎng)期間自由飲食飲水,室溫(22±2)℃,濕度(60±2)%。
2.2 黃柏生制炮制制備
2.2.1 生黃柏制備 取黃柏原藥材,洗凈,潤(rùn)透,切細(xì)絲,干燥,既得。
2.2.2 鹽黃柏制備 取凈制后的黃柏絲,放入適宜的容器中,加適量鹽水拌勻,悶潤(rùn)2 h,待黃柏吸進(jìn)輔料鹽水后取出。在炒制容器內(nèi)于150~160 ℃下,炒制6 min,取出,放涼,即得。每100 g黃柏加2 g鹽,30%蒸餾水[5]。
2.3 給藥水煎液制備 分別取黃柏生品和鹽炙品適量置于煎藥鍋中,先加入10倍量水浸泡30 min,而后煎煮60 min,濾過(guò);此后藥渣再加入8倍量水,再次煎煮60 min,濾過(guò)。合并2次濾液,水浴濃縮至質(zhì)量濃度為1 g/mL[6-7]。
2.4 給藥方案及樣品采集 66只大鼠隨機(jī)分成2組,分別為生黃柏組30只,鹽黃柏組30只,空白組6只。各組給藥體積為10 mL/kg,灌胃給予相應(yīng)黃柏炮制品藥液。分別于0.5、1、3、6、9 h時(shí)間點(diǎn)上,每組脫頸椎處死6只動(dòng)物,立即取出腎臟組織,生理鹽水沖洗干凈,用濾紙吸干表層水分,分裝于自封袋中,置-80 ℃冰箱中保存待測(cè)。
2.5 溶液制備
2.5.1 對(duì)照品溶液 精密稱取黃柏堿、木蘭花堿、藥根堿、巴馬汀、小檗堿對(duì)照品適量,置50 mL量瓶中,用甲醇溶解并稀釋至刻度,制備成質(zhì)量濃度分別為74.8 μg/mL的黃柏堿、63.4 μg/mL的黃柏堿、63.2 μg/mL的藥根堿、60.1 μg/mL的巴馬汀、61.2 μg/mL的小檗堿對(duì)照品貯備液,置于冰箱中4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2.5.2 內(nèi)標(biāo)溶液 精密稱取尼莫地平對(duì)照品適量,置50 mL量瓶中,用甲醇溶解并稀釋至刻度,制備成質(zhì)量濃度為5.0 μg/mL的內(nèi)標(biāo)溶液,并置于4 ℃的環(huán)境中保存?zhèn)溆谩?/p>
2.6 腎組織樣品處理 精密稱量腎組織樣品200 mg,剪碎后,加入2 mL生理鹽水,用組織勻漿機(jī)處理。之后以4 000 r/m離心,取上清組織勻漿液100 μL,加內(nèi)標(biāo)溶液10 μL,渦旋混合30 s,再加入乙腈400 μL,渦旋混合180 s,12 000 r/m離心10 min后,取上清液。將上清溶液,于35 ℃氮?dú)獯蹈?殘?jiān)尤胍译?水(1 ∶1)混合溶液100 μL復(fù)溶,渦旋混勻3 min進(jìn)行混勻,最后以12 000 r/m冷凍離心5 min,取上清液5 μL進(jìn)樣分析[8-9]。
2.7 分析條件
2.7.1 色譜條件 Waters Acquity UPLC BEH C18色譜柱(2.1 mm×50 mm,1.7 μm);流動(dòng)相0.1% 甲酸水(A)-0.1% 甲酸乙腈(B),梯度洗脫,程序見(jiàn)表1;體積流量0.3 mL/min;柱溫30 ℃。
表1 梯度洗脫程序Tab.1 Gradient elution programs
2.7.2 質(zhì)譜條件 采用ESI源;正離子MRM模式檢測(cè);離子源能量3.0 kV,采樣錐電壓50 V,離子源溫度150 ℃,脫溶劑溫度450 ℃;錐孔氣體體積流量50 L/h,脫溶劑氣體體積流量900 L/h。
2.8 分析方法確證
