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    白藜蘆醇聯(lián)用紫杉醇對(duì)食管癌EC109細(xì)胞凋亡的影響

    2020-07-29 13:35:50劉曉潔李永梅霍峻鋒趙勁竹董亞龍周凱瑞張雪燕李蕾蕾王淙
    中醫(yī)腫瘤學(xué)雜志 2020年3期
    關(guān)鍵詞:實(shí)驗(yàn)檢測(cè)

    劉曉潔,李永梅,霍峻鋒,趙勁竹,董亞龍,周凱瑞,張雪燕,李蕾蕾,王淙

    1.鄭州大學(xué)藥物研究院,河南 鄭州 450001;2.濱州醫(yī)學(xué)院煙臺(tái)附屬醫(yī)院,山東 煙臺(tái) 264000;3.河南省新鄉(xiāng)市第二人民醫(yī)院,河南 新鄉(xiāng) 453000

    食管癌是一種消化道惡性腫瘤,其惡性程度高,在全球范圍內(nèi)惡性腫瘤死亡人數(shù)中排第六位[1]。多數(shù)患者在確診時(shí)就已經(jīng)是晚期,食管癌的五年生存率不足30%[2]。目前,化療是食管癌的主要治療手段之一。

    紫杉醇(Paclitaxel,PTX)具有廣泛的抗腫瘤活性,對(duì)卵巢癌,乳腺癌,前列腺癌和食管癌等惡性腫瘤的早期治療具有一定的效果[3,4]。臨床常用PTX治療食管癌,但其具有較強(qiáng)的毒副作用并易產(chǎn)生耐藥性。因此,聯(lián)合用藥成為近年來(lái)研究的熱點(diǎn)。但聯(lián)合用藥也可能會(huì)產(chǎn)生一定的拮抗作用。研究發(fā)現(xiàn),在某些惡性腫瘤中,白藜蘆醇聯(lián)用紫杉醇具有協(xié)同作用[5,6]。白藜蘆醇(Resveratrol,Res)在結(jié)構(gòu)上類似于二苯乙烯,是一種多酚類植物抗毒素,存在于多種植物和草藥中,如葡萄、藍(lán)莓、桑葚、花生、虎杖等[7]。其具有多種藥理學(xué)和生理學(xué)活性,包括抑制腫瘤、心血管保護(hù)作用、減少血小板凝集以及化學(xué)預(yù)防作用[8-11]。目前,有部分臨床醫(yī)生鼓勵(lì)患者服用含有白藜蘆醇的膳食補(bǔ)充劑或食物以提高整體的藥物療效。在臨床治療中,許多天然化合物與藥物同時(shí)使用后,可以改變藥物外排轉(zhuǎn)運(yùn)體特性從而影響藥代動(dòng)力學(xué)。本課題主要探究白藜蘆醇對(duì)紫杉醇抗腫瘤作用的影響,以期為臨床應(yīng)用提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞以及主要試劑

    PTX和Res購(gòu)自海南康力制藥有限公司。二甲基亞砜(DMSO)和核糖核酸酶購(gòu)自索萊寶(中國(guó)北京)。溴化噻唑藍(lán)四氮唑(MTT),羅丹明123(Rh123)和碘化丙啶(PI)購(gòu)自Sigama(美國(guó)密蘇里州圣路易斯市)。Hoechst 33258(雙苯酰亞胺)購(gòu)自碧云天公司。食管癌EC109細(xì)胞購(gòu)自中科院上海細(xì)胞庫(kù)。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng)

    將EC109細(xì)胞轉(zhuǎn)移至含有10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基的培養(yǎng)皿中后,置于37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。2~3 d進(jìn)行一次傳代,隔天更換一次培養(yǎng)基以供給細(xì)胞營(yíng)養(yǎng),取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    1.3 使用MTT法檢測(cè)各個(gè)用藥組的細(xì)胞活力

    將EC109細(xì)胞接種于96孔板中,孵育過(guò)夜。將不含藥物的培養(yǎng)基加入對(duì)照孔中,用PTX和Res單獨(dú)使用以及不同濃度的PTX和Res組合處理細(xì)胞48 h,然后每孔加入20 μlMTT。4 h后吸去96孔板中的溶液,每孔加入150 μLDMSO。搖床上震蕩10 min。使用酶標(biāo)儀在490 nm處讀取每孔的吸光度。

    1.4 結(jié)晶紫染色檢測(cè)細(xì)胞的克隆形成能力

    將EC109細(xì)胞接種于6孔板中每孔鋪1 000個(gè)細(xì)胞。隔夜培養(yǎng)后,使用不同組別的藥物處理6孔板中的細(xì)胞48 h。棄去含藥物的培養(yǎng)基并加入全新培養(yǎng)基。然后將細(xì)胞培養(yǎng)7天,期間隔天換液。7天后棄去舊培養(yǎng)基,PBS洗2次,加1 mL甲醇固定30 min,棄去固定液,PBS洗2次,每孔加入2 mL 1%結(jié)晶紫染液,染色30 min。棄去染液,PBS洗3次。室溫自然晾干。Image J計(jì)數(shù)細(xì)胞集落。相機(jī)拍攝集落圖像。實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)三次。

