楊 萍,張漢斌,劉鈺林,方淑香,李 平,許小洋△
(廣州醫(yī)科大學(xué) 1第二臨床學(xué)院,2基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,廣東廣州511436)
在動(dòng)脈粥樣斑塊的形成過程中,巨噬細(xì)胞對(duì)膽固醇攝取、代謝及排出這一穩(wěn)態(tài)機(jī)制的破壞是導(dǎo)致其轉(zhuǎn)化成泡沫細(xì)胞,進(jìn)而促進(jìn)動(dòng)脈粥樣斑塊形成的關(guān)鍵環(huán)節(jié)[1-3]?,F(xiàn)有的研究結(jié)果表明,在動(dòng)脈粥樣斑塊的泡沫細(xì)胞中,過量膽固醇蓄積在溶酶體中[4-5],提示巨噬細(xì)胞溶酶體膽固醇的調(diào)節(jié)異常是導(dǎo)致泡沫細(xì)胞形成、進(jìn)而促進(jìn)動(dòng)脈粥樣硬化產(chǎn)生的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。
溶酶體瞬時(shí)感受器電位黏脂蛋白1(transient re?ceptor potential mucolipin 1,TRPML1)鈣通道或尼曼-皮克C1 蛋白(Niemann-Pick C1 protein,NPC1)膽固醇轉(zhuǎn)運(yùn)體缺陷,可造成以溶酶體脂質(zhì)蓄積為特征的溶酶體貯積癥[6-7],與動(dòng)脈粥樣硬化斑塊的病理特征非常相似。已有報(bào)道顯示,煙酸腺嘌呤二核苷酸磷酸(nicotinic acid adenine dinucleotide phosphate,NAADP)可促進(jìn) Ca2+經(jīng) TRPML1 通道釋放[8],提示NAADP 有可能通過抑制溶酶體膽固醇蓄積,進(jìn)而抑制泡沫細(xì)胞的形成,但其詳細(xì)的信號(hào)機(jī)制目前尚不甚明了,已有少數(shù)報(bào)道提示肝X 受體α(liver X re?ceptor α,LXRα)可能在此機(jī)制中起一定作用[9-10]。
鑒于NAADP 及NPC1 在溶酶體中膽固醇轉(zhuǎn)運(yùn)中的重要作用,本研究從NAADP 合成底物——煙酸(nicotinic acid,NA)入手,觀察其對(duì)巨噬細(xì)胞溶酶體膽固醇外流的影響,并對(duì)此過程中LXRα 和NPC1 所起的作用進(jìn)行了探討,以期為闡明巨噬細(xì)胞在動(dòng)脈粥樣硬化中的作用機(jī)制提供更多的實(shí)驗(yàn)支持。
人單核-巨噬細(xì)胞株THP-1 購自江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司;RPMI-1640 培養(yǎng)基和胎牛血清購 自 Gibco;LXRα小 干 擾 RNA(small interfering RNA,siRNA)、NPC1siRNA 及大鼠抗人β-actin 和溶酶體相關(guān)膜蛋白1(lysosomal-associated membrane protein 1,LAMP1)抗體購自Santa Cruz;siRNA 轉(zhuǎn)染試劑盒購自SignaGen;煙酸購自Sigma;實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒購自Qiagen;Alexa Fluor 633標(biāo)記的山羊抗大鼠IgG(H+L)購自Thermo Fisher;細(xì)胞培養(yǎng)玻片(8 室)購自Biologix;氧化型低密度脂蛋白(oxi?dized low-density lipoprotein,oxLDL)購自廣州瑞千公司;佛波酯(phorbol myristate acetate,PMA)購自Promega;filipin complex(filipin)、NAADP 拮 抗 劑trans-Ned-19(Ned-19)和 Ca2+螯合劑 BAPTA 購自Cayman;Nile red購自MCE;抗NPC1兔多抗購自Mil?lipore;BeyoECL Plus(超敏ECL 化學(xué)發(fā)光試劑盒)和DMSO 購自碧云天;HRP 標(biāo)記的羊抗兔IgG 購自SouthernBiotech。