2.8.1 專屬性試驗(yàn) 黃柏堿、木蘭花堿、藥根堿、巴馬汀、小檗堿和內(nèi)標(biāo)物尼莫地平成分在ESI正離子電離方式下,主要生成[M+H]+離子峰,分別為m/z342.17,m/z342.18,m/z338.15,m/z352.15,m/z336.07,m/z419.21。選擇性對(duì)[M+H]+離子進(jìn)行產(chǎn)物離子全掃描質(zhì)譜分析,上述指標(biāo)性成分和內(nèi)標(biāo)物的主要碎片離子分別為m/z192.15,m/z265.16,m/z323.03,m/z336.20,m/z320.29,m/z343.17,并將這些主要碎片離子作為定量分析時(shí)監(jiān)測(cè)的產(chǎn)物離子(MRM模式),各檢測(cè)成分的母離子和產(chǎn)物離子見(jiàn)表2。
表2 MRM模式下各檢測(cè)成分和內(nèi)標(biāo)物的母離子和產(chǎn)物離子Tab.2 Optimized multiple reaction monitoring parameters for analytes and internal standard
分別取大鼠空白腎臟組織勻漿液及給藥后腎組織樣品100 μL,按“2.6” 項(xiàng)下方法操作,得到MRM色譜圖,見(jiàn)圖1。由圖可見(jiàn),黃柏給藥后指標(biāo)性成分和內(nèi)標(biāo)物成分出峰保留時(shí)間分別為黃柏堿1.02 min、木蘭花堿1.10 min、藥根堿2.42 min、巴馬汀3.69 min、小檗堿4.15 min、尼莫地平7.05 min,各組分色譜峰之間分離良好,表明組織中內(nèi)源性物質(zhì)對(duì)所測(cè)定成分無(wú)干擾[10-11]。
圖1 黃柏中生物堿及內(nèi)標(biāo)物生物樣品質(zhì)譜TIC圖Fig.1 TIC spectrum of alkaloids and internal standard biological samples in P.chinense
2.8.2 線性關(guān)系及定量下限
2.8.2.1 線性關(guān)系考察 取大鼠空白腎臟組織勻漿液100 μL,加內(nèi)標(biāo)溶液和黃柏堿、木蘭花堿、藥根堿、巴馬汀、小檗堿系列溶液,分別制備成黃柏堿組織質(zhì)量濃度分別為3.74、7.48、14.96、24.93、59.88、119.76、239.51、437.03 ng/mL;木蘭花堿組織質(zhì)量濃度分別為15.85、31.70、63.40、126.80、253.60、507.20、1 014.40、2 028.80 ng/mL;藥根堿組織質(zhì)量濃度分別為15.80、31.6、63.20、126.40、252.80、505.60、1 011.20、2 022.40 ng/mL;巴馬汀組織質(zhì)量濃度分別為15.02、30.04、60.08、120.16、240.32、480.64、961.28、1 922.56 ng/mL;小檗堿組織質(zhì)量濃度分別為15.30、30.60、61.20、122.40、244.80、489.60、979.20、1 958.4 ng/mL;內(nèi)標(biāo)尼莫地平溶液質(zhì)量濃度相當(dāng)于500 ng/mL的標(biāo)準(zhǔn)樣品,按“2.6” 項(xiàng)下方法處理,記錄色譜圖;以待測(cè)物指標(biāo)性成分質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),待測(cè)物與內(nèi)標(biāo)物的面積比為縱坐標(biāo)(Y),用加權(quán)(w=1/x2)最小二乘法進(jìn)行回歸運(yùn)算,求得直線回歸方程,結(jié)果表明各成分在各自范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。結(jié)果見(jiàn)表3。
