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    一種檢測(cè)病毒滅活血漿亞甲藍(lán)殘留量試劑盒的應(yīng)用評(píng)價(jià)

    2020-08-31 07:48:56
    中國(guó)醫(yī)藥指南 2020年20期
    關(guān)鍵詞:自配亞甲藍(lán)血站

    (深圳市龍崗區(qū)中心血站質(zhì)控科,廣東 深圳 518172)

    輸血技術(shù)是現(xiàn)代醫(yī)學(xué)不可缺少的重要治療手段,但存在經(jīng)輸血傳染的病毒性疾病的感染風(fēng)險(xiǎn),因此,滅活血液中的病毒是臨床上保障輸血安全的重要措施之一[1]。當(dāng)前,為增加輸血安全性,減低臨床輸血病毒感染的風(fēng)險(xiǎn),采供血機(jī)構(gòu)主要采用亞甲藍(lán)光化學(xué)法滅活血漿中的病毒[2]。亞甲藍(lán)滅活血漿的亞甲藍(lán)釋放量有效濃度為1.0~5.0 μmol,以保證有效滅活病毒;在滅活病毒以后,濾除亞甲藍(lán)需使用一次性病毒滅活過(guò)濾器,使亞甲藍(lán)最大殘留量不超過(guò)0.3 μmol/L(臨床用血漿的亞甲藍(lán)殘留量),以保證大劑量輸血后體內(nèi)亞甲藍(lán)的累積不會(huì)過(guò)多,從而確保用血安全[3]。亞甲藍(lán)殘留量是血站制備的血液成分病毒滅活血漿(亞甲藍(lán)光化學(xué)法)質(zhì)量監(jiān)測(cè)指標(biāo)之一[4]?!堆炯夹g(shù)操作規(guī)程》(2019版)[5]介紹了采用自配試劑檢測(cè)亞甲藍(lán)殘留量的方法,但自配試劑存在標(biāo)準(zhǔn)品溯源性、冰乙酸(分析純)安全性、試劑配制耗時(shí)、試劑配制誤差等問(wèn)題。同時(shí),規(guī)程規(guī)定其他經(jīng)驗(yàn)證可使用的方法亦可用于亞甲藍(lán)殘留量的檢測(cè)。本文通過(guò)對(duì)一種檢測(cè)病毒滅活血漿亞甲藍(lán)殘留量試劑盒與自配試劑的比較分析,評(píng)估其可行性,報(bào)道如下。

    1 材料與方法

    1.1 樣本來(lái)源:我站合格庫(kù)中抽取已冰凍的病毒滅活新鮮冰凍血漿和病毒滅活冰凍血漿各10袋。37 ℃水浴復(fù)溶后取樣15 mL,分成兩等份備用。

    1.2 儀器與試劑:722G可見(jiàn)分光光度計(jì)(上海精密科學(xué)儀器有限公司),亞甲藍(lán)(天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所),甲醇(廣東光華科技有限股份公司),冰乙酸(天津市富宇精細(xì)化工有限公司),Water Oasis小柱(Waters Corporation Milford,Massachusetts USA),真空固相萃取裝置-隔膜真空泵(天津市津滕實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司),離心機(jī)(德國(guó)Sigma公司),亞甲藍(lán)測(cè)定試劑盒(北京瑞爾達(dá)生物科技有限公司)。

    1.3 方法

    1.3.1 試劑盒操作步驟

    1.3.1.1 亞甲藍(lán)標(biāo)準(zhǔn)品(0.5 μmol/L):采用試劑盒配套的可追溯至企業(yè)工作標(biāo)準(zhǔn)品的校準(zhǔn)品。精密量取亞甲藍(lán)校準(zhǔn)品40 μL置于一試管內(nèi),加未經(jīng)亞甲藍(lán)處理合格血漿360 μL混合后備用。

    1.3.1.2 亞甲藍(lán)質(zhì)控品(0.3 μmol/L):采用試劑盒配套的亞甲藍(lán)質(zhì)控品。精密量取亞甲藍(lán)質(zhì)控品40 μL置于一試管內(nèi),加未經(jīng)亞甲藍(lán)處理合格血漿360 μL混合后備用。

    1.3.1.3 樣品處理:固相萃取裝置上裝入3 mL SSH2P小柱數(shù)支,連接真空泵并檢查抽真空效果。用3 mL R1活化小柱。在其中兩只小柱中分別加入0.3 mL血漿亞甲藍(lán)校準(zhǔn)品和血漿亞甲藍(lán)質(zhì)控品,其余小柱中加入6 mL待測(cè)血漿。亞甲藍(lán)殘留量萃取后,用3 mL R2清洗,隨后用含2 mL R3洗脫。于3500 rpm離心洗脫液5 min,取上清液作為樣本溶液。

