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      飼料中添加還原型谷胱甘肽對中華鱉生長性能、血清生化指標(biāo)及肝臟超氧化物歧化酶基因表達(dá)的影響

      2020-09-27 04:09:28喻麗娟梁宏偉
      淡水漁業(yè) 2020年5期
      關(guān)鍵詞:歧化酶超氧化物中華

      陸 星,吳 凡,文 華,劉 偉,田 娟,蔣 明,喻麗娟,梁宏偉

      (中國水產(chǎn)科學(xué)研究院長江水產(chǎn)研究所,武漢 430223)

      中華鱉(Pelodiscussinensis),俗稱甲魚,隸屬脊椎動物亞門爬行綱龜鱉目鱉科鱉屬,是我國重要的特種水產(chǎn)養(yǎng)殖品種之一[1]。據(jù)2019年中國漁業(yè)年鑒報(bào)道,全國鱉的養(yǎng)殖產(chǎn)量達(dá)到31萬t以上。目前,中華鱉的養(yǎng)殖已逐漸從小規(guī)模的土池養(yǎng)殖進(jìn)入到集約的溫室養(yǎng)殖[2]。但集約化養(yǎng)殖過程中會出現(xiàn)大量的應(yīng)激因子,如擁擠、環(huán)境惡化(包括溫度、氨氮、溶氧、亞硝酸鹽)等導(dǎo)致機(jī)體代謝異常,引起氧化應(yīng)激和免疫功能下降,從而造成其氧化損傷、生長速度降低甚至引發(fā)病害。因此,運(yùn)用營養(yǎng)調(diào)控手段,在飼料中添加抗氧化物質(zhì)提高中華鱉的生長性能和抗氧化應(yīng)激能力,將對中華鱉的健康養(yǎng)殖產(chǎn)生積極作用。

      谷胱甘肽(glutathione,GSH)是由谷氨酸、半胱氨酸與甘氨酸結(jié)合而成的三肽活性物質(zhì)。作為真核細(xì)胞中重要的生物活性物質(zhì),GSH在清除機(jī)體內(nèi)的自由基時起關(guān)鍵作用[3]。對畜禽的研究表明,飼料中添加適量的GSH可提高仔豬[4]和肉雞[5]的生長性能和抗氧化能力。在水產(chǎn)養(yǎng)殖上,對GSH的研究主要集中于淡水和海水養(yǎng)殖魚類。例如,趙紅霞等[6]報(bào)道,飼料中添加GSH可以提高草魚(Ctenopharyngodonidellus)血清中胰島素生長因子IGF-1的水平,并增強(qiáng)其非特異性免疫功能。羅非魚(Oreochromisniloticus)飼料中添加一定量的GSH能夠顯著提高其總抗氧化能力(T-AOC)和超氧化物歧化酶(SOD)的活力[7]。王芳倩等[8]研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加適量的GSH能夠增強(qiáng)牙鲆(Paralichthysolivaceus)的生長和抗氧化能力。然而,關(guān)于GSH應(yīng)用在爬行類的研究報(bào)道還較少。因此,本實(shí)驗(yàn)以中華鱉為研究對象,探討飼料中添加GSH對中華鱉生長性能、血清生化指標(biāo)及肝臟超氧化物歧化酶基因表達(dá)的影響,以便為GSH在中華鱉飼料中的合理應(yīng)用提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 實(shí)驗(yàn)飼料

      以白魚粉、啤酒酵母和大豆?jié)饪s蛋白為蛋白源,豆油為脂肪源的基礎(chǔ)飼料,在其中分別添加0、100、200和400 mg/kg的GSH,并依次設(shè)置為G0(對照)、G100、G200和G400共4個試驗(yàn)組。還原型GSH購自西安皓源生物技術(shù)有限公司,飼料中GSH的實(shí)測值分別為:0、96.57、184.11和367.93 mg/kg。各組飼料配方及營養(yǎng)成分見表1。

      表1 各組飼料配方及其基本營養(yǎng)組成(干重)

