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    藤莓湯改善CIA模型大鼠關(guān)節(jié)滑膜免疫炎性損傷的機制研究*

    2020-08-07 09:21:42張正菊相瑞陽張紅紅何毓璽王達利馬衛(wèi)國孟鳳仙
    關(guān)鍵詞:滑膜炎性關(guān)節(jié)

    楊 蕾,張正菊,相瑞陽,顧 文,張紅紅,何毓璽,王達利,劉 慧,馬衛(wèi)國,孟鳳仙

    (1. 北京中醫(yī)藥大學(xué)東方醫(yī)院風(fēng)濕科 北京 100078;2. 北京中醫(yī)醫(yī)院風(fēng)濕科 北京 100010;3. 順義中醫(yī)院風(fēng)濕科 北京 101300)

    類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎(Rheumatoid arthritis,RA)是由T、B細胞介導(dǎo)的全身性自身免疫病,以慢性滑膜炎癥為主要病理特征[1]。RA 主要以滑膜為靶組織,病理可見滑膜充血水腫,滑膜細胞增生,血管周圍可見滑膜增生,肉芽組織增生和血管翳形成,關(guān)節(jié)軟骨破壞,纖維樣關(guān)節(jié)強直[2],最終導(dǎo)致嚴(yán)重畸形、關(guān)節(jié)功能喪失。流行病學(xué)研究發(fā)現(xiàn),全世界患病率約1%,我國患病率約0.3%,本病好發(fā)年齡為40-50歲,且女性患病率是男性的3 倍[3]。西醫(yī)治療RA 主要以緩解癥狀、控制病情為主,以非甾體抗炎藥、改善病情抗風(fēng)濕藥、糖皮質(zhì)激素類藥物等為主要用藥,這些藥物雖能暫時緩解癥狀,但長期安全性并不明確。近年來,白芍總苷、雷公藤等在治療RA 中療效確切,中醫(yī)藥能夠通過多靶點、多途徑、多環(huán)節(jié)治療RA。因此,探究中藥對RA 的作用機制具有重要應(yīng)用價值。

    免疫炎性損傷貫穿著RA 發(fā)病的始終,由于機體免疫穩(wěn)態(tài)被打破,關(guān)節(jié)滑膜免疫系統(tǒng)被激活,大量的淋巴細胞浸潤,引起了關(guān)節(jié)腔內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)失衡,加速關(guān)節(jié)局部免疫-炎性的惡循環(huán)。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),藤莓湯(Tengmei Decoction,TMD)能夠有效緩解膠原誘導(dǎo)性(collagen-induced arthritis,CIA)大鼠關(guān)節(jié)腫脹情況,改善關(guān)節(jié)炎大鼠關(guān)節(jié)炎指數(shù)評分,能夠抑制大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中炎性分子的表達,緩解模型大鼠關(guān)節(jié)滑膜局部炎性損傷。經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),關(guān)節(jié)炎局部突變型P53(Mutant P53,mt-p53)既能夠抑制成纖維細胞的凋亡、促進細胞增殖[14],又能夠通過激活NF-kB 途徑,參與細胞外基質(zhì)降解及關(guān)節(jié)軟骨破壞[15]。增殖誘導(dǎo)配體(a proliferation-inducing ligand,APRIL)則能夠通過與相應(yīng)受體結(jié)合,直接/間接促進T、B 細胞的形成、增殖,參與關(guān)節(jié)滑膜局部炎癥反應(yīng)及免疫調(diào)節(jié)[17]。因此,本實驗通過觀察TMD 對CIA 模型大鼠APRIL、mt-P53、IL-2表達水平的影響,探討其改善RA 模型大鼠關(guān)節(jié)滑膜免疫炎性病理損傷的分子機制是否與調(diào)控滑膜局部mt-P53 信號途徑,抑制炎性細胞浸潤,改善滑膜組織過度增殖有關(guān)。

    1 材料與方法

    1.1 動物

    實驗所需要的動物為:SPF 級雄性SD 大鼠40 只,體重210±10 g,購自北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司,許可證號:SCXK(京)2012-0001。其中6 只為正常組,剩余均為造模組,飼養(yǎng)環(huán)境:溫度21℃-22℃,相對濕度60%-70%,自由飲食,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周。

