隋君霞,隋京京,李 曉,姜忠玲,曹榮峰,豐艷妮,李華濤
(青島農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,山東 青島 266109)
在臨床治療中,犬的血型是輸血療法的決定因素,血型不合可能造成嚴(yán)重的溶血反應(yīng),導(dǎo)致治療失敗或留下嚴(yán)重的后遺癥[1]。在犬的血型系統(tǒng)中,DEA1.1、DEA1.2表現(xiàn)出較強(qiáng)的免疫原性[2],DEA1.1和DEA1.2的抗原-抗體反應(yīng)也是導(dǎo)致急性輸血性溶血的最主要因素[3]。因此在犬臨床輸血治療中,鑒定DEA1.1血型是非常有必要的。目前動(dòng)物血型分型方法主要有試管法、卡片法和凝膠柱法[4],這些方法都是基于紅細(xì)胞抗原和單克隆試劑或多克隆血清的血凝反應(yīng)原理實(shí)施的[5]。目前仍未發(fā)現(xiàn)一種能夠用于犬交叉配血檢測(cè)的金標(biāo)準(zhǔn),現(xiàn)行的方法或是缺乏準(zhǔn)確性;或是價(jià)格昂貴、國(guó)內(nèi)尚未推廣;或是無(wú)法用于大批量血液樣本檢測(cè)[6],因而亟需研發(fā)一種檢出率高、價(jià)格合理且能夠用于大批量血型篩查的新方法。在本試驗(yàn)中,我們通過(guò)幾種醛化劑對(duì)犬DEA1.1抗原紅細(xì)胞進(jìn)行醛化固定,并進(jìn)一步研究醛化對(duì)血型抗原DEA1.1是否造成影響,并探索一種使犬DEA1.1血型抗原得以長(zhǎng)期保存的方法。通過(guò)提取犬紅細(xì)胞膜,去除血紅蛋白成分,以特定血型的紅細(xì)胞膜為抗原建立間接ELISA方法用以寵物醫(yī)療中血型高通量檢測(cè),降低因血型不合引起的輸血風(fēng)險(xiǎn)。
犬血液樣本來(lái)自廣州及周邊地區(qū)動(dòng)物醫(yī)院、流浪犬收留中心及品種犬養(yǎng)殖基地,其中試驗(yàn)用比格犬130只、本地犬28只,共計(jì)158個(gè)樣本。QuickVet?/RapidVet Canine DEA1.1 Blood Typing Test試劑盒,購(gòu)自美國(guó)Dmslaboratories公司; HRP酶標(biāo)抗犬IgG二抗,購(gòu)自BD公司;96孔聚苯乙烯酶標(biāo)板或8孔酶標(biāo)板條為Breiner bio-one公司產(chǎn)品;脫脂奶粉、BSA、TMB,均購(gòu)自北京Solarbio公司。
2.1 犬DEA1.1血型鑒定 按照QuickVet?/RapidVet Canine DEA1.1 Blood Typing Test說(shuō)明書(shū)對(duì)犬DEA1.1血型進(jìn)行檢測(cè)。檢測(cè)原理是當(dāng)紅細(xì)胞細(xì)胞膜上含有DEA1.1抗原時(shí),會(huì)和鑒定卡上的DEA1.1單克隆抗體相結(jié)合而產(chǎn)生凝集反應(yīng),被檢測(cè)的血樣為DEA1.1陽(yáng)性,不產(chǎn)生凝集反應(yīng)則被檢測(cè)血樣為DEA1.1陰性。
2.2 犬DEA1.1血型抗原間接ELISA方法的建立 由于對(duì)DEA1.1抗原了解較少,目前還不能用真核或原核表達(dá)的情況下得到血型抗原,也不能拿到較純DEA1.1抗原,因此最初嘗試用DEA1.1抗原陰、陽(yáng)性的犬紅細(xì)胞膜為抗原,進(jìn)行DEA1.1血型抗原間接ELISA方法的建立。