2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 本研究所用細(xì)胞系為人單核-巨噬細(xì)胞株THP-1,經(jīng)PMA 誘導(dǎo)成巨噬細(xì)胞后使用[11]:以1×109/L 的密度將THP-1 細(xì)胞置于裝有10 mL RPMI-1640 培養(yǎng)基(含10%胎牛血清和2%雙抗)的T25 培養(yǎng)瓶內(nèi),在37℃、5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。待細(xì)胞到達(dá)對(duì)數(shù)生長期時(shí),以每孔6×105個(gè)接種于6 孔板中,加入PMA(終濃度100μg/L)誘導(dǎo)分化48 h備用。
2.2 Ned-19 及BAPTA 處理 在NA 影響溶酶體膽固醇外流的實(shí)驗(yàn)中,先加入Ned-19 或BAPTA,1 h 后加入NA,再過1 h 后加入oxLDL,48 h 后固定細(xì)胞,經(jīng)破膜、LAMP1抗體標(biāo)記、filipin和Nile red染色等處理以進(jìn)行激光共聚焦顯微鏡觀察。在NA 影響NPC1蛋白及LXRα mRNA表達(dá)的實(shí)驗(yàn)中,按上述時(shí)間依次加入Ned-19(或BAPTA)、NA 和oxLDL,24 h 后提取總 RNA 用于檢測(cè) LXRα 的 mRNA 表達(dá),48 h 后提取蛋白用于檢測(cè)NPC1的蛋白表達(dá)。
2.3 激光共聚焦技術(shù)檢測(cè)巨噬細(xì)胞游離膽固醇及脂質(zhì)蓄積 巨噬細(xì)胞游離膽固醇和中性脂質(zhì)分別通過filipin 和Nile red 熒光染色劑染色;溶酶體采用溶酶體膜表面特征蛋白LAMP1 抗體免疫標(biāo)記。將誘導(dǎo)分化好的巨噬細(xì)胞按每室5×104個(gè)接種于8室細(xì)胞培養(yǎng)玻片中,經(jīng)不同處理后,按已報(bào)道的方法進(jìn)行固定、破膜、LAMP1 抗體標(biāo)記、filipin 染色[9,12],之后細(xì)胞用Nile red 孵育10 min,PBS洗1次后封片,用于激光共聚焦檢測(cè)。激光共聚焦掃描拍照采用LSM 510多光子激光掃描顯微鏡(Carl Zeiss),不同通道圖像采取依次掃描方式獲取以防止干擾,整個(gè)過程所有參數(shù)均保持一致。Alexa Fluor 633、filipin 和Nile red熒光成像的激發(fā)/發(fā)射波長(λEx/λEm)分別為633 nm/650~710 nm、740 nm/435~485 nm 和 514 nm/535~590 nm。熒光強(qiáng)度采用Image-Pro 9.1軟件(Media Cyber?netics)定量,其中filipin 熒光強(qiáng)度代表游離膽固醇的量,Nile red 熒光強(qiáng)度代表中性脂質(zhì)的量。同時(shí)分析filipin 與 LAMP1 之間的共定位系數(shù)(Pearson 相關(guān)系數(shù)),以判定溶酶體中游離膽固醇的量。
2.4 Western blot 檢測(cè)NPC1 蛋白的表達(dá) 因NPC1蛋白分子量較大,故在進(jìn)行蛋白表達(dá)檢測(cè)時(shí)注意個(gè)別特殊條件,其余均參照已有報(bào)道中的方法[13],經(jīng)標(biāo)準(zhǔn)的Western blot 程序完成。特殊條件為蛋白提取之后不過夜即電泳,隨即以電壓30 V于4℃環(huán)境轉(zhuǎn)膜16 h;常溫用抗NPC1抗體(濃度1∶500)孵育4 h。
2.5 RT-qPCR 檢測(cè) LXRα 的 mRNA 表達(dá) 提取總RNA 后,按已有報(bào)道中的方法進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄和qPCR,檢測(cè) LXRα 的 mRNA 表達(dá)[12]。LXRα 的上游引物序列為5'-CAAGATGCAGGAGACCAGGG-3',下游引物序列為5'-GCTGACTCCAACCCTATCCC-3'。
