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    羊肚菌多糖的提取及含量測定

    2020-09-22 02:08:08辛青霞蘆永昌祁海紅
    關鍵詞:菌子柱層析羊肚

    辛青霞, 蘆永昌*, 趙 英, 祁海紅

    (1.青海民族大學藥學院,青海西寧810007; 2.青海省青藏高原植物資源化學研究重點實驗室,青海西寧810007;3.青海省藥物分析重點實驗室,青海西寧810007)

    羊肚菌(Morehella esculenta (L.)Pers)又稱羊肚菜、羊肚蘑,因其菌蓋表面生有許多小凹坑,外觀極似羊肚而得名.羊肚菌隸屬于子囊菌亞門(Asco-mycotina)、盤菌綱(Discomycetes)、盤菌目(Pezizales)、羊肚菌科(Morchellaceae)、羊肚菌屬(Morchella)[1],營養(yǎng)豐富,是一類大型的食藥用真菌.羊肚菌性平,味甘寒,無毒;有益腸胃、助消化、化痰理氣、補腎壯陽、補腦提神、強身健體、預防感冒和增強人體免疫力等功效[2].羊肚菌最早記載于《本草綱目》,中醫(yī)認為羊肚菌具有化痰理氣、補腎、壯陽、補腦和提神的功效[3].羊肚菌多糖是其主要藥用有效成分,有能抑制腫瘤細胞生長、增強機體免疫功能、降血脂和抗菌等功效.四百年來,人們從記載、采食到研究其分布、分類、生態(tài)、栽培、化學成分、保健品和發(fā)酵等方面[4-7],獲得了突破性的進展.20世紀60年代成功發(fā)酵羊肚菌菌絲體,美國20世紀80年代首次室內(nèi)羊肚菌子實體栽培成功,引起了許多科學家和商界人士對羊肚菌的關注和興趣.20世紀90年代報道了羊肚菌生活史細胞學研究成果[8].近年,隨著分子生物學的興起,開展了羊肚菌分子分類學的研究,逐漸解決了羊肚菌屬的分類方面的爭議[9-10].羊肚菌的形態(tài)分類:根據(jù)英國真菌索引數(shù)據(jù)庫提供的最新資料,羊肚菌屬下的分類名稱已達313個(含種、亞種和變種等),這些名稱主要由歐美標本發(fā)表為依據(jù)[11-13].環(huán)境和氣候等外界條件的變化會導致羊肚菌子囊果的形狀、大小和顏色的改變,同物異名和異物同名的現(xiàn)象嚴重,張冠李戴的名稱錯用普遍[14-16].有人將羊肚菌屬分為3個大類:黑色羊肚菌類、黃色羊肚菌類和半開羊肚菌類[17].為深入研究該屬植物,探究其有效成分,本實驗建立了紫外分光光度法測定羊肚菌中多糖含量的方法,為該屬藥材的開發(fā)利用及質(zhì)量控制提供了一定的依據(jù).

    1 實驗方法

    1.1 材料羊肚菌,于2015年6月青海省互助縣北山林場采集,由青海民族大學毛繼祖教授鑒定.

    1.2 實驗儀器與設備LC-10AT型高效液相色譜儀(日本島津),TSKgel G3000 PWXL(7.8 mm I.D.×30 cm)(日本東曹株式會社),Mettler Toledo AL104分析天平(瑞士Mettler-Toledo公司),Anke TGL-16G高速離心機(上海安亭科學儀器廠),Rotavapor R-3旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(瑞士BUCHI公司),F(xiàn)DU-1100型冷凍干燥機(EYELA東京理化器械株式會社),90-1雙向磁力攪拌器(上海振榮科學儀器有限公司),Milli-Q Academic A10超純水系統(tǒng)(美國Millipore公司),BSZ-100自動部分收集器(上海滬西分析儀器廠有限公司),HL-2恒流泵(上海滬西分析儀器廠有限公司),722分光光度計(上海精密科學儀器有限公司),MD34透析袋(透析相對分子質(zhì)量:3 500 D)(美國Gentihold公司).

    1.3 試劑TOYOPEARL DEAE-650M 填料,SepharoseTM CL-6B填料,Sephacryl S-200填料.苯酚(分析純)(天津省永達化學試劑有限公司),硫酸(分析純)(國藥集團化學試劑有限公司),氯化鈉注射液(湖南科倫制藥有限公司),水(自制三重蒸餾水).

