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    腫瘤浸潤性淋巴細(xì)胞亞群的功能研究及其受體克隆

    2020-11-24 04:42:38林曉為謝云青黃麗潔陳雪芳鄭秋紅
    實(shí)用癌癥雜志 2020年11期
    關(guān)鍵詞:檢測

    林曉為 謝云青 黃麗潔 陳雪芳 鄭秋紅

    腫瘤浸潤的淋巴細(xì)胞(tumor infiltrating lymphocytes,TIL)指的是從腫瘤組織中分離出的浸潤性淋巴細(xì)胞,在90年代中期由NIH的Rosenberg 發(fā)現(xiàn)的,并顯示了良好的臨床效果[1],是國內(nèi)外惡性腫瘤細(xì)胞免疫治療的熱點(diǎn)之一。尋找腫瘤特異的TIL細(xì)胞是提高TIL細(xì)胞臨床有效率的關(guān)鍵,但是目前還沒有特異的表面標(biāo)志物。有研究顯示,對(duì)腫瘤抗原起特異性免疫反應(yīng)的T細(xì)胞克隆主要為CD8+效應(yīng)性T細(xì)胞,且CD8+TIL細(xì)胞中PD-1+的細(xì)胞亞群比PD-1-的細(xì)胞亞群對(duì)腫瘤細(xì)胞的殺傷能力更強(qiáng)[2-3]。

    Rosenberg 等利用外顯子測序等手段得到可以識(shí)別新抗原的T 細(xì)胞的TCR序列后,將該TCR 導(dǎo)入到T 細(xì)胞中,大量克隆后進(jìn)行抗腫瘤治療,該方法可規(guī)避由于脫靶效應(yīng)造成的毒副作用[4]。TCRα、β鏈基因的可變區(qū)(V) 各有3個(gè)互補(bǔ)決定區(qū)(complementarities determining region,CDR),只有CDR3直接和抗原相互作用。TIL細(xì)胞的CDR3區(qū)受腫瘤抗原的長期編輯,其基因可能蘊(yùn)含著豐富的個(gè)體化特異性抗原信息,且由于腫瘤抗原激活后的T細(xì)胞可得到優(yōu)勢擴(kuò)增,因此TIL細(xì)胞中CDR3區(qū)的多樣性較正常人明顯降低,使利用CDR3區(qū)的基因突變信息尋找腫瘤突變的新抗原成為可能。

    因此,本研究利用CD8、PD-1抗體分選出腫瘤組織來源的CD8+PD-1+TIL及CD8+PD-1-TIL細(xì)胞亞群,在體外對(duì)其特異性腫瘤殺傷功能進(jìn)行驗(yàn)證比較。同時(shí),為了獲取腫瘤特異性的TCR信息,本研究嘗試建立體外PCR擴(kuò)增體系,擴(kuò)增CD8+PD-1+TIL細(xì)胞的TCR CDR3區(qū)基因,為后續(xù)的TIL細(xì)胞TCR CDR3區(qū)基因測序,尋找個(gè)體化腫瘤突變新抗原信息奠定前期研究基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 腫瘤組織來源TIL細(xì)胞的分離培養(yǎng)與表型鑒定

    抗人CD3單克隆抗體及GT-T551 H3培養(yǎng)基均購自北京寶日醫(yī)生物技術(shù)有限公司,白介素-2(IL-2)購自北京四環(huán)制藥有限公司,淋巴細(xì)胞分離液購自美國General Electric(GE)公司。0.25%胰酶和膠原蛋白酶、透明質(zhì)酸酶及DNA酶購自Gibco公司。RPMI1640培養(yǎng)基購自廈門泰京公司。流式細(xì)胞儀(Beckman Coulter FC500)及流式檢測所用CD3-PC5、CD4-PE、CD8-ECD、PD-1-FITC均購自Beckman公司。