2.3 紅細(xì)胞膜制備 紅細(xì)胞的采集和洗滌:取2 mL 抗凝全血3 000 r/min離心20 min,紅細(xì)胞沉淀,棄上清和白細(xì)胞層。將紅細(xì)胞置于3倍量的預(yù)冷pH 7.4的等滲磷酸鹽緩沖液中,混勻,4 ℃5 000 r/min 離心15 min,除去上清及沉淀表層,重復(fù)洗滌3次。紅細(xì)胞膜洗滌:在洗凈的紅細(xì)胞中,按照1∶40的比例加入預(yù)冷的pH 7.4的低滲Tris緩沖液中,混勻,置于4 ℃冰箱中2 h,使之完全溶血。4 ℃ 9 000 r/min離心15 min,使紅細(xì)胞膜沉淀,重復(fù)洗滌,離心3~5次,最后獲得白色的紅細(xì)胞膜樣品。將最后1次離心所得到的紅細(xì)胞膜懸浮在2~4 mL pH 7.4的等滲磷酸鹽緩沖液中。記錄懸浮液的總體積。
2.4 間接ELISA方法操作程序 細(xì)胞膜包被液摸索:分別選用0.01 mol/L PBS(pH 7.4)、0.05 mol/L包被液(pH 9.6的碳酸鹽緩沖液)、0.5%PVA包被紅細(xì)胞膜到酶標(biāo)板上,每孔加100 μL包被液,4 ℃ 過(guò)夜,用0.01 mol/L PBS(pH 7.4)振搖洗滌酶標(biāo)板3次,每次5 min。細(xì)胞膜固定劑摸索:分別選擇甲醛、多聚甲醛、戊二醛固定犬紅細(xì)胞,用間接抗球蛋白試驗(yàn)檢測(cè)對(duì)犬血型DEA1.1的抗原性影響;根據(jù)結(jié)果選擇最佳固定劑,設(shè)置濃度梯度為0.02%、0.03%、0.06%、0.13%、0.25%和0.50%固定犬紅細(xì)胞膜,按50 μL/孔加入到酶標(biāo)板中。37 ℃作用2 h。 用0.01 mol/L PBS(pH 7.4)振搖洗滌酶標(biāo)板3次,每次5 min。封閉:分別加入5%的脫脂奶粉、1%的BSA、0.1%的BSA,200 μL/孔,置37 ℃溫箱2 h,取出后甩掉液體,用PBS充分洗滌。加血清:用封閉液按1∶200稀釋犬抗DEA1.1抗血清和陰性血清,加入到反應(yīng)板中,100 μL/孔,每份樣品再重復(fù)1孔,同時(shí)設(shè)定陽(yáng)性對(duì)照孔、陰性對(duì)照孔和空白對(duì)照孔,置37 ℃溫箱作用一定時(shí)間,取出后甩掉液體,用PBS充分洗滌。加酶標(biāo)二抗:將酶標(biāo)二抗用封閉液按1∶200稀釋,加入到反應(yīng)板中,100 μL/孔,置37 ℃溫箱作用一定時(shí)間,取出后甩掉液體,用PBS充分洗滌。加底物溶液:取現(xiàn)配制的TMB-H2O2底物溶液、TMB顯色液100 μL/孔,加入到反應(yīng)板中,置37 ℃溫箱作用一定時(shí)間。加終止液:取出反應(yīng)板,加入終止液2 mol/L H2SO4,100 μL/孔,終止顯色反應(yīng)。酶標(biāo)儀測(cè)定:用酶標(biāo)儀在單波長(zhǎng)處測(cè)定每孔內(nèi)物質(zhì)的OD490 nm值。
結(jié)果判定:在對(duì)照成立的情況下,判定檢測(cè)血清樣品的陰陽(yáng)性。通過(guò)對(duì)每次反應(yīng)的數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,計(jì)算反應(yīng)的P/N值,以P/N值最大的反應(yīng)條件作為間接ELISA最佳反應(yīng)條件的判定依據(jù)。P/N值計(jì)算方法:P/N值=(陽(yáng)性對(duì)照孔OD490 nm平均值-空白對(duì)照孔OD490 nm均值)/(陰性對(duì)照孔OD490 nm均值-空白對(duì)照孔OD490 nm均值)。