    2 實驗方法及步驟

    2.1 羊肚菌子實體多糖的提取取陰干后的羊肚菌4.0 kg,粉碎后過20目篩,水料比5∶1提取羊肚菌多糖,60℃超聲波提取3次,每次2 h,濾布過濾并收集濾液,濾液于6 000 rpm離心15 min,離心后取上清液合并,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮至200 mL.

    2.2 羊肚菌多糖子實體醇沉往已濃縮的多糖溶液中緩慢加入5倍體積的95%乙醇,同時用玻璃棒攪動,使多糖均勻沉淀,至混合液中乙醇濃度約為80%,于4℃冰箱中放置10 h后,將混合液轉(zhuǎn)移至離心管,6 000 r/min 離心 20 min,棄去上清液,向所得多糖沉淀加95%乙醇,重復以上步驟2次后,加蒸餾水將沉淀全部溶解,冷凍干燥.

    2.3 羊肚菌子實體多糖脫蛋白Sevag法脫蛋白主要是根據(jù)蛋白質(zhì)在氯仿等有機溶劑中容易變性的特點,從而使蛋白質(zhì)變性成膠狀,使其存留在氯仿和水交接面,最終用離心法除去變性層.Sevag法脫蛋白:取上述“2.2”中冷凍干燥后的多糖樣品,加蒸餾水至100 mL溶解混勻,將多糖溶液與Sevag試劑按照體積比4∶1進行混合,磁力攪拌器攪拌30 min 后,轉(zhuǎn)入離心管,6 000 r/min 離心 20 min.混合液共分為3層,收集上層多糖溶液,去除中間層變性蛋白和下層有機溶劑,按照上述步驟重復操作,直至無變性蛋白為止.將4倍95%乙醇緩慢加入脫蛋白后的多糖溶液,并按照2.2中的步驟進行醇沉,醇沉離心后,加蒸餾水將沉淀全部溶解,冷凍干燥.活性炭酸性條件下脫色效果較堿性條件下好,本實驗稱取羊肚菌多樣品糖12.5 g,加入2%的活性炭,pH調(diào)節(jié)至6,在50℃條件下脫色60 min.脫色完成后,布氏漏斗過濾至濾液澄清,冷凍干燥,最終得到羊肚菌子實體粗多糖干品(MEWP),備用.

    2.4 羊肚菌子實體多糖的離子交換柱層析DEAE-650M填料處理:取250.0 g DEAE-650M型號的離子交換填料,加入蒸餾水,通過攪拌棒攪拌靜置,去除上層懸浮液中的小顆粒,重復2~3次,直至懸浮液不再渾濁.將1.0 mol/L NaCl溶于50.0 mmol/L磷酸鹽中,利用緩沖液平衡填料,緩沖液平衡完后,用蒸餾水反復洗滌至中性.使用真空干燥器將填料進行脫氣處理.經(jīng)過處理的DEAE-650M裝入2.2 cm×80 cm層析柱中,裝柱過程中避免氣泡產(chǎn)生,利用恒流泵泵送蒸餾水,裝柱完成后,調(diào)整流速為0.5 mL/min,流速穩(wěn)定后用蒸餾水洗脫約20 h,直至柱床穩(wěn)定.

    羊肚菌多糖樣品DEAE-650M離子交換柱:層析,精密稱取羊肚菌子實體粗多糖干品(MEWP)1.529 7 g,加入蒸餾水,配制成 51.0 mg/mL 的粗多糖溶液,經(jīng)DEAE-650M離子交換柱層析,依次用蒸餾水和 0.1、0.3、0.5、0.7 mol/L NaCl溶液及 0.1、0.3、0.5 mol/L NaOH 溶液洗脫,自動部分收集器收集,6 mL/管,苯酚-硫酸法跟蹤檢測,以A490為縱坐標,洗脫體積為橫坐標,繪制洗脫曲線,并按峰收集.將收集到的羊肚菌子實體多糖溶液濃縮后用MD34透析袋蒸餾水透析至少48 h,冷凍干燥,得到初步純化的6個組分,羊肚菌子實體多糖MEWPH2O、MEWP-0.1、MEWP-0.3、MEWP-0.5、MEWP-0.7和MEWP-0.3 NaOH,計算各組分多糖得率,為了后續(xù)多糖制備工作,重復以上操作制備3次.

    2.5 羊肚菌子實體多糖樣品的分析及制備將多糖樣品Sepharose CL-6B進行凝膠柱層析分析,最后用苯酚-硫酸法檢測,繪制洗脫曲線圖,并按峰收集.最后進行多糖樣品Sepharose CL-6B凝膠柱層析制備:稱取多糖得率較大的MEWP-H2O組分,配置成質(zhì)量濃度為50.2 mg/mL的多糖溶液,上樣5 mL,自動部分收集器收集,每管溶液稀釋20倍,苯酚-硫酸法檢測,繪制洗脫曲線圖,并按峰收集.重復上樣6次,收集到的羊肚菌子實體多糖溶液濃縮至適當體積,用MD34透析袋蒸餾水透析至少48 h,冷凍干燥后進一步純化羊肚菌子實體多糖.