    參照[5]的培養(yǎng)方法,無菌條件下獲取肺癌腫瘤組織,置于冰盒轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞培養(yǎng)室;將腫瘤組織剪成約1 mm3的小碎塊,加入膠原酶、透明質(zhì)酸酶和DNA酶等消化,4 ℃過夜;室溫1 500 r/min離心,5 min,收集細(xì)胞;采用淋巴細(xì)胞分離液分離單個(gè)核細(xì)胞(包括腫瘤細(xì)胞和淋巴細(xì)胞)。將單個(gè)核細(xì)胞按1×106個(gè)/ml重懸于GT-T551 H3培養(yǎng)液中37 ℃,5% CO2條件下過夜,次日,收集上清液,貼壁細(xì)胞加入含10%胎牛血清的RPMI1640中培養(yǎng)并擴(kuò)增。離心收集上清中的細(xì)胞,重懸于GT-T551 H3培養(yǎng)液,加入CD3單克隆抗體(5 μg/ml)及IL-2(500 U/ml)誘導(dǎo)TIL細(xì)胞的活化和增殖。根據(jù)生長情況每 2~3 d 進(jìn)行一次擴(kuò)瓶傳代培養(yǎng);在37 ℃,5% CO2條件下培養(yǎng)細(xì)胞,當(dāng)細(xì)胞不再呈指數(shù)級(jí)增長時(shí),收集細(xì)胞進(jìn)行表型鑒定。

    大約培養(yǎng)至21 d左右,TIL細(xì)胞不再呈指數(shù)級(jí)增長,1 500 r/min離心5 min收集細(xì)胞,細(xì)胞沉淀用PBS洗滌3遍后,用PBS調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度為2×106,加入鼠抗人CD3-PC5、CD4-PE、CD8-ECD、PD-1-FITC單抗,室溫下孵育10 min后,加入1 ml PBS洗滌細(xì)胞,1 500 r/min離心5 min后,棄上清,細(xì)胞沉淀重懸于500 μl PBS中,上機(jī)檢測。

    1.2 TIL細(xì)胞的功能鑒定

    流式檢測所用CD8-ECD、IFN-γ-PC7、TNF-α-PC5抗體及細(xì)胞因子檢測試劑盒均為Beckman公司。實(shí)時(shí)無標(biāo)記細(xì)胞分析(RealTime Cellular Analysis,RTCA)儀及E-Plate檢測板由艾森公司提供。

    TIL細(xì)胞細(xì)胞因子分泌水平的檢測。收集培養(yǎng)21 d的TIL細(xì)胞進(jìn)行細(xì)胞因子分泌水平的檢測。調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度為2×106于新鮮培養(yǎng)基中,加入PMA(10 ng/ml)和Ionomycin(1 μM)刺激24 h,離心收集細(xì)胞,用100 μl PBS調(diào)節(jié)細(xì)胞濃度為2×106,加入10 μl CD8-PC5單抗于管中,孵育10 min后,加入1 ml PBS并離心收集細(xì)胞。細(xì)胞沉淀加固定劑,室溫暗處孵育15 min,離心500 g 5 min,棄上清;再加破膜劑溫暗處孵育10 min,加2~3 ml PBS洗液,離心500 g 5 min,棄上清;最后加入IFN-γ-FITC、IL-4-PE抗體,混勻,室溫暗處孵育30 min,加入1 ml PBS 洗液,離心500 g 5 min,棄上清,再加入500 μl含1%PFA的溶液重懸細(xì)胞沉淀,上機(jī)檢測。

    TIL細(xì)胞亞群殺傷功能的檢測。應(yīng)用RTCA分析技術(shù)進(jìn)行TIL細(xì)胞亞群殺傷效應(yīng)的檢測。向E-Plate檢測板中加入RPMI1640培養(yǎng)基并測定背景阻抗值。收集1.2中貼壁生長的對(duì)數(shù)期原代肺癌腫瘤細(xì)胞并計(jì)數(shù),調(diào)整細(xì)胞懸液濃度,向E-Plate檢測板中加入一定體積的細(xì)胞,室溫超凈臺(tái)內(nèi)放置30 min。將加入細(xì)胞的E-Plate檢測板放入檢測臺(tái)上,進(jìn)行實(shí)時(shí)動(dòng)態(tài)的細(xì)胞增殖檢測。過夜檢測后,向各培養(yǎng)孔中加入PBMC、未分選TIL細(xì)胞、CD8+PD-1-TIL細(xì)胞及CD8+PD-1+TIL細(xì)胞四種效應(yīng)細(xì)胞進(jìn)行共同培養(yǎng),效靶比均為20∶1,并繼續(xù)進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測,共監(jiān)測48h,獲得實(shí)時(shí)的細(xì)胞效應(yīng)曲線。

