李品玉,盛文杰,張嫄怡,楊堅(jiān),鄭培麗,張菲菲
結(jié)直腸癌(colorectal cancer,CRC)是全球范圍內(nèi)最常見的惡性腫瘤之一,在我國(guó)其發(fā)病率和死亡率均位居惡性腫瘤第5位[1]。腫瘤細(xì)胞增殖和凋亡抵抗是導(dǎo)致不良預(yù)后的原因之一,磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol-3-kinases,PI3K)/蛋白質(zhì)絲氨酸蘇氨酸激酶(protein-serine-threonine kinase,AKT)信號(hào)通路是經(jīng)典的腫瘤相關(guān)信號(hào)通路,對(duì)CRC細(xì)胞增殖和凋亡發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用[2]。因此,針對(duì)PI3K/AKT信號(hào)通路關(guān)鍵節(jié)點(diǎn)以及調(diào)控因子進(jìn)行研究有望為改善CRC患者預(yù)后提供新的突破點(diǎn)。腫瘤壞死因子受體相關(guān)蛋白1(tumor necrosis factor receptorassociated protein 1,TRAP1)是近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn)的腫瘤相關(guān)蛋白,在多種腫瘤中異常表達(dá)[3],廣泛參與調(diào)節(jié)腫瘤細(xì)胞周期、增殖、凋亡、遷移、上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)等多種生物學(xué)行為。目前TRAP1蛋白與CRC關(guān)系的研究已初見報(bào)道[4-5],但其相關(guān)生物學(xué)功能仍不清楚。本研究旨在探討TRAP1在CRC中的表達(dá)和對(duì)CRC細(xì)胞增殖、凋亡的影響,及其對(duì)PI3K/AKT信號(hào)通路的調(diào)節(jié)作用,為針對(duì)TRAP1蛋白設(shè)計(jì)抗癌藥物提供理論和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 主要材料 (1)標(biāo)本:選取2018年在南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院進(jìn)行手術(shù)治療的6 例CRC 患者的癌及癌旁配對(duì)黏膜組織,所有患者手術(shù)前均未接受過(guò)放化療或靶向治療。所有標(biāo)本在離體后均經(jīng)預(yù)冷的PBS 洗滌干凈,液氮迅速冷凍后置于-80 ℃保存。(2)細(xì)胞及主要試劑:人結(jié)直腸癌細(xì)胞株LOVO、HT29、HCT116、RKO、SW480 及正常結(jié)腸永生化上皮細(xì)胞NCM460 均由南方醫(yī)科大學(xué)病理實(shí)驗(yàn)室提供。胎牛血清和RPMI-1640 購(gòu)自美國(guó) GIBCO 公司,TRAP1(兔多抗)、GAPDH(鼠單抗)、CyclinD1(兔多抗)、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG 二抗、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的山羊抗鼠IgG二抗購(gòu)于Proteintech公司,Cleaved-casp3(兔多抗)、casp3(兔多抗)購(gòu)自Affinity公司,p-PI3K(兔單抗)、PI3K(兔單抗)、p-AKT(兔多抗)、AKT(兔多抗)抗體購(gòu)自Cell Signaling Technology 公司;LipofectamineTM3000 購(gòu)自 Life Technologies,CCK8 試劑盒購(gòu)自北京全式金生物技術(shù)有限公司,細(xì)胞周期及Annexin V-FITC/PI 雙染細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒購(gòu)自南京凱基生物科技發(fā)展有限公司。
1.2 方法