    將多糖樣品Sephacryl S-200凝膠柱層析分析,繪制洗脫曲線圖,并按峰收集.最后還是制備多糖樣品Sephacryl S-200:將Sephacryl S-200凝膠裝入 2.5 cm ×100 cm 層析柱中,以 0.70 mL/min進行裝柱,0.60 mL/min 0.9%生理鹽水洗脫平衡,平衡后流速為0.41 mL/min.稱取多糖得率較大的MEWP-H2O-Ⅱ組分,配置成質(zhì)量濃度為40.1 mg/mL的多糖溶液,上樣20 mL,自動部分收集器收集,18 min/管,每管溶液稀釋20倍,苯酚-硫酸法檢測,繪制洗脫曲線圖,并按峰收集.將收集到的羊肚菌子實體多糖溶液濃縮至適當體積,用MD34透析袋蒸餾水透析至少48 h,冷凍干燥得進一步純化羊肚菌子實體多糖.

    2.6 高效凝膠滲透色譜法(HPGPC)測定多糖的相對分子質(zhì)量和均一性

    2.6.1 TSK-Gel G3000PWXLd 的相對分子質(zhì)量標準曲線繪制 采用島津LC-10AT型高效液相色譜儀,TSKgel G3000 PWXL(7.8 mm I.D.×30 cm)色譜柱,柱溫40℃,流動相為0.9%NaCl溶液,流速為0.6 mL/min,進樣量20 μL,檢測波長280 nm.由于多糖樣品相對分子質(zhì)量的大小與其在凝膠柱上的洗脫體積密切相關,且在一定分子質(zhì)量范圍內(nèi),其有效分配系數(shù)Kav(分離化合物在內(nèi)水和外水體積中的比例關系)與相對分子質(zhì)量對數(shù)lg Mw呈線性關系.因此,可以選擇不同相對分子質(zhì)量的標準葡聚糖,分次上樣,并分析出每種標準品的洗脫體積.其中,色譜柱的 Vt=11.24 mL,Vo=5.29 mL,根據(jù)(1)式計算Kav,以有效分配系數(shù)Kav為縱坐標,lg Mw為橫坐標繪制標準曲線.

    其中,Ve為待測樣品的洗脫體積,Vo為 TSK-Gel G3000PWXL色譜柱的外水體積,Vt為 TSK-Gel G3000PWXL色譜柱的總體積.

    2.6.2 多糖樣品相對分子質(zhì)量及均一性測定 將以上需要測定的多糖樣品,配置成約為6.0 mg/mL的溶液,過0.22μm濾膜,檢測分析.根據(jù)各多糖樣品的洗脫體積Ve,對照色譜柱相對分子質(zhì)量標準曲線,確定多糖樣品相對分子質(zhì)量及觀察各組分的均一性.

    2.7 羊肚菌子實體多糖的離子交換柱層析結(jié)果羊肚菌子實體粗多糖經(jīng)過DEAE-650M離子交換柱層析,用不同濃度的NaCl溶液和NaOH溶液進行離子交換柱層析洗脫,同時苯酚-硫酸法跟蹤檢測各個組分多糖含量,以A490為縱坐標,洗脫體積為橫坐標,繪制洗脫曲線,并按峰收集,結(jié)果見圖1.分別得到由蒸餾水和 0.1、0.3、0.5、0.7 mol/L NaCl及 0.3 mol/L NaOH溶液洗脫下的6個多糖組分:MEWP-H2O、MEWP-0.1、MEWP-0.3、MEWP-0.5、MEWP-0.7、MEWP-0.3 NaOH.多糖含量分別為上樣量的27.46%、5.66%、12.21%、5.20%、1.56%和0.25%.

    2.8 羊肚菌子實體多糖Sepharose CL-6B凝膠柱層析結(jié)果由于經(jīng)DEAE-650M離子交換柱層析分離的各多糖組分含量有較大差異,所以本文針對 MEWP-H2O、MEWP-0.1、MEWP-0.3 和MEWP-0.5的4個組分進行凝膠柱層析分離純化研究.將4種組分分別上樣后,0.9%NaCl溶液0.35 mL/min進行洗脫,以A490為縱坐標,洗脫體積為橫坐標,繪制洗脫曲線并按峰收集,結(jié)果見圖2和圖3.