    1.3 CD8+PD-1+TIL細(xì)胞表面TCR Vɑ1鏈CDR3基因的擴(kuò)增

    PCR儀為ABI美國應(yīng)用生物公司,提取細(xì)胞總RNA的提取試劑盒、反轉(zhuǎn)錄試劑盒及PCR擴(kuò)增試劑盒均購自美國Promega公司。引物設(shè)計(jì):參照Arnold Han等[6],Oligo(dC) adaptor引物序列:5'-ACAGCAGGTCAGTCAAGCAGTAGCAGCAGTTCGATAAGCGGCCGCCATGGACCCCCCCCCCCC(AGT)(ACGT)-3′;Adaptor Primer1序列:5'-ACAGCAGGTCAGTCAAGCAGTA-3′;Adaptor Primer2序列:5′-AGCAGTAGCAGCAGTTCGATAA-3′;TCRVα1first PCR引物:5′-CTGCACGTACCAGACATCTGGGTT-3′;TCRVα1nest PCR引物:5′-CCAGGGTTTTCCCAGTCACGACAGGTCGTTTTTCTTCATTCCTTAGTC-3′。

    CD8+PD-1+TIL細(xì)胞total RNA的提取及cDNA的合成。參照細(xì)胞總RNA的提取試劑盒及反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進(jìn)行CD8+PD-1+TIL細(xì)胞total RNA的提取及cDNA第一鏈的合成,應(yīng)用Oligo(dC) adaptor引物進(jìn)行cDNA第二鏈的合成。TCRVα1CDR3基因的巢式RT-PCR擴(kuò)增。第一輪PCR:以以上合成的雙鏈cDNA為模板,加入Adaptor Primer1引物及TCRVα1first PCR引物進(jìn)行第一輪PCR擴(kuò)增,PCR反應(yīng)條件為:95 ℃ 5 min;95 ℃ 30 s,60 ℃ 15s,72 ℃ 2 min,共30個(gè)循環(huán)。巢式PCR:以以上第一輪PCR擴(kuò)增的產(chǎn)物為模板,加入Adaptor Primer2引物及TCRVα1nest PCR引物進(jìn)行巢式PCR擴(kuò)增,同時(shí)擴(kuò)增GAPDH編碼基因做為質(zhì)控對(duì)照。PCR反應(yīng)條件為:95 ℃ 5 min;95 ℃ 15 s,60 ℃ 15 s,72 ℃ 1 min,共35個(gè)循環(huán)后,72 ℃ 2 min。

    2 結(jié)果

    2.1 肺癌組織分離培養(yǎng)的TIL細(xì)胞的表型鑒定

    如圖1~3所示,從肺癌腫瘤組織中分離培養(yǎng)的TIL細(xì)胞,CD3+CD8+(CTL)細(xì)胞亞群占75.7%(圖1),CD3+CD4+(Th)細(xì)胞亞群占23.1%(圖2),其中PD-1的表達(dá)約為29.7%(圖3)。說明腫瘤組織中浸潤性T淋巴細(xì)胞多以CD3+CD8+細(xì)胞毒T細(xì)胞(CTL)為主要細(xì)胞群,但由于其表面高表達(dá)PD-1負(fù)性調(diào)控分子而致其失去殺傷腫瘤的能力。

    2.2 CD8+PD-1+TIL細(xì)胞表面TCR CDR3區(qū)基因的擴(kuò)增

    瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果如圖4所示,經(jīng)過巢式PCR擴(kuò)增,CD8+PD-1+TIL細(xì)胞擴(kuò)增出TCR Vα1條帶,約686 bp左右,參照物GAPDH亦顯示出條帶,約158 bp左右。

    圖1 TIL細(xì)胞中CD3+CD8+細(xì)胞分布情況

    圖2 TIL細(xì)胞中CD3+CD4+細(xì)胞分布情況

    圖3 TIL細(xì)胞中PD-1表達(dá)情況分析

    注:1為100bp DNA marker;2為空白對(duì)照;3為Jurkat T淋巴瘤細(xì)胞陽性對(duì)照;4為GAPDH質(zhì)控對(duì)照;5為CD8+PD-1+TIL細(xì)胞。