2.6LXRα及NPC1的 RNA 干擾實(shí)驗(yàn) 采用 Gen?Mute轉(zhuǎn)染試劑盒,依照原報(bào)道中的方法[12]將LXRα及NPC1siRNA 轉(zhuǎn)染巨噬細(xì)胞。RNA 干擾效應(yīng)于轉(zhuǎn)染24 h 后經(jīng) RT-qPCR 驗(yàn)證。在LXRαsiRNA 影響 NPC1蛋白表達(dá)的實(shí)驗(yàn)中,于轉(zhuǎn)染scrambled siRNA 和LXRαsiRNA 后 24 h 加入 NA 和 oxLDL,48 h 后提取蛋白進(jìn)行 Western blot。在LXRα及NPC1siRNA 影響NA 促溶酶體膽固醇外流效應(yīng)的實(shí)驗(yàn)中,于轉(zhuǎn)染siRNA 后 24 h 加入 NA 和 oxLDL,再經(jīng) 48 h 后固定細(xì)胞,再經(jīng)破膜、LAMP1 抗體標(biāo)記、filipin 和 Nile red 染色等處理以進(jìn)行激光共聚焦顯微鏡觀察。
采用SigmaPlot 12.5 for Windows 進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,多組間均數(shù)比較使用單因素方差分析。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
在細(xì)胞培養(yǎng)液中加入不同濃度的oxLDL 處理后,激光共聚焦結(jié)果顯示巨噬細(xì)胞游離膽固醇(藍(lán)色,filipin 染色)的蓄積逐漸增加,Image-Pro 圖片分析結(jié)果顯示藍(lán)色強(qiáng)度明顯增強(qiáng)(P<0.05),見圖1A、B。采用LAMP1 標(biāo)記溶酶體(紅色),可見oxLDL 處理后疊加圖片中的紫色(藍(lán)+紅→紫)部分增強(qiáng),經(jīng)Image-Pro 分析共定位系數(shù)表明,溶酶體內(nèi)膽固醇的蓄積明顯增加(P<0.05),見圖1A、C。隨著oxLDL 濃度的增加,巨噬細(xì)胞內(nèi)脂滴(黃色)也明顯增多(圖1A、D)。
若在巨噬細(xì)胞接受oxLDL 處理前加入不同濃度的NA,則可發(fā)現(xiàn),隨著NA 濃度的增加,巨噬細(xì)胞中游離膽固醇的蓄積明顯減少(P<0.05),見圖2A、B;共定位系數(shù)分析結(jié)果也顯示,溶酶體中游離膽固醇的蓄積逐漸降低,在NA 濃度為1~10 mmol/L 時(shí)效果顯著(P<0.05),見圖2A、C。但NA 對(duì)巨噬細(xì)胞中脂滴的蓄積無明顯影響(圖2A)。
在上一實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,加入NAADP 拮抗劑Ned-19或細(xì)胞內(nèi)Ca2+螯合劑BAPTA,則NA 減少溶酶體游離膽固醇蓄積的效應(yīng)被顯著抑制(圖3A~C),提示NA 的效應(yīng)可能是通過NAADP 促進(jìn)溶酶體TRPML1通道釋放Ca2+所介導(dǎo)。但Ned-19及BAPTA對(duì)脂滴同樣沒有明顯影響(圖3A、D)。
Western blot 結(jié)果顯示,NA 可顯著促進(jìn) NPC1 蛋白的表達(dá),而Ned-19 和BAPTA 則可顯著抑制NA 促NPC1 表達(dá)的效應(yīng)(P<0.05),見圖4。這提示NA 促溶酶體游離膽固醇外流的機(jī)制與其促進(jìn)NPC1 蛋白表達(dá)有關(guān)。
RT-qPCR 結(jié)果顯示,NA 可顯著提高 LXRα 的mRNA 表達(dá),但這種效應(yīng)可被 Ned-19 和 BAPTA 明顯抑制(P<0.05),見圖5。這種效應(yīng)與NA 促進(jìn)NPC1蛋白表達(dá)的效應(yīng)基本一致,提示LXRα 與NPC1 之間可能有一定的聯(lián)系。