    圖1 羊肚菌子實體粗多糖離子交換柱層析洗脫曲線Fig.1 Elution curve of DEAE-650M column chromatography of MEWP

    圖2 MEWP-H 2O CL-6B凝膠柱層析洗脫曲線Fig.2 Elution curve of Sepharose CL-6B column chromatography of MEWP-H 2O

    圖3 MEWP-0.1、MEWP-0.3、MEWP-0.5 CL-6B凝膠柱層析洗脫曲線Fig.3 Elution curve of Sepharose CL-6B column chromatography of MEWP-0.1,MEWP-0.3 and MEWP-0.5

    由于MEWP-H2O上樣濃度僅為另外3種多糖組分的1/2,由圖2和圖3可知,MEWP-H2O吸光度值明顯高于另外3個組分,該組分多糖樣品相對分子質(zhì)量集中,且多糖含量較其他3組分高,可看出MEWP-H2O是由不同多糖組成的,因此,主要針對MEWP-H2O樣品進行進一步分離純化制備.

    2.8.1 羊肚菌子實體多糖Sepharose CL-6B凝膠柱層析及制備結(jié)果 將以上所述MEWP-H2O組分進行Sepharose CL-6B層析柱制備,將其上樣后,0.9%NaCl溶液 0.35 mL/min 進行洗脫,稀釋20倍后,以A為縱坐標,洗脫體積為橫坐標,繪制洗脫曲線并按峰收集,結(jié)果見圖4.

    圖4 MEWP-H 2 O CL-6B凝膠柱層析洗脫曲線Fig.4 Elution curve of Sepharose CL-6B column chromatography of MEWP-H 2O

    根據(jù)吸光度按峰收集,可得到洗脫體積為91.0 ~112.0 mL 的 MEWP-H2O- Ⅰ組分(70.82 mg)和洗脫體積為 115.5 ~175.0 mL 的組分MEWP-H2O-Ⅱ(868.58 mg),得率分別為4.72%和 57.91%.

    羊肚菌子實體多糖進行Sephacryl S-200凝膠柱層析分析及制備結(jié)果:還是針對含量較多MEWPH2O-Ⅱ的組分進行凝膠柱層析分離純化研究.其余與上述羊肚菌子實體多糖Sepharose CL-6B凝膠柱層析制備方法一致,以A為縱坐標,洗脫體積為橫坐標,繪制洗脫曲線并按峰收集,結(jié)果見圖5.

    圖5 MEWP-H 2 O-Ⅱ Sephacryl S-200凝膠柱層析洗脫曲線Fig.5 Elution curve of Sephacryl S-200 column chromatography of MEWP-H 2O-Ⅱ

    如圖5所示,按照吸光度可將其分為3個組分:MEWP-H2O-Ⅱa(22.40 mg)、MEWP-H2O-Ⅱb(313.47 mg)和 MEWP-H2O-Ⅱc(274.52 mg),得率分別為:2.80%、39.18%和34.32%.最后對其進行相對分子質(zhì)量及均一性檢測.

    2.8.2 HPGPC測定多糖的相對分子質(zhì)量和均一性結(jié)果 TSK-Gel G3000PWXL相對分子質(zhì)量的標準曲線:標準葡聚糖相對分子質(zhì)量Mw及其洗脫體積Ve見表1,TSK-Gel G3000PWXL 色譜柱總體積Vt=13.234 0 mL,外水體積V0=6.049 0 mL,根據(jù)公式計算Kav=Ve-V0/Vt-V0,以 Kav為縱坐標,lg Mi為橫坐標繪制標準曲線,見圖6,得回歸方程 Kav=-0.189 7 lg Mi+1.039,r=0.996 3.

    表1 TSK-Gel G3000PWXL色譜柱的標準葡聚糖分子量、洗脫體積及有效分配系數(shù)Tab.1 Molecular weights,elution volumes and kav of standard dextrans on TSK-Gel G3000PWXL

    圖6 TSK-Gel G3000PWXL相對分子質(zhì)量的標準曲線Fig.6 Molecular weight standard curve of TSK-Gel G3000PWXL

    TSK-Gel G3000PWXL多糖樣品相對分子質(zhì)量及均一性測定結(jié)果:將上述MEWP-H2O-Ⅱa、MEWP-H2O-Ⅱb及MEWP-H2O-Ⅱc多糖組分分別配制成質(zhì)量濃度為 5.9、6.1 及 5.7 mg/mL溶液,使樣品充分溶解,過0.22μm濾膜,高效液相色譜檢測,結(jié)果如圖7.