2.8.2.2 定量下限 取大鼠空白腎臟組織勻漿液100 μL,加入對(duì)照品溶液制備成3.74 ng/mL黃柏堿、15.85 ng/mL木蘭花堿、15.80 ng/mL藥根堿、15.02 ng/mL巴馬汀、15.30 ng/mL小檗堿溶液,按“2.6” 方法操作,并根據(jù)當(dāng)日標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算每一樣本測(cè)得濃度,考察定量下限。結(jié)果見(jiàn)表3。發(fā)現(xiàn)上述各濃度對(duì)照品的準(zhǔn)確度偏差在±20% 以內(nèi),精密度RSD≤15%[12]。
表3 各成分線性關(guān)系Tab.3 Linear relationships of various constituents
2.8.3 精密度和準(zhǔn)確度試驗(yàn) 取空白腎組織勻漿樣品100 μL,按“2.8.2” 項(xiàng)下方法制備低、中、高3個(gè)濃度的質(zhì)量控制樣品,每一濃度平行分析6份,連續(xù)測(cè)定3 d,根據(jù)質(zhì)量控制樣品測(cè)定的結(jié)果計(jì)算本方法的準(zhǔn)確度與精密度,結(jié)果表明,樣品日內(nèi)、日間精密度RSD均小于15%,準(zhǔn)確度均在±15%的范圍之間,表明該方法準(zhǔn)確度與精密度良好。
2.8.4 提取回收率和和基質(zhì)效應(yīng)
2.8.4.1 提取回收率 取空白腎組織勻漿液100 μL,按 “2.8.3” 項(xiàng)下方法操作,制備低、中、高3個(gè)濃度的質(zhì)量控制樣品,每個(gè)濃度平行測(cè)定6份,記錄色譜峰,測(cè)定各組分和內(nèi)標(biāo)物的峰面積記為A。同時(shí)另取空白腎組織勻漿液100 μL,除不加內(nèi)標(biāo)物溶液外,其余按“2.6” 項(xiàng)下方法操作所得殘?jiān)尤敫鹘M分對(duì)照品溶液和內(nèi)標(biāo)物溶液,并在35 ℃氮?dú)饬鞔蹈珊?再用乙腈-水(1 ∶1)溶液復(fù)溶,渦旋充分混合,離心后取上清液進(jìn)樣分析,每個(gè)濃度平行制備6份,記錄色譜圖。測(cè)量各組分和內(nèi)標(biāo)物的峰面積記為B。以前種處理方法所得的峰面積A與后種處理方法獲得的峰面積B均值分別計(jì)算藥物的和內(nèi)標(biāo)物的提取回收率。結(jié)果見(jiàn)表4。
2.8.4.2 基質(zhì)效應(yīng) 取各組分標(biāo)準(zhǔn)溶液和內(nèi)標(biāo)物溶液,置于EP管中,35 ℃下氮?dú)饬鞔蹈珊笥靡译?水(1 ∶1)溶液溶解殘?jiān)?渦旋混合,離心后取上清液進(jìn)樣分析,每個(gè)濃度3個(gè)樣本,記錄色譜圖,測(cè)定各組分色譜峰面積和內(nèi)標(biāo)物峰面積為C。以“2.8.4.1” 項(xiàng)下所得峰面積B,與峰面積C均值的比值分別計(jì)算各組分和內(nèi)標(biāo)物的基質(zhì)效應(yīng)。結(jié)果見(jiàn)表4。結(jié)果表明各組分和內(nèi)標(biāo)物不存在明顯的離子抑制或離子增強(qiáng)現(xiàn)象[13]。
2.8.5 穩(wěn)定性試驗(yàn) 按“2.8.3” 項(xiàng)下方法制備各組分的低、中、高3個(gè)濃度的質(zhì)量控制溶液,每一濃度平行3份。按“2.6” 項(xiàng)下方法,經(jīng)過(guò)室溫6 h,-80 ℃保存14 d,3個(gè)凍融循環(huán)后測(cè)定其濃度,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,所測(cè)的各組分在大鼠腎組織樣品中穩(wěn)定性均在±15%范圍之間,表明本實(shí)驗(yàn)的生物樣品相對(duì)穩(wěn)定。
