雷 敏,劉 斌,阮梅林,羅 云
(華中科技大學(xué) 生命科學(xué)研究共享平臺(tái),湖北 武漢 430074)
蛋白質(zhì)分子量是蛋白的重要特征參數(shù),同時(shí)是研究蛋白均一性、聚集狀態(tài)和蛋白間相互作用等特征參數(shù)的基礎(chǔ)。因此,準(zhǔn)確有效地測(cè)定蛋白質(zhì)分子量非常關(guān)鍵[1-2]。傳統(tǒng)測(cè)定蛋白質(zhì)分子量的方法主要包括凝膠電泳法[3]、高效凝膠過(guò)濾色譜-多角度激光光散射法[4]、電噴霧離子化質(zhì)譜法[5]以及基質(zhì)輔助激光解吸電離質(zhì)譜法[6-7]。其中凝膠電泳法和凝膠色譜法操作復(fù)雜,對(duì)樣品的需求量高,受樣品的形狀和尺寸影響較大,結(jié)果準(zhǔn)確度低[8]。電噴霧離子化質(zhì)譜法和基質(zhì)輔助激光解吸電離質(zhì)譜法是近幾年發(fā)展迅速的生物大分子測(cè)定技術(shù),也是目前測(cè)定蛋白質(zhì)分子量的主要方法[2]。近年來(lái),由于分析超速離心法在測(cè)定蛋白質(zhì)分子量的同時(shí),可從相同數(shù)據(jù)組中同時(shí)分析出待測(cè)蛋白的均一性、聚集狀態(tài)、化學(xué)計(jì)量比和分子構(gòu)象等多項(xiàng)特征參數(shù),且該方法具有樣品需求量少、無(wú)需標(biāo)準(zhǔn)品、無(wú)破壞性和普適性高等諸多優(yōu)勢(shì),受到越來(lái)越多的研究者青睞[8-19]。
已有的文獻(xiàn)報(bào)道主要基于利用該方法測(cè)定蛋白質(zhì)分子量或其特征參數(shù),但對(duì)于檢測(cè)過(guò)程中樣品的初始濃度、離心轉(zhuǎn)速等實(shí)驗(yàn)條件的改變是否會(huì)對(duì)測(cè)定結(jié)果產(chǎn)生影響并未提及。而研究各項(xiàng)實(shí)驗(yàn)條件的影響并篩選出合適的參數(shù),對(duì)于準(zhǔn)確測(cè)定蛋白質(zhì)分子量及其他特征參數(shù)具有重要的意義。因此,本文以牛血清蛋白(albumin bovine serum,BSA)和人血清免疫球蛋白(human serum immunoglobulin G,IgG)作為研究對(duì)象,在分析超速離心-沉降速率(sedimentation velocity of analytical ultracentrifugation,AUC-SV)模式下,探究了樣品初始濃度、離心轉(zhuǎn)速和樣品上樣體積等實(shí)驗(yàn)條件對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響。在優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件下,建立了 AUC-SV 測(cè)定蛋白質(zhì)分子量的方法,同時(shí)可為AUC-SV 初學(xué)者提供技術(shù)指導(dǎo)。
分析型超速離心機(jī) ProteomeLab XL-I(美國(guó)Beckman 公司),型號(hào)為An-60 Ti 的4 孔轉(zhuǎn)頭,使用2-channel 樹(shù)脂中心件和藍(lán)寶石窗口組裝樣品池;紫外超微量分光光度計(jì)NanoDrop2000(Thermo 公司);基質(zhì)輔助激光解析電離串聯(lián)飛行時(shí)間質(zhì)譜MALDI-TOF/TOF MS 5800(美國(guó)AB SCIEX 公司)。
BSA(≥98%)標(biāo)準(zhǔn)品購(gòu)自Biofroxx 公司;IgG(≥95%)標(biāo)準(zhǔn)品購(gòu)自Sigma 公司;Tris(hydroxymethyl)aminomethane(試劑純,≥99%)購(gòu)自Sigma 公司;磷酸鹽溶液(phosphate buffered solution, PBS)購(gòu)自北京Biosharp 公司;NaCl(分析純)購(gòu)自上海滬試公司。
分別在分析型超速離心機(jī)中注入400 μL pH 8.0 PBS 和380 μL 樣品溶液。樣品濃度采用紫外超微量分光光度計(jì)進(jìn)行測(cè)定,記錄樣品在280 nm 處的吸光度A280。設(shè)置紫外檢測(cè)波長(zhǎng)為280 nm,掃描頻率為6 min/次,在4 ℃及40 000 r/min 的條件下離心,待樣品全部離心至池底時(shí)停止掃描和離心。使用SEDFIT軟件[20]對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合分析后可得蛋白質(zhì)分子量。