2.5 間接ELISA反應(yīng)條件的優(yōu)化 將提取的紅細(xì)胞膜用0.01 mol/L PBS(pH 7.4)按照2倍倍比稀釋,每孔加30 μL于酶標(biāo)板,添加1%戊二醛PBS 2 μL, 使終濃度為0.062 5%。37 ℃包被2 h,根據(jù)檢測(cè)結(jié)果,確定最佳抗原包被濃度。以最適的抗原濃度和最佳抗原包被條件包被酶標(biāo)板,分成4組進(jìn)行。第1組用5%脫脂乳封閉;第2組用1%脫脂乳封閉;第3組用5% BSA封閉;第4組用1% BSA封閉。按照間接ELISA程序測(cè)定OD450 nm值,比較P/N值,以確定最佳封閉液。隨機(jī)收集健康犬血清56份,分別稀釋至最佳濃度,用已建立間接ELISA方法檢測(cè),每份血清重復(fù)2孔,DEA1.1陰性、陽(yáng)性血清作為對(duì)照。測(cè)定OD450 nm值并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。加入血清稀釋液之后,分別在室溫(26 ℃)和37 ℃作用30、60、90、120、150 min后測(cè)定其OD450nm值,確定血清最佳反應(yīng)時(shí)間。加入新配制的TMB底物溶液,100 μL/孔,于室溫反應(yīng)10、15、20、25、30 min,用2 mol/L H2SO4終止反應(yīng),以P/N值最大為判定標(biāo)準(zhǔn)。
2.6 間接ELISA重復(fù)性試驗(yàn)驗(yàn)證 穩(wěn)定性和重復(fù)性:紅細(xì)胞膜在-20 ℃長(zhǎng)時(shí)間保存,反復(fù)凍融20次,固定于ELISA板4 ℃保存后進(jìn)行檢測(cè)。板內(nèi)重復(fù)試驗(yàn):用同一塊酶標(biāo)板加入不同的樣本,包括陽(yáng)性樣本4份,陰性樣本2份,陽(yáng)性對(duì)照和陰性對(duì)照各1份。陽(yáng)性和陰性樣本各做6個(gè)重復(fù)。用建立的ELISA檢測(cè)方法測(cè)定,計(jì)算同一樣本的變異系數(shù),以檢驗(yàn)板內(nèi)樣品的重復(fù)性。板間重復(fù)性試驗(yàn):取不同時(shí)間包被的6個(gè)酶標(biāo)板重復(fù)檢測(cè)上述4份陽(yáng)性樣品和2份陰性樣本,并設(shè)陽(yáng)性和陰性對(duì)照,用建立的ELISA方法進(jìn)行檢測(cè),計(jì)算同樣本的變異系數(shù),以檢驗(yàn)板間檢測(cè)樣品的重復(fù)性。對(duì)比試驗(yàn)(特異性):與間接抗球蛋白試驗(yàn)相比,觀察2種方法的特異性。提取158只犬紅細(xì)胞膜用DEA1.1抗血清進(jìn)行細(xì)胞抗原檢測(cè)。用其中1份DEA1.1抗原陽(yáng)性的細(xì)胞膜對(duì)158份犬血清進(jìn)行DEA1.1抗體檢測(cè),觀察ELISA方法的特異性。
3.1 細(xì)胞膜包被液及固定劑的摸索 用0.01 mol/L PBS(pH 7.4)、0.05 mol/L碳酸鹽緩沖液(pH 9.6)和0.5%PVA包被。ELISA結(jié)果顯示,所有的孔OD值均很低,并且陰陽(yáng)性紅細(xì)胞膜對(duì)比沒(méi)有明顯差別。認(rèn)為常用的ELISA包被液不能把完整或大塊的紅細(xì)胞膜包被到酶標(biāo)板上。用甲醛、多聚甲醛和戊二醛固定紅細(xì)胞后,間接抗球蛋白試驗(yàn)檢測(cè)結(jié)果顯示,幾種固定劑并不影響犬血型DEA1.1的抗原性,但發(fā)現(xiàn)長(zhǎng)時(shí)間保存后,甲醛和多聚甲醛會(huì)使紅細(xì)胞溶血。戊二醛增加紅細(xì)胞的粘性,并能使整個(gè)紅細(xì)胞固定到酶標(biāo)板上。選擇戊二醛作為固定劑固定包被紅細(xì)胞膜,進(jìn)行ELISA檢測(cè)。結(jié)果顯示,戊二醛可以很好的把整個(gè)的紅細(xì)胞膜固定到酶標(biāo)板上。并且不影響犬血型DEA1.1的抗原性。陰陽(yáng)性血清檢測(cè)結(jié)果P/N值隨戊二醛濃度變化而變化(如表1和圖1)。0.06%和0.13%最接近,P/N>2,但是結(jié)果所得數(shù)據(jù)離散度較大,同一樣本重復(fù)性不好。