    圖7 MEWP-H 2 O-Ⅱa、MEWP-H 2 O-Ⅱb及MEWP-H 2 O-Ⅱc色譜圖Fig.7 Chromatogram of MEWP-H 2O-Ⅱa,MEWP-H 2 O-Ⅱb and MEWP-H 2 O-Ⅱ

    根據(jù) 2.6.1 中公式 Kav=(Ve-V0)/(Vt-V0)計算相應Kav值,再根據(jù)TSK-Gel G3000PWXL相對分子質(zhì)量的標準曲線公式可計算出lg Mi,記錄以上3組色譜峰的各級分保留時間及相應峰高Hi,分別積分計算出3個多糖樣品的數(shù)均相對分子質(zhì)量Mn及重均相對分子質(zhì)量Mw,從而計算出可以衡量其相對分子質(zhì)量均一性的多分散系數(shù)D(Mw/Mn).經(jīng)積分計算后得MEWP-H2O-Ⅱa數(shù)均相對分子質(zhì)量Mn為78.11 kD,重均相對分子質(zhì)量Mw為 91.68 kD,多分散系數(shù) D 為 1.17;MEWPH2O-Ⅱb的 Mn=27.21 kD,Mw=33.93 kD,D=1.25,及 MEWP-H2O-Ⅱc的 Mn=7.14 kD,Mw=9.99 kD,D=1.40.根據(jù)色譜圖7 可看出,MEWP-H2O-Ⅱa為一組對稱峰,MEWP-H2O-Ⅱb與MEWP-H2O-Ⅱc均為一組單一對稱峰.且根據(jù)多分散系數(shù)均小于2.50,可知以上3個多糖組分均為高純度多糖.

    3 結(jié)果與討論

    3.1 結(jié)果羊肚菌子實體經(jīng)超聲波提取法、乙醇沉淀、Sevag法脫蛋白和活性炭脫色后得到粗多糖(MEWP),得率約1.87%,呈土黃色.羊肚菌粗多糖經(jīng)DEAE-650M離子交換柱層析,進一步分離,根據(jù)不同多糖組分具不同電荷排列方式及相對分子質(zhì)量,分為 MEWP-H2O、MEWP-0.1、MEWP-0.3、MEWP-0.5、MEWP-0.7、MEWP-0.3 NaOH 6個多糖組分.根據(jù)各多糖組分的含量,選取含量最高的MEWP-H2O多糖進行進一步的分離純化,利用Sepharose CL-6B凝膠柱層析得MEWPH2O-Ⅰ組分及MEWP-H2O-Ⅱ組分,得率為分別為4.72%及57.91%.針對 MEWP-H2O-Ⅱ組分進行Sephacryl S-200凝膠柱層析、蒸餾水透析等方法純化,最終分離純化得到3個多糖組分,即MEWP-H2O- Ⅱa(22.40 mg)、MEWP-H2O-Ⅱb(313.47 mg)、MEWP-H2O- Ⅱc(274.52 mg),得率分別為 2.80%、39.18%和 34.32%.

    3.2 討論在對羊肚菌子實體提取過程中,本實驗只利用不帶電荷的蒸餾水進行超聲波提取,未進行酸性水溶液或堿性水溶液提取,因此,在DEAE-650M離子交換柱層析分離時,用蒸餾水洗脫下的多糖組分高于其他帶電荷組分.

    在利用Sepharose CL-6B及Sephacryl S-200凝膠柱層析進行分離多糖時,為確定所分離多糖在其相應的分離相對分子質(zhì)量范圍內(nèi),需利用藍葡聚糖標準品、葡萄糖標準品及與待測多糖相對分子質(zhì)量相近葡聚糖標準品進行預實驗,保證待測多糖在凝膠柱層析分析的合適分離區(qū)間內(nèi).

    由于多糖這類高聚物的相對分子質(zhì)量具有分散性,對于這種性質(zhì),可以描述為:檢測出其某種形式的相對分子質(zhì)量分布曲線,一般為直接測定其平均相對分子質(zhì)量.其中,以數(shù)量為統(tǒng)計權重的為數(shù)均相對分子質(zhì)量,以重量為統(tǒng)計權重的為重均相對分子質(zhì)量.對于一般合成聚合物,可以看成是若干同系物的混合物,其相對分子質(zhì)量可看作是連續(xù)分布的.因此,本文在測定相對分子質(zhì)量時,通過積分計算出多糖的數(shù)均相對分子質(zhì)量及重均相對分子質(zhì)量來進行表達.

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