實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化按照樣品初始濃度、離心轉(zhuǎn)速、離心時(shí)間、離心溫度、樣品上樣體積和緩沖液體系的順序進(jìn)行,每次只改變單一實(shí)驗(yàn)條件,已優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件直接應(yīng)用到后續(xù)的分析中,待優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件則參考節(jié)1.3。
使用基質(zhì)輔助激光解析電離串聯(lián)飛行時(shí)間質(zhì)譜,在Linear High Mass Positive 模式下,以芥子酸為基質(zhì),測(cè)定未知蛋白質(zhì)分子量。
樣品性質(zhì)不同及儀器性能差異均可能影響到樣品適合的初始濃度。首先測(cè)定了BSA 和IgG 初始濃度A280分別為0.1、0.4、0.7、1.0、1.2 Abs 時(shí)的分子量,結(jié)果如表1 所示。從表1 可以看出,在上述濃度范圍內(nèi),擬合得到的BSA 和IgG 分子量均與標(biāo)準(zhǔn)分子量接近,相對(duì)誤差在±5%以?xún)?nèi)。但通過(guò)對(duì)擬合得到的峰形進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)BSA 在A280為0.1 Abs 時(shí),峰形延展較寬,擬合得到的分子量分布較實(shí)際范圍寬。而A280為1.2 Abs 時(shí),兩者的紫外掃描誤差達(dá)到±0.05 Abs,超過(guò)儀器允許范圍(±0.02 Abs)。因此,在進(jìn)行未知蛋白質(zhì)分子量檢測(cè)時(shí),建議調(diào)節(jié)樣品初始濃度A280在0.4~1.0 Abs 之間。
表1 不同樣品初始濃度下的分子量擬合結(jié)果
樹(shù)脂中心件能承受的最高轉(zhuǎn)速為40 000 r/min,因此比較了轉(zhuǎn)速在40 000、30 000、20 000 r/min 下的擬合結(jié)果,如表2 所示。在相同的離心轉(zhuǎn)速下,分子量較大的IgG 離心沉底的時(shí)間較短。在20 000 r/min時(shí),樣品經(jīng)20 h 的長(zhǎng)時(shí)間離心后仍然未能沉底。3 個(gè)轉(zhuǎn)速條件下擬合得到的分子量與標(biāo)準(zhǔn)分子量接近,相對(duì)誤差均在±2%以?xún)?nèi)。這說(shuō)明離心轉(zhuǎn)速對(duì)擬合結(jié)果影響不明顯,但轉(zhuǎn)速越低,離心時(shí)間要求越長(zhǎng),因此選擇40 000 r/min 可快速高效獲得蛋白質(zhì)分子量。
分析節(jié)2.2 所述(40 000 r/min)不同離心時(shí)間的數(shù)據(jù),結(jié)果如表3 所示。BSA 離心到池底需要10 h,IgG 需要 6 h,擬合得到的分子量分別為 68.0 和150 kDa,與標(biāo)準(zhǔn)分子量一致。當(dāng)離心時(shí)間較短(3~6 h)時(shí),未離心到池底的數(shù)據(jù)經(jīng)擬合得到的分子量與標(biāo)準(zhǔn)分子量也較為接近,相對(duì)誤差在±3%以?xún)?nèi)。IgG離心時(shí)間9 h 及以上,分子量相對(duì)誤差逐漸增大,由-5.33%增加到-7.33%,這是由于樣品沉底后,所采集到的數(shù)據(jù)濃度變化不明顯,有效數(shù)據(jù)減少,從而導(dǎo)致擬合誤差增大。因此,當(dāng)樣品離心到池底時(shí)即可停止離心,同時(shí)在進(jìn)行數(shù)據(jù)擬合時(shí)應(yīng)注意選取擬合區(qū)間,避免導(dǎo)入重復(fù)的沉底數(shù)據(jù)。
表2 不同離心轉(zhuǎn)速下的分子量擬合結(jié)果
表3 不同離心時(shí)間下的分子量擬合結(jié)果
BSA 和IgG 在溶液狀態(tài)下穩(wěn)定存在的最適溫度均為4 ℃,而SEDFIT 軟件擬合參數(shù)默認(rèn)溫度為20 ℃。因此對(duì)比了在4、10、20 ℃條件下的擬合結(jié)果,如表4所示。由表4 可知,4 ℃條件下擬合得到的分子量與標(biāo)準(zhǔn)分子量一致,隨著溫度升高,相對(duì)誤差明顯增大。而根據(jù)擬合得到的峰形及峰的數(shù)量來(lái)看,BSA 和IgG在3 個(gè)溫度條件下均未出現(xiàn)明顯分解或聚集現(xiàn)象,誤差增大的原因可能是隨著溫度升高,溶液的黏度降低,樣品沉降系數(shù)變小,從而分子量測(cè)定結(jié)果偏低[21]。此外,可推斷在此實(shí)驗(yàn)條件下,SEDFIT 軟件擬合時(shí)對(duì)溫度的要求并不嚴(yán)苛,因此對(duì)于未知蛋白質(zhì),可選擇在其穩(wěn)定的溫度下進(jìn)行離心即可。