1.2.1 通過(guò)Oncomine 數(shù)據(jù)庫(kù)分析TRAP1 表達(dá) 打開Oncomine 數(shù)據(jù)庫(kù)(https://www.oncomine.org/),選擇分析類型為Cancervs.Normal Analysis,腫瘤類別(Cancer Type)選擇Colorectal Cancer進(jìn)行分析,設(shè)置P<0.05為有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1.2.2 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的SW480細(xì)胞,以1×106個(gè)/孔接種于6 孔板中,待細(xì)胞密度為30%~50%時(shí)采用Lipofectamine 3000分別轉(zhuǎn)染對(duì)照序列NC和TRAP1的干擾序列,操作嚴(yán)格按照Lipofectamine 3000 轉(zhuǎn)染試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行。TRAP1 干擾序列購(gòu)自蘇州吉瑪公司,si-1 引物:上游5′-CGGUCCCUGUACUCAGAAATT-3′ ,下 游 5′-UUUCUGAGUACAGGGACCGGG-3′;si-2 引物:上游5′-GCUACACCCUGCACUAUAATT-3′,下 游 5′-UUAUAGUGCAGGGUGUAGCGG-3′;si-3 引物:上游 5′-CCTTCCTGGATGCTCTGCATT-3′,下游5′-TGCAGAGCATCCAGGAAGGCC-3′。
1.2.3 Western blot 檢測(cè)TRAP1 蛋白對(duì)細(xì)胞周期相關(guān)蛋白、凋亡相關(guān)蛋白及PI3K/AKT通路的影響 提取組織和細(xì)胞全蛋白,定量后用10%SDS-PAGE 凝膠對(duì)蛋白進(jìn)行電泳分離,濕法轉(zhuǎn)印至PVDF膜上,將膜放入5%牛奶,配搖床緩慢搖動(dòng)封閉1 h,加入稀釋后的一抗TRAP1(1∶1 000)、CyclinD1(1∶1 000)、Cleaved-Casp3(1∶1 000)、Casp3(1∶1 000)、p-PI3K(1∶1 000)、PI3K(1∶1 000)、p-AKT(1∶1 000)、AKT(1∶1 000)、GAPDH(1∶1 000)4 ℃孵育過(guò)夜,次日PBST洗膜3次,加入辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG 二抗(1∶10 000),配搖床室溫孵育1 h,PBST洗膜3次后ECL化學(xué)發(fā)光顯色,并應(yīng)用Image J 軟件分析目標(biāo)蛋白和內(nèi)參蛋白灰度值,相對(duì)表達(dá)量=目標(biāo)灰度值/內(nèi)參灰度值。
1.2.4 CCK-8 法檢測(cè)TRAP1 對(duì)CRC 細(xì)胞增殖的影響 將TRAP1的干擾片段及對(duì)照片段瞬時(shí)轉(zhuǎn)染入SW480細(xì)胞,24 h后消化并計(jì)數(shù),以1 000 個(gè)/孔的密度接種于96 孔板,分別于24、48、72、96、120 h將孔內(nèi)培養(yǎng)基更換為含10%CCK-8試劑的培養(yǎng)基,37 ℃、5%CO2條件下孵育2 h,全自動(dòng)酶標(biāo)儀490 nm 處測(cè)定光密度(OD)值,并繪制細(xì)胞增殖曲線。每組細(xì)胞設(shè)置5個(gè)平行復(fù)孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.5 平板克隆實(shí)驗(yàn)檢測(cè)TRAP1對(duì)CRC 細(xì)胞克隆形成能力的影響 將干擾TRAP1的SW480細(xì)胞及對(duì)照細(xì)胞計(jì)數(shù)后以200 個(gè)/孔種植于 6 孔板中,37 ℃、5%CO2條件下培養(yǎng) 2 周,甲醇固定15 min,PBS 洗 3 次,吉姆薩染色15 min,水洗后拍照計(jì)數(shù)克隆數(shù)目。
1.2.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)TRAP1對(duì)CRC 細(xì)胞周期的影響 將干擾TRAP1 的SW480 細(xì)胞及對(duì)照細(xì)胞消化后離心棄上清,預(yù)冷的PBS 洗滌2 次,預(yù)冷的75%乙醇固定1 h,離心棄上清加入25 μL PI染色液和10 μL RNase A,4 ℃避光反應(yīng)30 min,利用流式細(xì)胞儀對(duì)各組細(xì)胞進(jìn)行檢測(cè)。
