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    雞矢藤環(huán)烯醚萜苷抑制NO-CGMP/PKG信號保護新生大鼠神經(jīng)元

    2020-11-18 07:39:58胡才彪秦志強周蘭蘭
    中國藥理學(xué)通報 2020年11期
    關(guān)鍵詞:含藥神經(jīng)元試劑盒

    王 坤,胡才彪,章 成,秦志強,周蘭蘭

    (1.安徽醫(yī)科大學(xué)藥理學(xué)教研室,安徽 合肥 230032;2. 深圳職業(yè)技術(shù)學(xué)院醫(yī)護學(xué)院,廣東 深圳 518055)

    疼痛(pain)一直困擾著人類,一氧化氮/環(huán)磷酸鳥苷/蛋白激酶G(NO/cGMP/PKG)是體內(nèi)參與痛覺中樞傳遞作用的重要蛋白通路[1], NO/cGMP/PKG通路的激活能使抑制劑受體磷酸化(如γ-氨基丁酸)而降低其疼痛抑制作用,脊髓興奮性氨基酸釋放增加導(dǎo)致繼發(fā)性痛覺過敏,同時促進胞內(nèi)Ca2+濃度升高,繼而引發(fā)一系列胞內(nèi)過程。不同來源以及不同氧化還原狀態(tài)的一氧化氮(nitric oxide,NO)可能具有神經(jīng)元保護或者損害作用,而過量NO可能通過各種機制導(dǎo)致細(xì)胞和組織損傷[2-3]。研究發(fā)現(xiàn),iNOS和nNOS活性神經(jīng)元主要位于L3-L5脊髓段的背角側(cè)和中央管周圍[4]。nNOS在脊髓內(nèi)表達上調(diào)受iNOS調(diào)節(jié),可能是維持小鼠慢性周圍神經(jīng)病理性疼痛的重要因素[5]。我們前期結(jié)果及其他研究均表明,cGMP依賴的蛋白激酶PKGI在傷害性感受鏈的發(fā)育及脊髓痛覺過敏機制中是發(fā)揮cGMP功能作用的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子[6-7]。鞘內(nèi)注射NOS抑制劑(例如L-NAME和L-NMMA)抑制NO合成,或直接敲除NO或抑制cGMP合成,均可減少神經(jīng)性疼痛的傷害感受行為[5,8]。

    雞矢藤環(huán)烯醚萜苷(iridiod glycosides from Paederia scandens,IGPS)是從茜草科植物雞矢藤中提取的一類有效活性成分,主要有效成分包括雞矢藤苷、雞矢藤次苷、車葉草苷等。IGPS是GRA公認(rèn)安全的具有有效治療作用的植物成分之一[9]。課題組前期研究結(jié)果顯示,IGPS在小鼠福爾馬林試驗、扭體試驗、坐骨神經(jīng)結(jié)扎模型等均顯示良好鎮(zhèn)痛活性,且無成癮性[6,10]。本文采用NO供體硝普鈉(sodium nitroprusside,SNP)誘導(dǎo)的背根神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元傷害模型,進一步研究IGPS抑制NO-CGMP/PKG信號、保護新生大鼠神經(jīng)元的作用。另外,為排除直接在離體培養(yǎng)細(xì)胞加中藥提取物的可能影響,本研究采用了在藥理學(xué)中經(jīng)有效驗證的血清藥理學(xué)方法制備IGPS含藥血清。

    1 材料與方法

    1.1 藥品與試劑IGPS由安徽醫(yī)科大學(xué)藥理學(xué)教研室提供,棕黃色粉末,臨用時用蒸餾水配制,批號151120。SNP(431451,Sigma 公司);兔抗鼠神經(jīng)元特異性烯醇化酶(NSE,BA0535,BOTER 公司);Bradford蛋白濃度測定試劑盒、NO含量和NOS活性測定試劑盒均購自南京建城生物工程研究所;cGMP試劑盒購自上海中醫(yī)藥大學(xué)核試驗室;Revert AidTMFirst Strand cDNA synehesis Kit (00033699,F(xiàn)ermentas公司);PCR MasterMix (17304,北京天根公司);Fluo-3,AM(F026,DOJINDO Laboratories)。

    1.2 動物♂SD大鼠,體質(zhì)量200±20 g,購于安徽醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心(合格證號:皖醫(yī)實動準(zhǔn)字第 01 號)。實驗前給予動物至少3 d適應(yīng)周期。于溫度(22~24)℃、相對濕度(60±5)%,及12 ∶12 h明暗循環(huán)條件下飼養(yǎng)。