      1.2 試驗(yàn)魚和飼養(yǎng)管理

      養(yǎng)殖試驗(yàn)在安徽喜佳農(nóng)業(yè)發(fā)展有限公司中華鱉養(yǎng)殖場的溫室進(jìn)行。試驗(yàn)前將雄性日本品系中華鱉馴養(yǎng)2周。結(jié)束后,選擇大小均勻、健康無病的雄性日本品系中華鱉(均重389.18 g±5.98 g)36只。試驗(yàn)鱉隨機(jī)分成4組,每組9只(3個平行,每個平行3只),飼養(yǎng)于12個長方形塑料箱(90 cm×60 cm×35 cm)中,箱中水深約25 cm,每個養(yǎng)殖箱中掛3塊網(wǎng)片,供中華鱉攀爬棲息,箱中設(shè)置一塊20 cm×30 cm的食臺,食臺設(shè)在水下2~3 cm。每天投喂6~8 mm左右的顆粒飼料,分三次投喂(8:30、13:30和18:30),并留樣用于基礎(chǔ)飼料營養(yǎng)成分分析。投喂量按其體重的1%,以20 min之內(nèi)吃完為宜。若觀察到有未食完餌料,收集烘干稱重并記錄。每晚20:00用吸管清除養(yǎng)殖箱中糞便,并補(bǔ)充新水,每3 d換水一次。養(yǎng)殖實(shí)驗(yàn)持續(xù)8周,飼養(yǎng)期間水溫控制在(32±1)℃。

      1.3 樣品采集與分析

      1.3.1 樣品采集

      養(yǎng)殖試驗(yàn)結(jié)束后,禁食24 h,稱重并計(jì)算其增重率、飼料效率和肝體比。將中華鱉從頸動脈處取血,制備血清;分離其背甲與腹甲,解剖取出肝臟并稱重,用于計(jì)算肝體比,另取約0.2 g左右的肝組織放入液氮冷凍保存,用于基因表達(dá)分析。取四肢肌肉樣品,并儲存于-20 ℃冰柜,用于常規(guī)營養(yǎng)成分的測定。

      1.3.2 生長指標(biāo)計(jì)算

      增重率(WGR)=100%×(Wt-W0)/W0

      飼料效率(FE)=增重量/投飼量

      肝體比(HSI)=100%×(肝臟重/體質(zhì)量)

      式中:Wt為試驗(yàn)結(jié)束時鱉的體質(zhì)量;W0為初始體質(zhì)量

      1.3.3 常規(guī)營養(yǎng)成分測定

      水分含量檢測采用直接干燥法(GB/T 5009.3-2003);粗蛋白含量檢測采用凱氏定氮法(GB/T 5009.5-2003);粗脂肪含量檢測采用索氏抽提法(GB/T 5009.6-2003);灰分含量測定采用灼燒稱重法(GB/T 5009.4-2003)(中華人民共和國衛(wèi)生部,中國國家標(biāo)準(zhǔn)化管理委員會,食品衛(wèi)生檢測方法理化部分)。

      1.3.4 血清生化指標(biāo)檢測

      血清總膽固醇(TCHO)、甘油三酯(TG)、血糖(GLU)、總蛋白(TP)含量、谷草轉(zhuǎn)氨酶(AST)和谷丙轉(zhuǎn)氨酶(ALT)活性采用日本希森美康全自動生化分析儀(Sysmex,CHEMIX-800)測定,所用試劑均購自Sysmex公司。

      1.4 RNA提取、反轉(zhuǎn)錄和熒光定量 PCR(qPCR)

      采用TRIZOL方法(Invitrogen,美國)提取各組中華鱉肝臟組織的總RNA,并用RNase-free DNase I(Takara)去除殘余的DNA,取1 μL RNA樣品快速高壓電泳以檢測RNA完整性,用紫外分光光度計(jì)(Biophotometer Eppendorf)對RNA濃度進(jìn)行測定,按照Fermentas RevertAidTM First試劑盒的操作說明書進(jìn)行cDNA第一鏈的合成。

      使用Applied Biosystems 7500實(shí)時定量PCR檢測系統(tǒng)進(jìn)行qPCR分析,熒光定量試劑SYBR Green Real Master Mix購自天根生化科技有限公司。根據(jù)GenBank序列設(shè)計(jì)超氧化物歧化酶1(sod1)和超氧化物歧化酶2(sod2)基因的引物(采用Primer Premier 6.0軟件設(shè)計(jì)),同時選用中華鱉β-actin基因作為內(nèi)參,引物序列見表2。PCR反應(yīng)體系:2×SYBR Green Real Master Mix 10 μL,10 μmol/L的正、反向引物各0.4 μL,10倍稀釋的第一鏈cDNA樣品5 μL,超純水補(bǔ)足至20 μL。PCR反應(yīng)條件:95 ℃,5 min;(95 ℃,10 s;60 ℃,30 s),40個循環(huán);然后每個循環(huán)增加1 ℃,從65 ℃升高到95 ℃進(jìn)行溶解曲線分析,各組反應(yīng)都重復(fù)3次。采用2-△△Ct方法計(jì)算各基因表達(dá)的變化倍數(shù)[9]。