為確定NA 促進(jìn)NPC1 表達(dá)是否是經(jīng)核受體LXRα 介導(dǎo),我們利用LXRαsiRNA 敲減LXRα的表達(dá),再觀察NA對(duì)NPC1蛋白表達(dá)的影響。結(jié)果顯示,LXRαsiRNA 可明顯干擾LXRα mRNA 表達(dá)(圖6A);LXRα被siRNA 干擾后,NA 促NPC1蛋白表達(dá)的效應(yīng)被顯著抑制(P<0.05),見圖6B、C,提示LXRα 介導(dǎo)了NA對(duì)NPC1表達(dá)的上調(diào)。
為進(jìn)一步確認(rèn)NA 促溶酶體膽固醇外流效應(yīng)的機(jī)制,我們利用siRNA 分別敲減LXRα和NPC1表達(dá),觀察其對(duì)NA 減少巨噬細(xì)胞溶酶體膽固醇蓄積效應(yīng)的影響。結(jié)果顯示,敲減LXRα和NPC1表達(dá)后,NA減少巨噬細(xì)胞溶酶體膽固醇蓄積的效應(yīng)被明顯抑制(P<0.05),見圖7。這進(jìn)一步提示LXRα 和NPC1 在NA促進(jìn)溶酶體膽固醇外流的效應(yīng)中起重要作用。
Figure 1.oxLDL dose-dependently increased lysosomal free cholesterol(FC)accumulation in macrophages.Macrophages were incu?bated with oxLDL at different concentrations(20~80 mg/L)for 48 h and labelled with filipin(FC,blue),LAMP1 antibody(lysosomes,red)and Nile red(lipid droplets of cholesteryl ester,yellow).Purple spots in the merged images represented the FC sequestered in lysosomes.A:confocal microscopic images of filipin,LAMP1 and Nile red staining;B:fluores?cence intensity of filipin staining for FC;C:colocalization coefficient between filipin and LAMP1;D:fluorescence intensi?ty of Nile red staining for lipid droplets(cholesteryl ester).lm:lumen,the SI unit of luminous flux.Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs 0 mg/L group.圖1 oxLDL濃度依賴性地促進(jìn)巨噬細(xì)胞溶酶體中膽固醇的蓄積
巨噬細(xì)胞可通過清道夫受體A 吞噬oxLDL 并將其移至溶酶體中,在溶酶體酸性脂肪酶的作用下,ox?LDL 中的膽固醇酯被水解成游離膽固醇和脂肪酸[1,14]。游離膽固醇可經(jīng)溶酶體NPC1蛋白主動(dòng)轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞質(zhì)中[1],其中大部分被運(yùn)送至細(xì)胞膜成為細(xì)胞膜的組成部分[15];另一部分被運(yùn)送至內(nèi)質(zhì)網(wǎng)經(jīng)酰基輔酶A:膽固醇?;D(zhuǎn)移酶1(acyl-coenzyme A:cholesterol acyltransferase-1,ACAT-1)催化,與脂肪酸結(jié)合酯化成膽固醇酯而儲(chǔ)存在胞質(zhì)中;還有一部分則可通過ATP 結(jié)合盒轉(zhuǎn)運(yùn)體A1/G1(ATP-binding cassette transporter A1/G1,ABCA1/ABCG1)經(jīng)膽固醇逆轉(zhuǎn)運(yùn)(reverse cholesterol transport,RCT)途徑轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞外[16-19]。若膽固醇和膽固醇酯在巨噬細(xì)胞內(nèi)蓄積則可使其轉(zhuǎn)化為泡沫細(xì)胞,這種現(xiàn)象是動(dòng)脈粥樣斑塊產(chǎn)生的病理生理學(xué)基礎(chǔ)[2,20]。