    1.2 藥物

    實驗所需要的藥物為:藤莓湯[6](忍冬藤30 g、蛇莓15 g、烏梢蛇10 g、沒藥10 g、桑枝15 g、穿山龍15 g 等)濃煎成50 mL,由北京中醫(yī)藥大學(xué)東方醫(yī)院藥劑科提供;來氟米特片(10 mg,蘇州長征-欣凱制藥有限公司,批號:130126)。

    1.3 試劑與儀器

    實驗所需要的試劑與儀器為:牛Ⅱ型膠原(美國Chondrex,批號:130087),完全弗氏佐劑(美國Sigma公司,批號:CAS9007-81-2),Anti-P53 antibody(英國Abcam 公司,批號:ab131442),IL-2 ELISA 試劑盒(美國eBioscience 公司,批號:87728012),Beta-Actin 抗體(英國Abcam 公司,批號:ab6276),GAPDH、目標(biāo)上下游引物為(上海)英駿公司合成。

    定量PCR 儀(美國ABI 公司),DYY-10C 電泳儀(北京六一儀器廠),5810R 臺式冷凍離心機(德國Eppendorf 公司),JY-2Y1 轉(zhuǎn)膜儀(北京君意東方公司),UV-2000 紫外分光光度計(上海尼柯公司),RT-6000型酶標(biāo)儀(深圳雷杜公司)。

    1.4 模型制備、分組及干預(yù)方法

    根據(jù)造模方法[5-6]取牛CⅡ乳劑于大鼠尾根部皮內(nèi)注射,0.2 ml/只,記錄當(dāng)天為初次免疫,9 天后,每只大鼠尾根部皮內(nèi)注射0.1 ml乳化劑,作為加強免疫,正常組兩次分別注射0.2 ml、0.1 ml生理鹽水,免疫16 d時,根據(jù)關(guān)節(jié)炎指數(shù)評分(arthritisindex,AI),進行模型成功評判,具體判定標(biāo)準(zhǔn)參照文獻[7],AI 評分≥4 分視為造模成功。本次實驗成模率為83.33%。

    采用隨機數(shù)字表法選取成模大鼠24只參與后續(xù)實驗研究,中藥給藥組每組6只分為TMD高劑量組(High dose of TMD group,HTMD)、TMD 低劑量組(Low dose of TMD group,L TMD),以TMD 生藥量31.8、15.9 g/(kg·d-1)灌胃;模型組(Model group,MG)、陽性對照組(Positive drug group,PDG)每組6只分別予去離子水10 mL/(kg·d-1)、來氟米特1.87 mg/(kg-1·d-1)灌胃;另設(shè)正常對照組(Normal group,NG),6 只,予去離子水10 mL/(kg·d-1),各組連續(xù)干預(yù)12 周。陽性對照藥組及TMD 高、低劑量組藥量相當(dāng)于臨床常人用藥劑量5.6、11.2、5.6倍。

    1.5 檢測指標(biāo)及方法

    干預(yù)結(jié)束后,10%水合氯醛麻醉后,腹主動脈取血、離心、提血清,用于ELISA 檢測;大鼠死亡后,將其置于冰面,取右踝關(guān)節(jié),置于4%固定液中,以備病理學(xué)觀察。取雙膝關(guān)節(jié)滑膜,迅速放入凍存管中,置于液氮中保存以備Real-time PCR、Western Blot 技術(shù)檢測。

    1.5.1 大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織mt-P53、APRIL、IL-2基因轉(zhuǎn)錄水平檢測

    檢測取大鼠膝關(guān)節(jié)滑膜組織標(biāo)本,使用TR Izol試劑提取RNA 后,進行一步法Real-time PCR 反應(yīng)。反應(yīng)體積為25 μL,反應(yīng)體系含樣本RNA 2 μL,POWER SYBR GREEN 17.2 μL,10 pmol 引物各0.8 μL。反應(yīng)條件為:42℃滅活5 min,95℃變性10 s,95℃退火5 s,60℃延伸34 s,共40個循環(huán)。結(jié)束后終止循環(huán),計算三個重復(fù)均值并記錄。使用Sequence Detection System軟件分析PCR 過程各檢測樣本的Ct 值。引物設(shè)計及合成情況見表1。以β-actin 作為內(nèi)參基因,采用相對定量方法,根據(jù)以下公式計算各基因的起始模板濃度。起始模板相對表達量=2-ΔΔCt