      表2 熒光定量PCR所用的引物序列

      1.5 統(tǒng)計(jì)分析

      實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件中one-way ANOVA方差分析和Duncan氏均值多重比較對試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,P<0.05時認(rèn)為有顯著性差異。

      2 結(jié)果

      2.1 飼料中添加GSH對中華鱉生長性能的影響

      養(yǎng)殖試驗(yàn)結(jié)束后,各組的中華鱉存活率均為100%。由表3可知,添加GSH各組中華鱉的WGR和FE均高于G0組,且在G200組達(dá)到最大值(P<0.05)。而各組的HSI無顯著性差異(P>0.05)。

      表3 飼料GSH水平對中華鱉生長性能和飼料利用的影響

      2.2 飼料中添加GSH對中華鱉肌肉營養(yǎng)成分的影響

      由表4可知,GSH添加組的粗蛋白和粗脂肪含量均高于G0組,其中G200和G400組的粗蛋白含量顯著高于G0組,G200組的粗脂肪含量顯著高于G0組。而飼料GSH水平對中華鱉肌肉水分和灰分含量無顯著影響。

      表4 飼料GSH水平對中華鱉肌肉營養(yǎng)成分的影響

      2.3 飼料中添加GSH對中華鱉血清生化指標(biāo)的影響

      由表5可知,飼料中添加谷胱甘肽對中華鱉TCHO、TG、GLU、TP和ALT活性均無顯著影響。而與G0組相比,G400組血清AST的活性則顯著上升。

      表5 飼料GSH水平對中華鱉血清生化指標(biāo)的影響

      2.4 飼料中添加GSH對中華鱉肝臟超氧化物歧化酶基因表達(dá)的影響

      如圖1所示,GSH添加組的肝臟sod1基因相對表達(dá)量均高于G0組,其中G200組的相對表達(dá)量最高,顯著高于G0組;sod2基因相對表達(dá)量隨著GSH添加量的增加呈不斷升高的趨勢,在G400組出現(xiàn)最高值,相比G0組上升1.32倍。

      圖1 GSH對中華鱉肝臟sod1和sod2基因表達(dá)量的影響

      3 討論

      3.1 GSH對中華鱉生長性能的影響

      本研究中添加適量的GSH能顯著提高中華鱉的WGR和FE,表明GSH可以改善中華鱉的生長性能。該結(jié)果與GSH在牙鲆[8]、草魚[10]、羅非魚[11]、黃顙魚(Pelteobagrusfulvidraco)[12]、異育銀鯽(Carassiusauratusgibelio)[13]、鱸(Dicentrarchuslabrax)[14]及凡納濱對蝦(Litopenaeusvanname)[15]等水產(chǎn)動物中的研究結(jié)果相似。另外,部分研究報(bào)道了飼料中添加GSH對花鱸(Lateolabraxjaponicus)[16]、皺紋盤鮑(Haliotisdiscushannai)[17]和斑點(diǎn)叉尾鮰(Ictaluruspunctatus)[18]的生長無顯著影響,分析可能與GSH在不同動物的作用途徑有關(guān)。

      本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,G200組和G400組肌肉粗蛋白、G200組肌肉粗脂肪含量顯著高于G0組。這說明飼料中添加一定量的GSH可顯著影響中華鱉的粗蛋白和粗脂肪含量。這一結(jié)果與其在草魚[10]、羅非魚[11]和黃顙魚[12]上的結(jié)果相似,但在花鱸[16]和奧尼羅非魚[19]上沒有顯著性差異。這可能與GSH對不同魚種蛋白質(zhì)和脂肪代謝的作用方式不同有關(guān)。