    1.3 新生大鼠背根神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元純化、培養(yǎng)及神經(jīng)元特異性烯醇化酶免疫組化鑒定無菌條件下取新生大鼠脊神經(jīng)節(jié), Collagenase-Dispase在37 ℃ CO2培養(yǎng)箱消化,加入MEM-F12培養(yǎng)基,培養(yǎng)皿提前用多聚賴氨酸和層粘連蛋白包被處理,離心得到單細(xì)胞懸液以1×108個·L-1密度接種于培養(yǎng)皿,37 ℃、5% CO2條件下培養(yǎng)1周。取出培養(yǎng)板,用2%多聚甲醛(含0.3% Triton X-100)室溫固定30 min,加1 ∶100 NSE,加1 ∶200生物素化山羊抗兔IgG。使用DAB顯色試劑盒,依次經(jīng)梯度濃度乙醇脫水、透明、封片,于倒置顯微鏡下隨機選取5個視野,同一視野下計數(shù)染色的陽性細(xì)胞與總細(xì)胞數(shù)量之比,即為神經(jīng)元細(xì)胞純度。

    1.4 IGPS含藥血清制備♂SD大鼠40只,飼養(yǎng)3 d后隨機分組:正常對照組,IGPS(70、140、280 mg·kg-1)組,灌胃給藥,連續(xù)3 d,每日2次。最后1次灌胃1 h后于大鼠腹主動脈采血,4 ℃靜置過夜,2 000 r·min-1離心25 min,取上層血清,0.22 μm 微孔濾膜濾過除菌,56 ℃水浴滅活,-20 ℃條件下凍存?zhèn)溆谩?/p>

    1.5 SNP致DRG神經(jīng)元損傷模型制備、MTT法測定細(xì)胞活力及IGPS含藥血清的處理DRG細(xì)胞培養(yǎng)72 h,隨機分為正常對照組、模型組和IGPS含藥血清組(280、140、70 mg·kg-1)。模型組及用藥組均用200 μmol·L-1SNP溶液灌注預(yù)處理30 min,然后各藥物組加入由正常細(xì)胞培養(yǎng)基1 ∶8稀釋的IGPS含藥血清100 μL。并設(shè)置調(diào)零組(只加培養(yǎng)基和藥物且不含DRG細(xì)胞)和陰性對照組(培養(yǎng)孔內(nèi)含DRG細(xì)胞的同時加入培養(yǎng)基和空白血清),每個濃度設(shè)置5個復(fù)孔,所有組別DRG細(xì)胞處理后分別繼續(xù)培養(yǎng)24 h。各實驗孔內(nèi)加入MTT(終濃度 0.5 g·L-1), 置于培養(yǎng)箱37 ℃、5% CO2孵育 4 h,加入DMSO(150 μL/孔),酶標(biāo)儀于570 nm波長處測定各孔吸光度(A 值)。

    1.6 DRG神經(jīng)元cGMP/PKG信號通路指標(biāo)測定

    1.6.1NO和cGMP含量測定、iNOS活性測定 新生大鼠DRG神經(jīng)元培養(yǎng) 72 h,建立SNP模型及用含藥血清處理后,提取總蛋白,使用Bradford蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白質(zhì)濃度。采用分光光度計法測定NO含量和iNOS活性,具體操作步驟按試劑盒說明書進行。采用放射免疫法測定cGMP含量,數(shù)據(jù)由Gamma放射免疫測定儀(UstcZonkia GC-1500)記錄。

    1.6.2RT-PCR測定iNOSmRNA,PKGIAαmRNA和PKGIβmRNA 使用TRIzol試劑從培養(yǎng)DRG細(xì)胞提取總RNA及純度鑒定,引物設(shè)計如下表所示:

    GenePrimerSequence(5'-3')BasepairiNOSForwardAGAGAAGGGCGCGTTGTGGTAGTT506bpReverseTGTCAGATGGCAAGGGTTCAGGTGPKGIαForwardCTTCTTCGCCAACCTG369bpReverseGGCAAACGCTTCTACCAPKGIβForwardGGGCTCATTCCGATTT363bpReverseTCATGGCCTTTGTTCAGβ-actinForwardATGCCATCCTGCGTCTGGACCTGGC606bpReverseAGCATTTGCGGTGCACGATGGAGGG