    表1 引物設(shè)計及合成情況

    1.5.2 大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中mt-P53 蛋白表達水平檢測

    取大鼠膝關(guān)節(jié)滑膜組織30 mg,預(yù)冷RIPA蛋白抽提試劑,取1 ml RIPA加入樣品中,混合添加蛋白抑制劑,混勻后充分震蕩以助于裂解,待混合液體,清透為止。置于冰塊上孵育20 min,孵育后,離心4℃,13000 rpm離心20 min,吸取上清,測定蛋白濃度,煮沸變性5 min,-20℃保存。配制12%分離膠,5%濃縮膠,加定量后蛋白樣本,跑電泳。濕法電轉(zhuǎn)移至PVDF膜。將PVDF膜放入封閉袋中,加入含5%脫脂奶粉封閉液TBST,搖床搖動2 h。按照1∶1000孵育一抗,4℃過夜。次日,用封閉液稀釋孵育二抗(1∶5000),稀釋過后將其與膜共同孵育2 h。孵育結(jié)束,將ECL 小心滴加到膜的蛋白上,反應(yīng)180 s;將膠片曝光時長控制在10 s-5 min范圍(注:曝光時間隨不同光強度而調(diào)整),先顯影2 min,之后再定影,詳細流程參照[5]。

    采用凝膠圖像分析系統(tǒng)對Western Blot 蛋白雜交條帶進行掃描,并用gel-pro 軟件對圖像進行灰度分析。相對含量的變化=目的蛋白灰度/actin灰度。

    1.5.3 大鼠血清中IL-2蛋白表達水平檢測

    大鼠經(jīng)腹主動脈取血后,放入15 ml 離心管中,常溫靜置2 h,離心(4℃,3000 rmp,15 min),采用ELISA技術(shù)檢測大鼠血清中IL-2細胞因子的表達水平,嚴(yán)格按照ELISA試劑盒說明書進行具體實驗操作。

    1.6 統(tǒng)計學(xué)方法

    采用SPSS 20.0 統(tǒng)計軟件進行分析,數(shù)據(jù)以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,方差齊時,各組間兩兩比較采用LSD 檢驗,方差不齊時,則采用Tamhance'sT2檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各實驗組大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中APRIL mRNA 轉(zhuǎn)錄水平比較

    與正常組比較,模型組大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中APRIL mRNA 轉(zhuǎn)錄水平上調(diào)(P<0.01)。與模型組比較,各治療組關(guān)節(jié)滑膜組織中APRIL mRNA 轉(zhuǎn)錄水平下調(diào)(P<0.01)(見表2,圖1)。

    表2 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中APRIL mRNA轉(zhuǎn)錄水平x±s,cpm

    圖1 各組大鼠滑膜組織中APRIL mRNA轉(zhuǎn)錄水平

    2.2 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中mt-P53mRNA 轉(zhuǎn)錄及蛋白表達水平比較

    與正常組比較,模型組關(guān)節(jié)滑膜組織中mt-P53mRNA及蛋白表達水平上調(diào)(P<0.01)。與模型組比較,各治療組關(guān)節(jié)滑膜組織中mt-P53mRNA 及蛋白表達水平下調(diào)(P<0.01)(見表3,圖2-圖4)。

    2.3 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜、血清中IL-2mRNA 轉(zhuǎn)錄水平及蛋白表達水平比較

    與正常組比較,模型組滑膜組織、血清中IL-2 mRNA 及蛋白表達水平均上調(diào)(P<0.01,P<0.05)。與模型組比較,各治療組IL-2 mRNA 及蛋白表達水平均水平下調(diào)(P<0.01,P<0.05)(見表4,圖5、圖6)。

    表3 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中mt-P53mRNA轉(zhuǎn)錄及蛋白表達水平±s

    表3 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜組織中mt-P53mRNA轉(zhuǎn)錄及蛋白表達水平±s

    注:與正常組比較,#P<0.05,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.05。

    組別正常對照組模型組陽性對照組藤莓湯高劑量組藤莓湯低劑量組N 6 6 6 6 6 mt-P53 mRNA 91.74±9.92326.98±12.37##151.03±11.02**193.25±11.62**262.91±11.88**蛋白12.13±1.0921.70±2.05##14.76±0.93**16.43±0.66**18.04±0.91**