大鼠灌胃給予生黃柏和鹽黃柏水煎液后,在不同時(shí)刻摘取大鼠腎組織臟器,采用UPLC-QqQ-MS法對(duì)腎組織中的生物堿類組分的濃度進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果見(jiàn)表5。
表4 各檢測(cè)組分的提取回收率和基質(zhì)效應(yīng)(n=6)Tab.4 Extraction recovery and matrix effects and for the analytes in rats kidney tissue (n=6)
表5 大鼠給予生制黃柏后腎組織中各檢測(cè)組分質(zhì)量濃度(ng/mL,, n=6)Tab.5 Concentrations of each analytes in rats kidney tissue after oral administration of raw and processed P.chinense(ng/mL,, n=6)
表5 大鼠給予生制黃柏后腎組織中各檢測(cè)組分質(zhì)量濃度(ng/mL,, n=6)Tab.5 Concentrations of each analytes in rats kidney tissue after oral administration of raw and processed P.chinense(ng/mL,, n=6)
表5顯示,大多數(shù)生物堿成分的含有量,在大鼠灌胃給藥后,隨著時(shí)間推移,其濃度逐漸降低,而少部分生物堿如巴馬汀和小檗堿在灌胃給藥約6 h后,其濃度又有小幅升高,推測(cè)黃柏生物堿成分在大鼠體內(nèi)的吸收可能存在肝腸循環(huán)[14-17]。此外,同一檢測(cè)組分,在同一給藥時(shí)間后,鹽黃柏相對(duì)于生黃柏在大鼠腎組織臟器中的生物堿含藥濃度較高,表明鹽炙后各組分有增強(qiáng)趨向腎組織作用效果。
黃柏作為鹽炙品種的代表中藥之一,其經(jīng)過(guò)鹽炙之后可以引藥下行入腎,增強(qiáng)了滋腎陰、瀉腎火、退虛熱的作用。結(jié)果表明,黃柏中的生物堿類成分黃柏堿、木蘭花堿、藥根堿、巴馬汀以及小檗堿類,在黃柏鹽炙之后,同一給藥時(shí)間后,其大多數(shù)都是鹽炙品中的生物堿濃度高于生品中的生物堿,從而表明黃柏經(jīng)過(guò)鹽炙之后,生物堿類成分更加趨向于腎組織臟器的分布,進(jìn)而治療腎臟相關(guān)的疾病。前期實(shí)驗(yàn),課題組復(fù)制了腎陰虛的大鼠模型,考察不同黃柏炮制品對(duì)于腎陰虛大鼠的治療效果,并通過(guò)實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出黃柏經(jīng)過(guò)鹽炙之后有更好的滋腎陰、瀉腎火的作用[9]。本實(shí)驗(yàn)將前期的藥效學(xué)進(jìn)行機(jī)理上的驗(yàn)證,即為黃柏經(jīng)過(guò)鹽炙之后,可以增強(qiáng)其有效成分在腎組織的吸收。
本實(shí)驗(yàn)通過(guò)給予大鼠不同炮制品的黃柏水煎液,考察其中生物堿類成分在腎組織臟器的藥物濃度情況,發(fā)現(xiàn)鹽炙品濃度高于生品,從腎組織吸收率的角度驗(yàn)證了黃柏“鹽炙入腎” 的理論。而黃柏如何經(jīng)過(guò)鹽炙后,使其生物堿類成分在腎組織吸收效率提高,還需要從黃柏有效成分與腎組織的靶標(biāo)酶以及生物堿類成分與腎小管上皮細(xì)胞的透過(guò)率進(jìn)一步深入研究。