1.2.7 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)TRAP1對(duì)CRC 細(xì)胞凋亡的影響 將干擾TRAP1 的SW480 細(xì)胞及對(duì)照細(xì)胞用不含EDTA 的胰酶消化后1 000 r/min離心5 min,PBS洗滌3次。隨后用100 μL的 Binding Buffer 重懸細(xì)胞,并加入 5 μL AnnexinV-APC 及 5 μL PI 染色液,混勻室溫避光反應(yīng) 15 min,再加入400 μL 的Binding Buffer混勻后上機(jī)檢測(cè)。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 20.0 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,所有實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次,計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,兩樣本均數(shù)比較采用t檢驗(yàn),多組間的均數(shù)比較采用單因素方差分析,組間多重比較采用Dunnett-t檢驗(yàn)。CCK8 結(jié)果采用析因分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 TRAP1 在CRC 組織和細(xì)胞中的表達(dá) 通過(guò)Oncomine 數(shù)據(jù)庫(kù)分析,在Notterman 數(shù)據(jù)庫(kù)中,正常結(jié)直腸組織TRAP1 比結(jié)直腸癌組織中升高(n=18,F(xiàn)old=3.408,P<0.01)。Skrzypczak 數(shù)據(jù)庫(kù)中分析發(fā)現(xiàn)TRAP1 在結(jié)直腸癌組織中的表達(dá)比正常腸黏膜組織高(n正常=24,n腫瘤=45,F(xiàn)old=2.014,P<0.01)。Western blot 顯示,6 對(duì) CRC 組織中 TRAP1 的表達(dá)明顯高于癌旁配對(duì)正常腸黏膜組織,見表1、圖1A。在結(jié)直腸癌細(xì)胞LOVO、HT29、HCT116、RKO、SW480中TRAP1的表達(dá)水平(分別為0.81±0.02、1.21±0.04、1.55±0.04、1.89±0.04、2.00±0.03)也明顯高于正常永生化結(jié)腸上皮細(xì)胞NCM460(0.45±0.02),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(n=3,F(xiàn)=85.297,P<0.01),見圖1B。
Tab.1 Expression levels of TRAP1 in CRC tissues and their paired paracancerous tissues表1 TRAP1在CRC組織及癌旁正常組織中的表達(dá)(n=3,)
Tab.1 Expression levels of TRAP1 in CRC tissues and their paired paracancerous tissues表1 TRAP1在CRC組織及癌旁正常組織中的表達(dá)(n=3,)
**P<0.01
組別正常組織腫瘤組織t標(biāo)本1 0.43±0.01 0.84±0.02 30.662**標(biāo)本2 0.73±0.02 1.07±0.05 11.480**標(biāo)本3 0.72±0.02 1.03±0.06 8.809**組別正常組織腫瘤組織t標(biāo)本4 0.53±0.02 1.18±0.07 16.790**標(biāo)本5 0.61±0.02 1.56±0.05 29.306**標(biāo)本6 0.53±0.02 1.15±0.05 19.853**
Fig.1 The expressions of TRAP1 in CRC tissues and cells圖1 TRAP1在結(jié)直腸癌組織和細(xì)胞中的表達(dá)
2.2 TRAP1 對(duì)CRC 細(xì)胞增殖的影響 Western blot結(jié)果顯示,TRAP1 的干擾序列均有效,NC、si-1、si-2、si-3 組干擾效率分別為 1.40±0.03、0.21±0.02、0.36±0.03、0.39±0.03,選取干擾效率最高的si-1組進(jìn)行后續(xù)研究(n=3,F(xiàn)=1 010.014,P<0.05),見圖 2。平板克隆實(shí)驗(yàn)顯示,干擾TRAP1的表達(dá)(NC、si-1組分 別 為 81.00±3.61、25.67±2.08)可 以 明 顯 降 低SW480 細(xì)胞的克隆形成能力(n=3,t=23.020,P<0.05),見圖3A。CCK8結(jié)果顯示干擾TRAP1的表達(dá)可以顯著降低SW480 細(xì)胞的增殖能力(n=3,F(xiàn)組間=160.630,F(xiàn)時(shí)間=775.226,F(xiàn)交互=16.355,P<0.05),見圖3B。
Fig.2 The efficiency of TRAP1 siRNAs detected by Western blot assay圖2 TRAP1干擾效率的檢測(cè)