    表4 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜、血清中IL-2mRNA轉(zhuǎn)錄水平及蛋白表達水平±s

    表4 各組大鼠關(guān)節(jié)滑膜、血清中IL-2mRNA轉(zhuǎn)錄水平及蛋白表達水平±s

    注:與正常組比較,#P<0.05,##P<0.01;與模型組比較,*P<0.05,**P<0.05。

    組別蛋白35.78±13.2454±10.63##32±10.11**44.86±12.63*59.8±18.67**正常對照組模型組陽性對照組藤莓湯高劑量組藤莓湯低劑量組N 6 6 6 6 6 IL-2 mRNA 92.01±6.73199.78±10.81##110.04±12.95**145.86±10.20**147.56±6.86**

    圖2 各組大鼠滑膜組織中mt-p53 mRNA轉(zhuǎn)錄水平

    圖3 各組大鼠血清中mt-p53蛋白表達水平

    圖4 各組大鼠血清中mt-p53蛋白表達水平

    圖5 各組大鼠滑膜組織中IL-2 mRNA轉(zhuǎn)錄水平

    圖6 各組大鼠血清中IL-12蛋白表達水平

    3 討論

    RA 在中醫(yī)屬“痹病”范疇,傳統(tǒng)中醫(yī)認為,本病的發(fā)生發(fā)展是由于人體正氣不足、衛(wèi)外不固,風(fēng)寒濕熱等外邪乘虛而入,留置經(jīng)脈關(guān)節(jié),引起關(guān)節(jié)、筋骨疼痛、腫脹。古代醫(yī)家對本病病因的認識包括內(nèi)因、外因兩個方面。內(nèi)因主要是正氣不足,正氣不足是導(dǎo)致RA 發(fā)病的決定性內(nèi)在作用,機體正氣不足,則外來風(fēng)寒濕熱之邪乘虛侵襲經(jīng)絡(luò)、關(guān)節(jié)、肌肉、四肢等?!饵S帝內(nèi)經(jīng)》云:“正氣存內(nèi),邪不可干”“邪之所湊,其氣必虛”,因此“正虛”才是本病發(fā)展的核心環(huán)節(jié)。外因包括飲酒當(dāng)風(fēng),冒雨涉水,或久居濕地等,則寒濕、濕熱等外邪乘虛入侵,壅滯經(jīng)絡(luò)、關(guān)節(jié),導(dǎo)致疾病發(fā)生。故感受外邪是類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎發(fā)生的重要環(huán)節(jié)。邪盛正虛,內(nèi)外因合,發(fā)為此病。

    近代醫(yī)家對痰濁、瘀血互結(jié)致病頗為重視。宋代醫(yī)家陳無擇在《敘痹論》中提到:“榮衛(wèi)不清,氣血敗濁,凝結(jié)而成”。清代喻昌《醫(yī)門法律》曰:“風(fēng)寒濕三痹之邪,每借人胸中之痰為相援”。故痰濁留竄骨節(jié)經(jīng)絡(luò),閉阻氣血,凝而為痹。清代王清任在《醫(yī)林改錯》中也有“瘀血致痹”說。痰濁和瘀血既是機體在病邪作用下的病理產(chǎn)物,又是機體進一步病變的因素。本病日久,痰濁和瘀血互結(jié),以致病情纏綿難愈,出現(xiàn)關(guān)節(jié)腫大變形僵硬,皮下結(jié)節(jié),肢體麻木,病處固定而拒按,日輕夜重,局部腫脹或有硬結(jié),口干不欲飲,舌質(zhì)紫黯或有瘀斑,舌下靜脈迂曲延長,脈細澀等證。