    兩步法進行cDNA合成,具體操作步驟按試劑盒說明書進行,分別取上述cDNA 10 μL與iNOS等或β-actin引物進行PCR反應(yīng),按試劑盒說明書操作步驟進行。

    使用瓊脂糖凝膠電泳對PCR混合物進行分析,并通過凝膠記錄系統(tǒng)(Biosens SC810,中國上海)對圖像進行采集。產(chǎn)物相對含量用電泳條帶信號灰度值與β-actin電泳條帶信號灰度值之比表示。

    1.7 DRG神經(jīng)元熒光染色及胞漿游離Ca2+濃度測定Fluo-3/AM儲備液(5 μmol fluo-3,AM, 0.005% Pluronic F-127, 0.1% DMSO),-80 ℃避光保存,使用前解凍。培養(yǎng)皿滴入0.2 mL Fluo-3,AM預(yù)知液,正常培養(yǎng)箱孵育1 h。去除染液,緩沖液沖洗。培養(yǎng)皿置于激光共聚焦顯微鏡(Leica TCS SP5,德國萊卡公司)載物臺上,記錄連續(xù)動態(tài)掃描的細(xì)胞內(nèi)熒光強度(FT)變化。Fluo-3,AM在波長488 nm處激發(fā),發(fā)射波長526 nm,采樣頻率為488 HZ,每皿選3~5個視野,以FT變化反映細(xì)胞內(nèi)游離鈣濃度的變化。

    2 結(jié)果

    2.1 新生大鼠DRG神經(jīng)元細(xì)胞的培養(yǎng),純度測定及染色鑒定剛接種的DRG細(xì)胞呈圓形,明亮且分散(Fig 1A),4~6 h后開始貼壁。接種24 h后,大部分貼壁細(xì)胞開始長出突起,并可觀察到突起末端的生長錐。孵育3~5 d后,細(xì)胞之間開始形成網(wǎng)絡(luò)(Fig 1B)。用NSE抗體對新生小鼠原代培養(yǎng)DRG神經(jīng)元進行免疫染色,NSE 主要在胞質(zhì)中表達,陽性細(xì)胞數(shù)量居多,呈深棕色,細(xì)胞形態(tài)呈圓形、橢圓形以及多邊形等,偶爾可觀察到突起伸出(Fig 1C,1D)。鑒定結(jié)果顯示,培養(yǎng)的DRG神經(jīng)元細(xì)胞純度達0.9以上。

    Fig 1 Culture and identification of DRG neuronsA.DRG neurons cultured for 1 h (×1 000); B. DRG neurons cultured for 24 h (×200); C and D. DRG neurons identified by NSE immunohistochemistry (DAB×400)

    2.2 SNP 對DRG神經(jīng)元的損傷作用及IGPS含藥血清的調(diào)節(jié)與對照組相比,SNP模型組DRG細(xì)胞的存活率為 57.73%,顯示 SNP處理對DRG神經(jīng)元造成了損傷(P<0.01)。而與 SNP模型組相比,IGPS 含藥血清(140、280 mg·kg-1)組大鼠 DRG 神經(jīng)元存活率呈現(xiàn)明顯升高趨勢(P<0.05,P<0.01),Tab 1。

    Tab 1 Effect of IGPS-containing serum on survival in

    2.3 SNP誘導(dǎo)DRG神經(jīng)元NO/cGMP/PKG信號通路變化及IGPS含藥血清的調(diào)節(jié)作用與對照組相比,用NO供體SNP預(yù)處理30 min可以明顯增加亞硝酸鹽水平并增強iNOS酶活性,而IGPS含藥血清(280、140、70 mg·kg-1)的干預(yù)呈濃度依賴性地抑制亞硝酸鹽水平以及iNOS活性的升高(Fig 2A)。cGMP定量顯示了一致的結(jié)果,200 μmol·L-1終濃度的SNP溶液可以明顯升高cGMP含量,而IGPS含藥血清可以明顯下調(diào)cGMP含量(Fig 2B)。

    Fig 2 NO production modulated by IGPSA: NO production and iNOS activity; B: cGMP level. ##P<0.01, vs control. *P<0.05, **P<0.01 vs SNP.