表1 P/N值隨戊二醛濃度變化Table 1 P/N value affected by concentration of glutaraldehyde
圖1 P/N值隨戊二醛濃度變化Fig.1 P/N value affected by concentration of glutaraldehyde
3.2 抗原包被濃度和陽(yáng)性血清稀釋度的確定 將提取的紅細(xì)胞膜用0.01 mol/L PBS(pH 7.4)按照2倍倍比稀釋,結(jié)果如表2和圖2所示,抗原濃度在4~8 μg時(shí), P/N值最大。認(rèn)為最佳抗原包被量為4~8 μg/孔。 血清在800倍稀釋時(shí)P/N值小于2。被檢血清稀釋400倍時(shí)能檢出。與間接抗球蛋白試驗(yàn)相比,比抗球蛋白結(jié)果試驗(yàn)靈敏2倍以上(表3和圖3)。
表2 抗原包被濃度的優(yōu)化Table 2 Optimize the concentration of antigen-coated
圖2 抗原包被量的優(yōu)化Fig.2 Optimize the concentration of antigen-coated
圖3 間接ELISA方法靈敏度測(cè)定Fig.3 Sensitivity measurement of ELISA
表3 間接ELISA方法靈敏度測(cè)定Table 3 Sensitivity measurement of ELISA
3.3 封閉液的確定 以最適的抗原濃度和最佳抗原包被條件包被酶標(biāo)板,分別用4種不同的封閉液進(jìn)行封閉,結(jié)果反映,4種封閉液之間沒(méi)有明顯的差異,用5%的脫脂奶粉封閉液封閉特異性結(jié)合最低,所以選擇5%的脫脂奶粉作為封閉液。
3.4 血清反應(yīng)時(shí)間和反應(yīng)溫度的確定 如表4和圖4結(jié)果所示,37 ℃反應(yīng)90 min時(shí)P/N值可以達(dá)到最高值,26 ℃反應(yīng)120 min時(shí)才可以達(dá)到最大值,進(jìn)入平臺(tái)期。37 ℃為反應(yīng)的最佳溫度。37 ℃反應(yīng)90 min時(shí)P/N值基本達(dá)到最大,之后的P/N變化不大。本試驗(yàn)優(yōu)化的結(jié)果是反應(yīng)溫度為37 ℃,反應(yīng)時(shí)間為90 min。
表4 優(yōu)化血清反應(yīng)時(shí)間和反應(yīng)溫度Table 4 Optimization of serum reaction time and temperature
圖4 優(yōu)化血清反應(yīng)時(shí)間和反應(yīng)溫度Fig.4 Optimization of serum reaction time and temperature
3.5 穩(wěn)定性和重復(fù)性 -20 ℃長(zhǎng)時(shí)間保存并不影響檢測(cè)結(jié)果。反復(fù)凍融20次也不影響檢測(cè)結(jié)果。固定在ELISA板4 ℃保存后發(fā)現(xiàn)2個(gè)月內(nèi)不影響檢測(cè)結(jié)果。說(shuō)明犬血型DEA1.1抗原具有很高的穩(wěn)定性,可以長(zhǎng)期保存抗原,替換掉試劑紅細(xì)胞。應(yīng)用建立的間接ELISA方法對(duì)血清樣品進(jìn)行批內(nèi)和批間重復(fù)試驗(yàn),結(jié)果顯示,陽(yáng)性血清仍為陽(yáng)性,陰性血清仍為陰性結(jié)果,說(shuō)明間接ELSIA具有較好的重復(fù)性。