    RA 顯著地病理變化為滑膜增生:滑膜層增多,由正常的3~5 層增厚到10~20 層且以襯里層細胞異常增生最為明顯[2],成纖維樣滑膜細胞是其主要的增殖細胞,同時也是滑膜組織中促炎性細胞因子及基質(zhì)降解酶的主要來源,其具有自主增生、無錨定生長、缺乏接觸抑制和表達原癌基因等腫瘤細胞的生長特點。經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),RA 關(guān)節(jié)滑膜中成纖維細胞過度增殖與p53 基因突變有關(guān)[12]。p53 是一種腫瘤抑制基因,在人體存在兩種表達形式:野生型(wild type p53,wt-p53)與mt-p53。wt-p53 可以急速機體受損的DNA 或異常增殖的癌基因細胞凋亡。mt-p53 蛋白是wt-p53 基因發(fā)生突變后表達的蛋白,因分子構(gòu)象發(fā)生變化而半衰期延長,mt-p53 不僅失去了促細胞凋亡等能力,還可干擾wt-p53 基因的功能[13]。而在RA患者關(guān)節(jié)滑膜中發(fā)現(xiàn)wt-p53 功能喪失。在AA 大鼠模型中,mt-P53 通過調(diào)控細胞周期,影響FLS 的凋亡[14]。mt-P53 通過NF-KB 途徑,介導(dǎo)MMP-9 表達,參與細胞外基質(zhì)降解及關(guān)節(jié)軟骨破壞[15]。APRIL 是腫瘤壞死因子配體家族成員,主要由單核細胞、巨噬細胞、B 細胞、T 細胞產(chǎn)生。APRIL通過與相應(yīng)受體結(jié)合,促進腫瘤的形成、增殖及存活,同時參與機體的炎癥反應(yīng)及免疫調(diào)節(jié)等[16]。在RA患者的血清中出現(xiàn)高表達的APRIL。APRIL刺激RA 患者通過FLS 產(chǎn)生白細胞介素-1β(Lnterleukin1β,IL-1β)、腫瘤壞死因子-α(Tumor necrosis factor,TNFα)、以及IL-6,加速局部炎癥反應(yīng)。同時異常增殖的FLS 能夠分泌APRIL,進一步通過刺激信號加速T 細胞活化,形成正反饋[17]。此外,RA 患者滑膜中的FLS產(chǎn)生APRIL,并與其受體結(jié)合,通過自分泌和旁分泌的形式,促進FLS 增殖,通過細胞網(wǎng)絡(luò)的相互作用,加速T 細胞活化,形成正反饋[18]。IL-2 是一種活化并維持T 細胞分化和增殖的生長因子,參與炎癥和自身免疫性反應(yīng)[19]。研究發(fā)現(xiàn),RA 患者血清中IL-2、TNF-a及白細胞介素-13(Lnterleukin13,IL-13)均明顯升高,且與RA 疾病活動度密切相關(guān)[20]。中藥能夠降低CIA模型大鼠血清中IL-2、TNF-a 及IL-1 表達水平,改善大鼠關(guān)節(jié)腫脹度[21]。

    本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),TMD 能夠改善通過激活PPARr/NF-ΚB 途徑,抑制IL-6、TNF-α等炎性因子表達[5],還能夠激活TRAF3,抑制NF-ΚB 入核,改善CIA大鼠免疫炎性損傷[6]。因此,TMD 改善CIA 模型大鼠關(guān)節(jié)炎癥反應(yīng)是明確的,結(jié)合當(dāng)前研究熱點,我們設(shè)計了本次實驗,目的是探究TMD 是否能夠抑制關(guān)節(jié)滑膜過度增殖,減少關(guān)節(jié)局部滑膜免疫炎性細胞過度聚集,進而改善關(guān)節(jié)炎大鼠關(guān)節(jié)局部免疫炎性反應(yīng)?本研究發(fā)現(xiàn),CIA 模型大鼠滑膜組織中mt-P53、APRIL、IL-2mRNA 轉(zhuǎn)錄水平及mt-P53、IL-2mRNA 蛋白表達水平明顯高于正常組,提示mt-P53、APRIL 參與關(guān)節(jié)滑膜免疫炎性損傷,與相關(guān)文獻報道一致。經(jīng)TMD 干預(yù)后,各劑量組APRIL mRNA 轉(zhuǎn)錄水平,IL-2、mt-P53mRNA 轉(zhuǎn)錄水平及蛋白表達水平顯著下調(diào),表明TMD 能夠抑制mt-P53、IL-2、APRIL 表達水平。因此,我們認為TMD 能夠降低大鼠關(guān)節(jié)滑膜、血清中mt-P53、IL-2、APRIL 表達水平,改善關(guān)節(jié)炎模型大鼠關(guān)節(jié)滑膜免疫炎性損傷,可能與TMD 抑制關(guān)節(jié)滑膜過度增殖,降低炎癥因子的表達有關(guān)。相關(guān)研究將進一步進行。

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