      3.2 GSH對中華鱉血清生化指標(biāo)的影響

      血清膽固醇(TCHO)和甘油三酯(TG)是重要的脂類物質(zhì),它們含量的高低在一定程度上反映了機(jī)體內(nèi)的脂類吸收和肝臟脂肪代謝狀況[19]。在本實(shí)驗(yàn)中,添加GSH的各組血清TCHO和TG均高于G0組,這與在草魚[10]、羅非魚[11]和黃顙魚[12]上的研究結(jié)果一致。其原因可能是GSH 促進(jìn)了中華鱉體內(nèi)生長激素GH的分泌,從而增強(qiáng)了其脂肪代謝,導(dǎo)致血清TCHO和TG含量的升高。血糖(GLU)來源于肝糖原分解和腸道吸收,是機(jī)體主要的供能物質(zhì)。血清總蛋白(TP)含量可反映機(jī)體蛋白質(zhì)代謝和營養(yǎng)狀態(tài),同時也與免疫相關(guān)聯(lián)。研究表明,血清TP的含量主要受飼料蛋白源質(zhì)量的影響,進(jìn)而顯著影響機(jī)體的蛋白質(zhì)代謝[20]。本實(shí)驗(yàn)中,添加GSH的各組GLU和TP含量與G0組無顯著差異,這與在草魚[10]、羅非魚[11]和黃顙魚[12]上的研究結(jié)果相同。其原因可能與各組飼料原料和營養(yǎng)水平一致有關(guān)。

      谷草轉(zhuǎn)氨酶(AST)和谷丙轉(zhuǎn)氨酶(ALT)主要存在于肝細(xì)胞內(nèi),是機(jī)體內(nèi)轉(zhuǎn)氨基作用過程中非常重要的酶,臨床上常以血清中轉(zhuǎn)氨酶活性來衡量肝臟是否受損[21]。本實(shí)驗(yàn)中,添加GSH的各組血清AST活性均高于G0組,且在G400組達(dá)到顯著水平(P<0.05)。而飼料中添加GSH對ALT的活性無顯著影響,但G200和G400組的活性高于G0組。這些結(jié)果表明高劑量的GSH可能會影響對中華鱉肝臟的正常生理功能,但同時有助于轉(zhuǎn)氨基作用,進(jìn)而增強(qiáng)機(jī)體合成非必需氨基酸的能力。

      3.3 GSH對中華鱉肝臟超氧化物歧化酶基因表達(dá)的影響

      超氧化物歧化酶(SOD)廣泛存在于動植物中,根據(jù)分布的不同主要分為SOD1(Cu/Zn SOD,主要分布于胞漿)和SOD2(Mn/Fe SOD,主要分布于線粒體)。SOD是一種重要的抗氧化酶,能夠催化超氧化物發(fā)生歧化反應(yīng),生成氧氣和過氧化氫,從而降低或清除細(xì)胞內(nèi)氧自由基含量。因此,其活性的高低可在一定程度上反映機(jī)體內(nèi)氧自由基的代謝情況及抗氧化能力[22-23]。在正常情況下,sod基因的啟動子處于未開放狀態(tài),當(dāng)機(jī)體受到刺激或逆境脅迫時,相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子可與sod基因啟動子的順式作用元件結(jié)合,激活sod基因發(fā)生轉(zhuǎn)錄,進(jìn)而表現(xiàn)在翻譯水平上,使SOD的活性上升[24]。周婷婷等[25]研究表明,飼料中添加一定量的GSH能提高吉富羅非魚sodmRNA的表達(dá)量。對凡納濱對蝦的研究也有相似結(jié)果,劉曉華等[26]表明飼料中添加適量的GSH可誘導(dǎo)其肝胰腺細(xì)胞sod基因的轉(zhuǎn)錄表達(dá),進(jìn)而使肝胰腺細(xì)胞的SOD活性上升。本研究的結(jié)果顯示,GSH添加組的中華鱉肝臟sodmRNA表達(dá)量均高于G0組,其中G200組sod1 mRNA的表達(dá)量最高,而G400組sod2的表達(dá)量最高。這些結(jié)果表明,具有抗氧化功能的GSH可誘導(dǎo)中華鱉肝臟sod基因的表達(dá),從而抑制活性氧自由基介導(dǎo)的脂質(zhì)過氧化反應(yīng)[27]。

      綜上所述,飼料中添加一定量的GSH能改善中華鱉的生長性能,提高肌肉粗蛋白和粗脂肪含量以及部分血清生化指標(biāo)活性。此外,GSH還可誘導(dǎo)中華鱉肝臟sod1和sod2基因的轉(zhuǎn)錄表達(dá),從而提高機(jī)體的抗氧化能力。

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