    2.4 SNP對DRG神經(jīng)元iNOS,PKGIα和PKGIβ mRNA的表達的影響及IGPS含藥血清的調(diào)節(jié)作用Fig 3A,B結(jié)果顯示,與對照組相比,SNP促進了DRG神經(jīng)元iNOS mRNA,PKGIα和PKGIβ mRNA的表達。與模型組相比,IGPS含藥血清可明顯下調(diào)受損DGR神經(jīng)元iNOS mRNA(P<0.01,P<0.05),PKGIα mRNA(P<0.05,P<0.05)和PKGIβ mRNA(P<0.01,P<0.05)的過度表達。

    2.5 SNP對DGR神經(jīng)元細(xì)胞內(nèi)Ca2+水平的影響及IGPS含藥血清的調(diào)節(jié)作用與對照組相比,SNP作用DRG 神經(jīng)元Ca2+濃度在15 s處有明顯上升。對照組DRG 神經(jīng)元Ca2+水平在55 s 內(nèi)幾乎沒有變化(Fig 4A)。與對照組相比,SNP誘導(dǎo)DRG神經(jīng)元的Fluo-3,AM熒光強度(103.936±16.945)遠高于對照組神經(jīng)元(20.896±9.471),差異有顯著性(P<0.01)。 與SNP模型組相比,DRG神經(jīng)元升高的Ca2+水平IGPS含藥血清可以明顯下調(diào),差異有顯著性(P<0.01,P<0.05)(Fig 4B)。

    Fig 4 Intracellular Ca2+ variations in DRG neurons regulated by IGPSA: Effect of IGPS containing serum on time course of Ca2+ formation; B: The mean intensity of intracellular Ca2+concentration. Data represents mean±SEM of at least eight individual experiments. ##P<0.01 vs control, *P<0.05, **P<0.01 vs SNP

    Fig 3 mRNA expression of iNOS, PKGΙα and PKGIβ decreased by IGPSA: Representative RT-PCR image of mRNA expressions of iNOS, PKGΙ (α, β); B: Relative ratios of iNOS, PKGΙ (α, β) to β-actin, respectively. ##P<0.01, vs control, *P<0.05, **P<0.01 vs SNP

    3 討論

    NO作為信息傳遞分子參與體內(nèi)多種生理病理過程,研究證實,過量NO可對神經(jīng)元細(xì)胞產(chǎn)生毒性,本實驗通過采用SNP作為NO供體提高DRG細(xì)胞內(nèi)NO濃度,結(jié)果顯示SNP在200 μmol·L-1濃度時,細(xì)胞存活率在50%左右,選擇此濃度為造模濃度最適合。IGPS為中藥提取物,采取中藥血清藥理學(xué)的實驗方法,從細(xì)胞水平探討中藥的作用機理。實驗結(jié)果顯示,IGPS含藥血清可明顯提高NO損傷后神經(jīng)元的存活率,提示IGPS含藥血清對SNP損傷DRG細(xì)胞具有一定的保護作用。

    研究證實,cGMP依賴性的PKG酶參與了脊髓的疼痛傳遞,當(dāng)外周神經(jīng)受損出現(xiàn)炎癥可引起外周PKGI激活并逆向轉(zhuǎn)運至DRG神經(jīng)元中,致使脊髓PKGI表達量增加[11]。我們進一步研究發(fā)現(xiàn),IGPS的鎮(zhèn)痛作用可能與NO介導(dǎo)的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路有關(guān)。IGPS含藥血清可明顯抑制DRG神經(jīng)元細(xì)胞NO和cGMP含量, 可明顯下調(diào)PKGI(α,β)mRNA表達,即IGPS可通過抑制PKG介導(dǎo)的NO/cGMP信號通路的磷酸化發(fā)揮鎮(zhèn)痛作用。N型和L型電壓門控的Ca2+通道阻滯劑可有效緩解與神經(jīng)性疼痛相關(guān)的痛覺過敏和異常性疼痛,不影響正常痛覺。我們實驗結(jié)果表明,IGPS可以明顯降低由外源NO引起的鈣離子濃度升高,這表明誘導(dǎo)炎癥性和神經(jīng)性疼痛可能需要鈣依賴的突觸后機制。

    綜上,研究結(jié)果表明,IGPS含藥血清可通過抑制NO誘導(dǎo)的cGMP/PKG 信號通路及升高細(xì)胞內(nèi)鈣離子濃度,有效降低SNP損傷DRG神經(jīng)元的死亡率而產(chǎn)生保護作用。

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