NA 是抗動(dòng)脈粥樣硬化的常用藥物,其藥理機(jī)制主要與其抗血脂作用有關(guān)[21]。近來發(fā)現(xiàn)其除了抗血脂作用外,還有其他不依賴脂質(zhì)的抗粥樣硬化效應(yīng),如降低血管內(nèi)皮細(xì)胞中起招募單核細(xì)胞作用的黏附分子的表達(dá)、通過激活單核巨噬細(xì)胞的NA 受體——羥基羧酸受體2(hydroxycarboxylic acid receptor 2,HCA2)而抑制單核巨噬細(xì)胞向動(dòng)脈斑塊的聚集、促進(jìn)ABCA1 和ABCG1 的表達(dá)以增加巨噬細(xì)胞中游離膽固醇向高密度脂蛋白的轉(zhuǎn)移等[21-24],提示NA 的抗粥樣硬化機(jī)制廣泛。
Figure 2.NA dose-dependently inhibited the accumulation of lysosomal free cholesterol(FC)in the macrophages incubated with ox?LDL(40 mg/L).A:confocal fluorescence images;B:fluorescence intensity of filipin staining for FC;C:colocalization coefficient between filipin and LAMP1(lysosome).Mean±SD. n=6. *P<0.05 vs oxLDL group;#P<0.05 vs control group.圖2 NA濃度依賴性地抑制巨噬細(xì)胞溶酶體中膽固醇的蓄積
本研究發(fā)現(xiàn),NA 呈濃度依賴性地降低巨噬細(xì)胞中溶酶體游離膽固醇的蓄積(即促進(jìn)溶酶體游離膽固醇的外流),外流出溶酶體的游離膽固醇可經(jīng)RCT途徑轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞外,從而產(chǎn)生抗動(dòng)脈粥樣硬化的作用。NA 的這種效應(yīng)可能是其抗動(dòng)脈粥樣硬化的另外一條重要途徑。雖然對(duì)其促進(jìn)巨噬細(xì)胞溶酶體游離膽固醇外流的機(jī)制尚不清楚,但有必要對(duì)其進(jìn)行深入探討。
溶酶體膜上存在非特異性TRPML1 Ca2+通道[11]和 NPC1 膽固醇轉(zhuǎn)運(yùn)體[25]。經(jīng)溶酶體 TRPML1 通道的Ca2+釋放與溶酶體膽固醇轉(zhuǎn)運(yùn)關(guān)系密切[26]。TRPML1突變(引起溶酶體Ca2+釋放減少)或NPC1缺陷將導(dǎo)致兩類溶酶體貯積癥[6-7,27],分別為 IV 型黏脂貯積癥(mucolipidosis type IV)[28]和 C1 型尼曼-皮克病(Niemann-Pick disease type C1)[29],二者均與動(dòng)脈粥樣斑塊的病理特征非常相似,其本質(zhì)均為溶酶體脂質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)功能紊亂。
已有報(bào)道表明,NAADP 可促進(jìn)Ca2+經(jīng)TRPML1通道釋放[8],提示其可能參與溶酶體膽固醇的調(diào)節(jié)。本研究中NA 作為NAADP 生成的底物(由ADP 核糖基環(huán)化酶CD38催化NADP+與NA 反應(yīng)產(chǎn)生),其減少巨噬細(xì)胞中游離膽固醇蓄積的效應(yīng)可能與NAADP促TRPML1釋放Ca2+的作用密切相關(guān),而后者也可能通過某種途徑參與了NPC1功能的調(diào)節(jié),影響巨噬細(xì)胞溶酶體膽固醇代謝。
為此,本研究觀察了NAADP 拮抗劑Ned-19 及Ca2+螯合劑BAPTA 對(duì)NA 促溶酶體游離膽固醇外流效應(yīng)的影響。結(jié)果表明二者均可顯著抑制NA 的上述效應(yīng),提示NA 的效應(yīng)可能是通過增加NAADP 合成,進(jìn)而促進(jìn)溶酶體TRPML1 通道釋放Ca2+所導(dǎo)致。這與我們?cè)瓉淼膱?bào)道相一致,即NAADP 合成酶CD38基因敲除的小鼠,經(jīng)高脂飲食后冠狀動(dòng)脈出現(xiàn)明顯的粥樣斑塊,且該部位巨噬細(xì)胞溶酶體中膽固醇的蓄積明顯升高[12]。