表4 不同離心溫度下的分子量擬合結(jié)果
對(duì)上樣體積分別為100、200、380 μL 的實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行了比較,如表5 所示。隨著上樣體積的減少,BSA 和IgG 擬合得到的分子量與標(biāo)準(zhǔn)分子量之間的相對(duì)誤差都變大,且IgG 的相對(duì)誤差高于10%。這是由于樣品上樣體積減小,樣品池的有效掃描半徑和數(shù)據(jù)擬合區(qū)間縮短,導(dǎo)致擬合的有效數(shù)據(jù)量減少。此外,離心過(guò)程中IgG 的沉降速度更快,IgG 的有效擬合數(shù)據(jù)較BSA 少,導(dǎo)致擬合得到的IgG 分子量相對(duì)誤差較BSA 更大。因此建議對(duì)12mm 2-channel 樹(shù)脂中心件的上樣體積為380 μL。
表5 不同上樣體積的分子量擬合結(jié)果
比較了BSA 和IgG 在水、PBS 和150mmol/L NaCl-50mmol/L Tris 混合溶液3 種溶劑體系的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,如表6 所示。BSA 和IgG 在3 種溶液中均能穩(wěn)定存在,測(cè)定結(jié)果與標(biāo)準(zhǔn)分子量接近。但已有文獻(xiàn)報(bào)道,測(cè)量帶電體系時(shí)需要加入小分子鹽以屏蔽溶質(zhì)分子間靜電相互作用,以消除靜電相互作用對(duì)分子在溶液中運(yùn)動(dòng)產(chǎn)生的影響[22]。如對(duì)于多數(shù)等電點(diǎn)在4~5 之間的蛋白質(zhì),建議采用pH 范圍在7~9 之間的緩沖溶液。
表6 樣品在不同緩沖體系中的分子量擬合結(jié)果
在上述優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件下,以PBS 為緩沖體系,測(cè)定未知蛋白質(zhì)的分子量,并與質(zhì)譜測(cè)定結(jié)果進(jìn)行比較,如圖1 所示,表示蛋白質(zhì)濃度c 分布與沉降系數(shù)s 分布的對(duì)應(yīng)關(guān)系。AUC-SV 法和MALDI-TOF/TOF質(zhì)譜法測(cè)得該蛋白質(zhì)分子量分別為39.9 kDa(圖1(a))和40.0 kDa(圖1(b)),兩者測(cè)定結(jié)果一致,說(shuō)明該方法可用于測(cè)定其他蛋白質(zhì)的分子量。
圖1 未知蛋白質(zhì)分子量測(cè)定結(jié)果
本文通過(guò)對(duì)AUC-SV 實(shí)驗(yàn)條件研究發(fā)現(xiàn):離心轉(zhuǎn)速在20 000~40 000 r/min 對(duì)測(cè)定結(jié)果無(wú)明顯影響,但離心轉(zhuǎn)速越大,離心時(shí)間越短,建議優(yōu)先選擇40 000 r/min,以快速獲得實(shí)驗(yàn)結(jié)果。樣品初始濃度、離心時(shí)間、離心溫度和緩沖液體系的適宜范圍則較寬,樣品上樣體積對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響顯著,建議對(duì)于12mm 2-channel 樹(shù)脂中心件的上樣體積為380 μL。在優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件下,測(cè)得未知蛋白質(zhì)的分子量為39.9 kDa,與質(zhì)譜法測(cè)定結(jié)果(40.0 kDa)一致。該方法具有適宜條件范圍寬、非破壞性、無(wú)需標(biāo)準(zhǔn)品和普適性高等優(yōu)點(diǎn),可廣泛應(yīng)用于未知蛋白質(zhì)分子量的測(cè)定,其主要缺點(diǎn)則是對(duì)樣品的純度要求較高[23],否則測(cè)定結(jié)果可能會(huì)受到雜質(zhì)干擾。此外,本文詳細(xì)探討了各項(xiàng)實(shí)驗(yàn)條件對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響,可供AUC-SV 初學(xué)者學(xué)習(xí)借鑒。