Fig.3 The effect of TRAP1 on the proliferation of CRC cells圖3 TRAP1對(duì)CRC細(xì)胞增殖能力的影響
2.3 TRAP1 對(duì)CRC 細(xì)胞周期和凋亡的影響 流式細(xì)胞檢測(cè)結(jié)果顯示,干擾TRAP1 的表達(dá)后可以將SW480細(xì)胞周期阻滯在G0/G1期(P<0.01),見表2,圖4A,并且增加細(xì)胞凋亡(NC組、si-1組細(xì)胞凋亡率分別為 5.80%±0.70%、9.73%±0.68%;n=3,t=6.977,P<0.01),見圖4B。
Tab.2 The effect of TRAP1 on cell cycles表2 TRAP1對(duì)CRC細(xì)胞周期的影響 (%,)
Tab.2 The effect of TRAP1 on cell cycles表2 TRAP1對(duì)CRC細(xì)胞周期的影響 (%,)
*P<0.05,**P<0.01
組別NC組si-1組t n33 G0/G1期47.75±2.17 59.01±1.14 7.951**S期17.31±0.92 12.41±1.25 5.480**G2/M期34.94±1.27 28.58±1.25 4.413*
2.4 TRAP1 對(duì)增殖、凋亡相關(guān)指標(biāo)及PI3K/AKT 通路的影響 Western blot結(jié)果顯示,干擾TRAP1的表達(dá)后,細(xì)胞周期相關(guān)蛋白CyclinD1 表達(dá)降低(P<0.01),見圖5A,表3;凋亡相關(guān)蛋白Cleaved-Casp3表達(dá)增加(P<0.05),見圖5B,表3;p-PI3K 和p-AKT表達(dá)降低(P<0.01),PI3K/AKT 通路被抑制,見表4,圖6。
Fig.4 The effects of TRAP1 on cell cycles and cell apoptosis圖4 TRAP1對(duì)CRC細(xì)胞周期和凋亡的影響
Fig.5 The effects of TRAP1 on CyclinD1 and Cleaved-caspase 3 protein expressions圖5 TRAP1對(duì)CyclinD1和Cleaved-caspase 3蛋白表達(dá)的影響
Tab.3 The effect of TRAP1 on CyclinD1 and Cleavedcaspase 3 protein expressions表3 TRAP1對(duì)CyclinD1和Cleaved-caspase 3蛋白表達(dá)的影響 ()
Tab.3 The effect of TRAP1 on CyclinD1 and Cleavedcaspase 3 protein expressions表3 TRAP1對(duì)CyclinD1和Cleaved-caspase 3蛋白表達(dá)的影響 ()
*P<0.05,**P<0.01
組別NC組si-1組t n33 CyclinD1 1.33±0.05 0.86±0.05 11.853**Cleaved-Casp3 1.10±0.03 2.07±0.08 18.925*Casp3 1.28±0.03 1.27±0.03 0.411
CRC 治療是全世界面臨的難題,前期筆者團(tuán)隊(duì)針對(duì)CRC 開展了相關(guān)基礎(chǔ)研究,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β(transforming growth factor β,TGFβ)是誘導(dǎo) CRC EMT 和轉(zhuǎn)移的重要因子,而二苯乙烯苷可通過(guò)抑制PI3K/AKT通路,拮抗TGFβ介導(dǎo)的腫瘤轉(zhuǎn)移效應(yīng),因此二苯乙烯苷有望通過(guò)抑制PI3K/AKT 通路應(yīng)用于CRC 治療[6]。除了腫瘤轉(zhuǎn)移,腫瘤細(xì)胞的惡性增殖和凋亡抵抗也是介導(dǎo)CRC 患者不良預(yù)后的重要原因。因此探索腫瘤增殖和凋亡相關(guān)基因,有望為治療CRC提供新的方法。