如前所述,溶酶體膜上的NPC1膽固醇轉(zhuǎn)運(yùn)體與其膽固醇調(diào)節(jié)密切相關(guān),NA 促進(jìn)TRPML1 釋放的Ca2+可能通過某種機(jī)制影響NPC1的表達(dá)而促進(jìn)溶酶體中游離膽固醇的外流。因此,我們進(jìn)一步觀察了NA、NAADP 拮抗劑 Ned-19 及 Ca2+螯合劑 BAPTA 對(duì)NPC1蛋白表達(dá)的影響,發(fā)現(xiàn)NA可顯著促進(jìn)NPC1蛋白表達(dá),此效應(yīng)可被Ned-19 和BAPTA 所抑制,提示NA 的效應(yīng)與其通過NAADP 促進(jìn)TRPML1 通道釋放Ca2+,進(jìn)而上調(diào)NPC1蛋白表達(dá)有關(guān)。
Figure 3.NAADP antagonist Ned-19 and calcium chelator BAPTA attenuated the effect of NA on lysosomal free cholesterol(FC)ac?cumulation.Macrophages were incubated with oxLDL at 40 mg/L in the presence of NA(5 mmol/L)combined with Ned-19(100 μmol/L)or BAPTA(5 μmol/L)for 48 h and labelled with filipin(FC,blue),LAMP1 antibody(lysosomes,red)and Nile red(lipid droplets of cholesteryl ester,yellow).A:confocal microscopic images of filipin,LAMP1 and Nile red staining;B:fluorescence intensity of filipin staining for FC;C:colocalization coefficient between filipin and LAMP1;D:fluorescence intensity of Nile red staining for lipid droplets(cholesteryl ester).Mean±SD. n=6.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs NA+oxLDL group.圖3 NAADP拮抗劑Ned-19和鈣離子螯合劑BAPTA抑制NA對(duì)溶酶體膽固醇蓄積的效應(yīng)
而經(jīng)TRPML1 通道釋放的Ca2+通過何種途徑促進(jìn)NPC1蛋白表達(dá),目前尚不清楚。曾有報(bào)道顯示核受體 LXRα 是 NPC1 表達(dá)上調(diào)的重要信號(hào)因子[30]。為此,本研究繼續(xù)觀察了NA、Ned-19 及BAPTA 對(duì)LXRα mRNA 表達(dá)的影響。結(jié)果顯示,NA 可顯著提高 LXRα 的 mRNA 表達(dá),這一效應(yīng)亦可被 Ned-19 和BAPTA顯著抑制;而當(dāng)敲減LXRα基因表達(dá)后,NA促NPC1 蛋白表達(dá)的效應(yīng)被顯著抑制。這部分結(jié)果與已有的報(bào)道和我們近期發(fā)表的結(jié)果相一致[9-10,30],提示NA促NPC1表達(dá)的效應(yīng)由LXRα介導(dǎo)。
為進(jìn)一步確認(rèn)LXRα 和NPC1 在巨噬細(xì)胞溶酶體膽固醇外流中的作用,本研究利用RNA 干擾技術(shù)分別敲減LXRα和NPC1的表達(dá),結(jié)果顯示 NA 減少巨噬細(xì)胞溶酶體膽固醇蓄積的效應(yīng)被明顯抑制。這進(jìn)一步證實(shí)LXRα 和NPC1 在NA 促進(jìn)溶酶體膽固醇外流的效應(yīng)中起關(guān)鍵作用。
Figure 4.NA promoted NPC1 protein expression in oxLDL-loaded macrophages.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group.圖4 NA促進(jìn)oxLDL處理的巨噬細(xì)胞中NPC1蛋白的表達(dá)