3.6 對(duì)比試驗(yàn)(特異性) 結(jié)果顯示,2種方法相比,提取158只犬紅細(xì)胞膜用DEA1.1抗血清進(jìn)行細(xì)胞抗原檢測(cè)和抗體檢測(cè)結(jié)果與間接抗球蛋白試驗(yàn)結(jié)果符合率為100%,具有相同的特異性。
目前,在獸醫(yī)臨床上缺乏準(zhǔn)確、簡(jiǎn)便和便宜的犬血型鑒定試劑。由于紅細(xì)胞常規(guī)保存方法較短,針對(duì)多種不同血型的紅細(xì)胞又很難收集并應(yīng)用到免疫血清和單克隆抗體的篩選。本試驗(yàn)根據(jù)國(guó)際現(xiàn)有的多克隆抗血清和犬DEA1.1血型檢測(cè)卡,對(duì)廣州地區(qū)本地犬和試驗(yàn)用比格犬就行篩查。并以此為基礎(chǔ)選擇DEA1.1血型強(qiáng)陽(yáng)性和陰性的犬作為試驗(yàn)動(dòng)物。
研究證明,通過(guò)特殊酶如菠蘿蛋白酶處理紅細(xì)胞增加DEA1.1血型檢出率,并通過(guò)抗球蛋白對(duì)照確認(rèn)DEA1.1血型抗原位點(diǎn)存在于紅細(xì)胞膜蛋白上[7]。醛化劑的醛基可以和紅細(xì)胞膜上蛋白質(zhì)的氨基交聯(lián)形成羧甲基,能使紅細(xì)胞蛋白分子之間形成交聯(lián),影響蛋白構(gòu)型使之保持固有的形態(tài)結(jié)構(gòu)[8]。有文獻(xiàn)報(bào)道用干燥固定的方法[9],或甲醛固定的方法固定紅細(xì)胞到96孔板中[10],建立的ELISA方法可以用于抗體的檢測(cè)。但是在本試驗(yàn)預(yù)試驗(yàn)進(jìn)行了驗(yàn)證,由于紅細(xì)胞內(nèi)部存在血紅蛋白,具有過(guò)氧化物酶的作用。會(huì)引起底物TMB發(fā)生顯色反應(yīng),因此基本不能使用。為了解決犬DEA1.1抗原長(zhǎng)期保存的問(wèn)題,本試驗(yàn)探索了多種固定劑對(duì)犬紅細(xì)胞進(jìn)行固定,最終發(fā)現(xiàn)戊二醛具有很高的固定作用,并且不會(huì)破壞犬DEA1.1血型抗原活性。因此,戊二醛固定紅細(xì)胞可以在HA試驗(yàn)代替新鮮的紅血細(xì)胞。同時(shí),它為制備DEA1.1單克隆抗體提供了基礎(chǔ)。
本試驗(yàn)對(duì)已有的紅細(xì)胞抗體ELISA檢測(cè)法[11]做了進(jìn)一步的改進(jìn),提取紅細(xì)胞膜的目的是為了去除紅細(xì)胞內(nèi)部的血紅蛋白,降低對(duì)反應(yīng)底物TMB的影響。經(jīng)探索發(fā)現(xiàn),戊二醛能把紅細(xì)胞膜牢固的固定到96孔板底部。從而提高了蛋白量差異較大的難題。雖然解決了很大的問(wèn)題,在結(jié)果判定過(guò)程中,發(fā)現(xiàn)陰陽(yáng)性結(jié)合檢測(cè)所得到的P/N值差異很小,不像其他文獻(xiàn)報(bào)道的ELISA方法[12],很明顯的判斷出陰陽(yáng)性的差別。對(duì)于此方法,本試驗(yàn)雖然做了改進(jìn),也能很穩(wěn)定的檢測(cè)出陰陽(yáng)性,但是其靈敏度并不是特別高。本試驗(yàn)為研制犬DEA1.1血型單克隆抗體打基礎(chǔ),建立了犬DEA1.1血型抗原間接ELISA方法,可以對(duì)犬DEA1.1血型抗體進(jìn)行高通量檢測(cè)。