    1.3.1.4 亞甲藍(lán)含量測(cè)定:用R3作試劑空白,各管吸光度在653 nm波長(zhǎng)處測(cè)定。根據(jù)試劑盒說(shuō)明書(shū)計(jì)算公式計(jì)算測(cè)試樣本亞甲藍(lán)殘留量。

    1.3.2 自配試劑操作步驟:參照《血站技術(shù)操作規(guī)程》(2019版)附錄F.19亞甲藍(lán)殘留量。

    1.3.2.1 亞甲藍(lán)標(biāo)準(zhǔn)濃縮儲(chǔ)備液配制:精密稱(chēng)取亞甲藍(lán)對(duì)照品粉末38.0 mg,用蒸餾水溶解并稀釋至100 mL,配制成1.0 mmol/L的亞甲藍(lán)標(biāo)準(zhǔn)濃縮儲(chǔ)備液,避光保存。

    1.3.2.2 標(biāo)準(zhǔn)品制備:緊密量取1.0 mmol/L亞甲藍(lán)濃縮儲(chǔ)備液50 μL,置50 mL容量瓶中,用血漿稀釋至刻度,配成亞甲藍(lán)濃度為1.0 μmol/L的亞甲藍(lán)標(biāo)準(zhǔn)品。取3 mL固相提取柱,置于固相提取裝置上,取6 mL甲醇活化,加入6 mL標(biāo)準(zhǔn)品,提取亞甲藍(lán);用30%甲醇6 mL清洗,之后用含1%乙酸的甲醇溶液6 mL洗脫,于3500 rpm離心洗脫液10 min,取上清液作為標(biāo)準(zhǔn)品溶液。

    1.3.2.3 樣品制備:取3 mL固相提取柱,置于固相提取裝置上,取6 mL甲醇活化,加入6 mL供試血漿,提取亞甲藍(lán);用30%甲醇6 mL清洗,之后用含1%乙酸的甲醇溶液2 mL洗脫(樣本濃縮3倍),于3500 rpm離心洗脫液10 min,取上清液作為樣品溶液。

    1.3.2.4 測(cè)定和計(jì)算:用含1%乙酸的甲醇溶液做試劑空白,在653 nm處測(cè)定吸光度。根據(jù)規(guī)程中的計(jì)算公式計(jì)算測(cè)試樣本亞甲藍(lán)殘留量。

    1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理:實(shí)驗(yàn)結(jié)果用SPSS22.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,計(jì)量資料用±s表示,數(shù)據(jù)比較用t檢驗(yàn)分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 標(biāo)準(zhǔn)品溯源性:見(jiàn)表1。

    表1 兩種試劑標(biāo)準(zhǔn)品溯源性

    2.2 安全性:冰乙酸(分析純)危險(xiǎn)性類(lèi)別屬于酸性腐蝕品。見(jiàn)表2。

    表2 兩種試劑所用試劑

    2.3 時(shí)限性:兩種試劑檢測(cè)每批次樣本耗時(shí):試劑盒檢測(cè)每批次(10個(gè)樣本)需要0.5 h,自配試劑檢測(cè)每批次(10個(gè)樣本)需要1 h。見(jiàn)表3。

    表3 兩種試劑檢測(cè)每批次樣本耗時(shí)

    2.4 結(jié)果可比性:兩種試劑平行檢測(cè)病毒滅活血漿亞甲藍(lán)殘留量測(cè)定結(jié)果:亞甲藍(lán)質(zhì)控品檢測(cè)結(jié)果均在控。兩種試劑平行檢測(cè)病毒滅活血漿亞甲藍(lán)殘留量測(cè)定結(jié)果差異性無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表4。

    表4 兩種試劑亞甲藍(lán)殘留量測(cè)定結(jié)果(μmol/L)