Figure 5.NA promoted mRNA expression of LXRα in oxLDL-loaded macrophages.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs control group.圖5 NA 促進(jìn)oxLDL 處理的巨噬細(xì)胞中LXRα mRNA 的表達(dá)
由于本實(shí)驗(yàn)的研究對(duì)象是基于人單核細(xì)胞白血病細(xì)胞誘導(dǎo)的巨噬細(xì)胞,雖然相對(duì)于動(dòng)物原代培養(yǎng)細(xì)胞而言更接近于人類本身,但所有研究工作均是在細(xì)胞水平開展的,因此,今后如能結(jié)合人類的臨床標(biāo)本或臨床數(shù)據(jù),則可取得更具影響力的數(shù)據(jù)。此外,本研究結(jié)果顯示,NA 對(duì)巨噬細(xì)胞中的脂滴無明顯影響,其中機(jī)制還有待闡明。
Figure 6 The effect of NA on NPC1 protein expression was abolished by LXRα siRNA in oxLDL-loaded macro?phages.The macrophages were transfected with 20μmol/L scrambled siRNA or LXRα siRNA,and 24 h after transfection,they were incubated with 40 mg/L of oxLDL in the presence of 5 mmol/L NA for 48 h.A:the mRNA expression of LXRα 24 h after transfec?tion was detected by RT-qPCR to evaluate the inter?ference efficiency of LXRα siRNA;B:the protein level of NPC1 after NA+oxLDL treatment for 48 h was determined by Western blot.Mean±SD. n=3.*P<0.05 vs scrambled siRNA.圖6 LXRα siRNA消除NA對(duì)NPC1表達(dá)的作用
綜上所述,NA 可顯著促進(jìn)溶酶體膽固醇外流,這可能是NA 抗動(dòng)脈粥樣硬化的另外一條重要途徑,其機(jī)制可能是:NA 增加NAADP 的生成,進(jìn)而促進(jìn)TRPML1 通道 Ca2+的釋放,后者以核受體 LXRα 為介導(dǎo),上調(diào)NPC1 蛋白表達(dá),最終促進(jìn)溶酶體膽固醇外流。至于Ca2+以LXRα 為介導(dǎo)上調(diào)NPC1 蛋白表達(dá)的詳細(xì)機(jī)制,仍有待后續(xù)進(jìn)一步研究。
Figure 7.The effect of NA on lysosomal free cholesterol(FC)accumulation was abolished by LXRα siRNA(siLXRα)and NPC1 siRNA(siNPC1)in oxLDL-loaded macrophages.A:confocal microscopic images of filipin,LAMP1 and Nile red staining;B:fluorescence intensity of filipin staining for FC;C:colocalization coefficient between filipin and LAMP1.Scr:Scram?bled siRNA.Mean±SD. n=8.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs NA+oxLDL group or Scr+NA+oxLDL group.圖7 LXRα siRNA和NPC1 siRNA抑制NA促溶酶體游離膽固醇外流的效應(yīng)