為了進(jìn)一步尋找CRC 腫瘤相關(guān)基因,本研究通過(guò)生物信息學(xué)分析成功篩選出TRAP1 是CRC 潛在的癌基因?;仡櫦韧芯浚琓RAP1 在多種腫瘤中高表達(dá)。Ou等[7]發(fā)現(xiàn)TRAP1在食管癌中表達(dá)升高,與患者淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移密切相關(guān),并可通過(guò)激活STAT3/MMP2 信號(hào)通路,促進(jìn)食管癌細(xì)胞的遷移和侵襲。在甲狀腺癌中,TRAP1 的表達(dá)隨著惡性程度增加而增加,通過(guò)調(diào)控ERK信號(hào)通路促進(jìn)甲狀腺癌細(xì)胞的增殖、抑制凋亡[8]。值得注意的是,TRAP1除了扮演促癌基因角色外,也在部分腫瘤中低表達(dá),從而發(fā)揮抑癌作用。Yin 等[9]研究證實(shí) TRAP1 在膠質(zhì)母細(xì)胞瘤中表達(dá)降低,并調(diào)控腫瘤細(xì)胞侵襲與凋亡。目前TRAP1 在 CRC 中的作用已初見報(bào)道,Pak 等[10]研究發(fā)現(xiàn)過(guò)表達(dá)TRAP1可能導(dǎo)致CRC細(xì)胞的局部侵襲,其表達(dá)與CRC侵襲深度和不良預(yù)后相關(guān)。Han等[11]通過(guò)免疫組化檢測(cè)結(jié)直腸癌手術(shù)標(biāo)本中的TRAP1和切除修復(fù)交叉互補(bǔ)基因1(ERCC1)的表達(dá),發(fā)現(xiàn)TRAP1 與ERCC1 表達(dá)的高低可預(yù)測(cè)CRC 對(duì)奧沙利鉑和5-氟尿嘧啶(5-Fu)的化療敏感性。但目前TRAP1 在CRC 中作用的研究大部分處于基因表達(dá)水平,缺乏基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)依據(jù),其在CRC 中的表達(dá)和生物學(xué)功能仍需進(jìn)一步挖掘。
Tab.4 The effect of TRAP1 on PI3K/AKT pathway of SW480 cells表4 SW480細(xì)胞中TRAP1對(duì)PI3K/AKT信號(hào)通路的影響 ()
Tab.4 The effect of TRAP1 on PI3K/AKT pathway of SW480 cells表4 SW480細(xì)胞中TRAP1對(duì)PI3K/AKT信號(hào)通路的影響 ()
**P<0.01
組別NC組si-1組t n33 p-PI3K 1.19±0.02 0.57±0.03 36.454**PI3K 0.18±0.02 0.43±0.02 0.690 p-AKT 1.14±0.01 0.72±0.01 57.277**AKT 0.45±0.01 0.45±0.02 0.702
Fig.6 The effect of TRAP1 on PI3K/AKT pathway圖6 TRAP1對(duì)PI3K/AKT信號(hào)通路的影響
本研究多層次檢測(cè)了TRAP1 的表達(dá),發(fā)現(xiàn)TRAP1在CRC組織中的蛋白表達(dá)水平顯著升高,同樣,與NCM460細(xì)胞相比,TRAP1在CRC細(xì)胞中的表達(dá)也更高。文獻(xiàn)報(bào)道TRAP1 可調(diào)控腫瘤細(xì)胞增殖和凋亡進(jìn)程[12-13]。本研究也針對(duì)該生物學(xué)行為進(jìn)行觀察,在SW480 細(xì)胞中干擾TRAP1 后,腫瘤細(xì)胞的增殖能力和克隆形成能力明顯減弱;流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)發(fā)現(xiàn)干擾TRAP1后SW480細(xì)胞周期阻滯在G0/G1期,并且凋亡增加;同時(shí),細(xì)胞周期相關(guān)蛋白CyclinD1 表達(dá)降低,而凋亡相關(guān)蛋白Cleaved-Casp3表達(dá)增加,說(shuō)明TRAP1 可以促進(jìn)CRC 細(xì)胞增殖、抑制CRC細(xì)胞凋亡,是CRC的癌基因。
腫瘤細(xì)胞信號(hào)傳導(dǎo)與腫瘤細(xì)胞惡性生物學(xué)行為密切相關(guān)[14],其中,PI3K/AKT 信號(hào)通路是與腫瘤增殖和凋亡最相關(guān)的信號(hào)通路之一[15]。筆者前期針對(duì)PI3K/AKT 的通路及其潛在抑制藥物已經(jīng)開展了相關(guān)基礎(chǔ)研究[6],另有研究也證實(shí)TRAP1抑制劑SNX-2112 可抑制AKT 通路及其下游核因子(NF)-κB 的活性[16]。本研究通過(guò)Western blot證實(shí),干擾TRAP1后,CRC 細(xì)胞 PI3K 和 AKT 磷酸化水平顯著降低,進(jìn)而支持TRAP1 可正向調(diào)控PI3K/AKT 信號(hào)通路,因此推測(cè)其對(duì)CRC 細(xì)胞增殖和凋亡的影響可能是通過(guò)PI3K/AKT信號(hào)軸來(lái)發(fā)揮的。
綜上,本研究證實(shí)TRAP1 是CRC 的癌基因,在CRC 中高表達(dá),可促進(jìn)CRC 細(xì)胞增殖而抑制其凋亡,其潛在機(jī)制與TRAP1 激活PI3K/AKT 通路相關(guān),為針對(duì)TRAP1 設(shè)計(jì)PI3K/AKT 通路抑制劑和抗腫瘤藥物提供了實(shí)驗(yàn)證據(jù)。