    3 討論

    根據(jù)《獻(xiàn)血者健康檢查要求》(GB18467-2012)規(guī)定,獻(xiàn)血后血液檢測(cè)只局限于對(duì)乙型肝炎病毒(HBV)、丙型肝炎病毒(HCV)、艾滋病病毒(HIV)、梅毒(TP)進(jìn)行病毒檢測(cè),不可能完全杜絕經(jīng)輸血傳播的病毒感染風(fēng)險(xiǎn)[6]。亞甲藍(lán)能與病原微生物核酸和蛋白結(jié)合,在適當(dāng)波長(zhǎng)的熒光照射下,發(fā)生一系列化學(xué)或光生物效應(yīng)導(dǎo)致病原體失活達(dá)到滅活血液病毒的目的[7]。同時(shí),一次性使用血漿病毒滅活器材能有效地去除血漿中殘存的白細(xì)胞,提高病毒滅活的安全性,能有效地控制病毒滅活血漿的安全性[8],尤其是對(duì)脂包膜病毒的滅活效果很理想[9]。研究證明,亞甲藍(lán)光化學(xué)法能有效滅活血漿中多種脂質(zhì)包膜病毒以及尚未列入檢測(cè)的病毒[10-11]。亞甲藍(lán)光照法中亞甲藍(lán)的釋放量是決定病毒滅活程度的關(guān)鍵參量,亞甲藍(lán)釋放量過(guò)高,血漿中殘留量過(guò)大,易于導(dǎo)致累積毒性,而過(guò)低,又不能保證病毒滅活的效果。因此,需要對(duì)病毒滅活血漿中殘留的亞甲藍(lán)進(jìn)行檢測(cè)。亞甲藍(lán)的檢測(cè)方法有固相萃取-分光光度法、增敏熒光光譜法、高效液相色譜法、化學(xué)發(fā)光法、共振瑞利散射光譜法[12]?!堆炯夹g(shù)操作規(guī)程》(2019版)采用固相萃取-分光光度法進(jìn)行病毒滅活血漿亞甲藍(lán)殘留量的檢測(cè)。但是在實(shí)際檢測(cè)工作中,規(guī)程采用的亞甲藍(lán)殘留量檢測(cè)項(xiàng)目的常規(guī)檢測(cè)方法操作工費(fèi)時(shí)[13]。采用自配試劑檢測(cè)病毒滅活血漿亞甲藍(lán)殘留量,工作流程煩瑣,每次配制時(shí)由于工作人員、試劑、操作等原因造成的批間誤差也大[14]。血站質(zhì)量管理部門(mén)檢測(cè)結(jié)果直接反應(yīng)血液內(nèi)在質(zhì)量和血站采供血過(guò)程控制情況,直接影響采供血過(guò)程的糾偏效果[15]。在血液抽檢過(guò)程中嚴(yán)格按照標(biāo)準(zhǔn)操作規(guī)程確保檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性,將血液的每一步環(huán)節(jié)把握到位,才能保障血液安全[16-17]。試劑盒生產(chǎn)標(biāo)準(zhǔn)化,按照GB/T21415-2008《體外診斷醫(yī)療器械生物樣品中量的測(cè)量校準(zhǔn)品和控制物質(zhì)賦值的計(jì)量學(xué)溯源性》要求,試劑盒校準(zhǔn)品溯源至企業(yè)工作校準(zhǔn)品(由純品采用稱(chēng)量法賦值)。而自制試劑中的亞甲藍(lán)標(biāo)準(zhǔn)品,無(wú)相關(guān)標(biāo)準(zhǔn),無(wú)法溯源。試劑盒中包含的R1:甲醇,R2:30%甲醇,R3:1%乙酸甲醇三種試劑,均為無(wú)毒無(wú)害試劑。而配制1%乙酸甲醇溶液所用到的冰乙酸(分析純)危險(xiǎn)性類(lèi)別屬于酸性腐蝕品,存在生物安全隱患。試劑盒生產(chǎn)標(biāo)準(zhǔn)化,試劑穩(wěn)定性為6個(gè)月。自配試劑的標(biāo)準(zhǔn)品、30%甲醇、1%乙酸甲醇需要進(jìn)行配置,而且配置后穩(wěn)定性難以評(píng)估,往往需要在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中現(xiàn)配先用,耗時(shí),因而,在檢測(cè)每批次樣本時(shí),試劑盒由于不需要進(jìn)行試劑的配制,要比自配試劑節(jié)省0.5 h。

    從本文測(cè)定結(jié)果來(lái)看,兩種試劑平行檢測(cè)病毒滅活血漿亞甲藍(lán)殘留量測(cè)定結(jié)果差異性無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),表明試劑盒與《血站技術(shù)操作規(guī)程》(2019版)介紹的自配試劑在檢測(cè)病毒滅活亞甲藍(lán)殘留量上結(jié)果一致,符合其要求。

    綜上,商品化試劑盒標(biāo)準(zhǔn)品可溯源、安全、省時(shí)、結(jié)果準(zhǔn)確,可以用于病毒滅活血漿亞甲藍(lán)殘留量的檢測(cè)。

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