    3 討論

    TIL細(xì)胞是存在于腫瘤間質(zhì)內(nèi)的以淋巴細(xì)胞為主的異質(zhì)性淋巴細(xì)胞群體,大多聚集在腫瘤周圍或其間質(zhì)呈套狀圍繞癌巢。自1986年Rosenberg等從荷瘤小鼠實(shí)體瘤中分離到TIL,并于2002年報(bào)道了首例TIL細(xì)胞應(yīng)用與黑色素瘤患者的臨床治療效果后[1],TIL細(xì)胞的臨床應(yīng)用越來越廣泛。隨著研究的深入,人們發(fā)現(xiàn),TIL細(xì)胞中對(duì)腫瘤抗原起特異性免疫反應(yīng)的T細(xì)胞克隆主要為CD8+效應(yīng)性T細(xì)胞[3],而這群CD8+TIL細(xì)胞在腫瘤中由于受到抗原持久的刺激,不能有效分化成記憶性T細(xì)胞而逐步演變成功能紊亂的一群細(xì)胞[6],稱之為衰竭性CD8+CTL細(xì)胞,這群細(xì)胞表面持續(xù)性高表達(dá)PD1抑制性受體,其機(jī)制可能與腫瘤微環(huán)境中長期高表達(dá)PD-L1相關(guān)[7]。我們的研究結(jié)果亦發(fā)現(xiàn),從肺癌腫瘤組織中分離培養(yǎng)的TIL細(xì)胞主要以CD8+T細(xì)胞群為主,約占75.7%,而這群CD8+T細(xì)胞PD-1表達(dá)率高達(dá)29.7%,通過體外殺傷原代培養(yǎng)的肺癌腫瘤細(xì)胞能力檢測,發(fā)現(xiàn)這群CD8+PD-1+TIL細(xì)胞在體外特異性殺傷活性最強(qiáng),高于CD8+PD-1-TIL細(xì)胞,該結(jié)果與Rosenberg等[2]及Ye等[8]的研究結(jié)果相符,本研究的實(shí)驗(yàn)結(jié)果還顯示未分群的TIL細(xì)胞的腫瘤殺傷功能超越了CD8+PD-1-TIL,以上這些實(shí)驗(yàn)結(jié)果尚需要進(jìn)一步的驗(yàn)證及機(jī)制研究。

    T細(xì)胞特異性識(shí)別腫瘤抗原的分子基礎(chǔ)是其表面TCR受體。近年來,鑒定出功能性T細(xì)胞克隆,進(jìn)而克隆其異二聚體TCR片段,并將其表達(dá)于T細(xì)胞表面賦予T細(xì)胞識(shí)別殺傷腫瘤的能力已成為研究熱點(diǎn)。TCR修飾T 細(xì)胞(TCR-T)治療腫瘤患者的于2006首次成功應(yīng)用于黑色素瘤患者[9],之后針對(duì)CEA、 NY-ESO-1等腫瘤特異性抗原的TCR-T細(xì)胞治療被應(yīng)用于治療多種腫瘤(多發(fā)性骨髓瘤、黑色素瘤、乳腺癌、卵巢癌、前列腺癌等),獲得了19%~56% 的臨床反應(yīng)率[10-11]。2015 年,有報(bào)道將TIL細(xì)胞中分離出腫瘤特異性TCR克隆應(yīng)用于一位膽管癌肝肺轉(zhuǎn)移的患者使其完全緩解[12]。TCRα、β鏈可變V區(qū)基因千變?nèi)f化,但是V區(qū)CDR3才是直接與腫瘤抗原接觸的區(qū)域,CDR3基因可能蘊(yùn)含著豐富的個(gè)體化特異性抗原信息,且優(yōu)勢擴(kuò)增的原理導(dǎo)致腫瘤抗原特異性TIL細(xì)胞亞群中CDR3區(qū)的多樣性較正常人明顯降低,使得通過對(duì)CD8+PD-1+TIL細(xì)胞亞群CDR3基因測序,尋找差異表達(dá)基因,從中獲取個(gè)體化腫瘤突變新抗原信息成為可能。但是,由于α/βTCR有32個(gè)Vα亞家族基因及26個(gè)Vβ亞家族基因,同時(shí)擴(kuò)增難度較大,因此本研究先設(shè)計(jì)了Vα1亞家族的引物,利用巢式RT-PCR的方法先摸索TCR Vα1基因體外擴(kuò)增的條件,為后續(xù)TCR Vα及Vβ全部亞家族CDR3基因的擴(kuò)增建立穩(wěn)定的實(shí)驗(yàn)條件,為通過對(duì)TIL細(xì)胞中CDR3基因測序?qū)ふ夷[瘤特異性突變抗原,實(shí)現(xiàn)個(gè)體化精準(zhǔn)細(xì)胞免疫治療奠定了前期研究基礎(chǔ)。

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