    1.5 Hoechst 33258染色法檢測(cè)細(xì)胞核的變化情況

    將細(xì)胞接種在提前放入無(wú)菌玻璃片的6孔板中,隔夜培養(yǎng)后,使用不同組別的藥物處理24 h。藥物處理后,棄去藥液,用4%多聚甲醛固定15 min,PBS清洗6孔板,Hoechst 33258避光染色30 min。PBS洗2次,充分洗去多余染料,小心取出玻璃片,蓋在蓋破片上,用濾紙吸走周邊殘余液體,熒光顯微鏡觀察拍照。實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)三次。

    1.6 流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡

    通過(guò)流式細(xì)胞儀用AnnexinV-FITC/PI染色試劑盒分析細(xì)胞凋亡。將EC109細(xì)胞接種在6孔板中貼壁,并用藥物處理細(xì)胞24 h。收集細(xì)胞,PBS洗2次,加入Binding Buffer,然后加入1 μL Annexin V-FITC染液,避光染色10 min,每組樣品加入PI染色液1 μL,避光染色5 min。加入適量PBS調(diào)節(jié)細(xì)胞濃,渦旋,處理完樣品后使用流式細(xì)胞儀檢測(cè)每組樣品中細(xì)胞凋亡百分比。實(shí)驗(yàn)重復(fù)三次。

    1.7 羅丹明123(Rh123)外排實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)Rh123蓄積情況

    將EC109細(xì)胞接種于6孔板中,孵育過(guò)夜。藥物處理后繼續(xù)孵育24 h。隨后,加入用新鮮培養(yǎng)基配制的1 μg/mL Rh123溶液,在細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育30 min。收集細(xì)胞,PBS洗兩次。流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞內(nèi)羅丹明熒光強(qiáng)度。

    1.8 HPLC檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)PTX含量

    取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞接種于6孔板中。根據(jù)藥物的添加劑量分為四組:空白對(duì)照,PTX單用組(1,3 μg/mL PTX)、Res單用組(25 μM Res)、聯(lián)用組(1 μg/mL PTX+25 μM Res,3 μg/mL PTX+25 μM Res)。用不同組別的藥物處理細(xì)胞2 h,收集細(xì)胞,然后用PBS洗滌,離心并重懸在1 mL PBS中。用細(xì)胞破碎器破碎細(xì)胞。每管樣品加6 mL乙酸乙酯沉淀,渦旋5 min。4950 rpm,4℃,離心15 min。取上清5 mL,用氮?dú)獯祾邇x吹干。將每個(gè)樣品重新溶解在100 μL甲醇溶液中,并在4℃下以11 500 rpm離心細(xì)胞15 min,然后通過(guò)HPLC進(jìn)行檢測(cè)。隨后,用70 μL上清液用于定量分析。使用Agilent 1200 HPLC系統(tǒng),分析樣品,所述系統(tǒng)包括四元泵,自動(dòng)進(jìn)樣器和UV檢測(cè)器。使用Kromasil C18色譜柱(150×4.6 mm,5 μm,Diamonsil)進(jìn)行分離。流速為1.0 mL/min;流動(dòng)相:甲醇∶乙腈∶水=35∶56∶39;檢測(cè)波長(zhǎng)227 nm,柱溫30℃,進(jìn)樣量20 μL。

    1.9 統(tǒng)計(jì)方法

    每項(xiàng)實(shí)驗(yàn)重復(fù)三次。SPSS 21.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,采用方差分析對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行比較。P<0.05表示有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。

    2 結(jié)果

    2.1 Res降低PTX在EC109細(xì)胞中的細(xì)胞毒作用

    為了測(cè)量Res和PTX單用和聯(lián)合用藥的細(xì)胞毒性,用不同濃度的PTX(10,30,60和120 nmol/L),Res(5,10和25 μmol/L)處理EC 109細(xì)胞48 h。結(jié)果如表1及圖1所示。PTX在濃度為10、30、60和120 nmol/L時(shí)可顯著抑制EC109細(xì)胞的增殖,且具有濃度依賴性。與單用PTX相比,三種不同濃度的Res對(duì)EC109細(xì)胞增殖均沒(méi)有明顯的抑制作用。然而,PTX在聯(lián)用Res時(shí),Res顯著減弱了PTX對(duì)EC109細(xì)胞的細(xì)胞毒作用。通過(guò)CompuSyn軟件和Chou-Talalay方法對(duì)Res和PTX的聯(lián)用指數(shù)(CI)進(jìn)行評(píng)估[12],CI<1表示協(xié)同作用,CI>1表示拮抗作用,CI=1表示加和作用。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,不同組合濃度中,Res聯(lián)用PTX的CI值均大于1,如圖2所示。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,我們選擇25 μM Res聯(lián)用60 nM PTX用于后期研究。

    2.2 細(xì)胞形態(tài)學(xué)改變

    為了觀察藥物處理引起的形態(tài)變化,在PTX濃度為60 nM,Res濃度為25 μM時(shí),以不同組合對(duì)EC109細(xì)胞進(jìn)行處理。結(jié)果如圖3所示??瞻讓?duì)照組中EC109細(xì)胞粘附狀態(tài)及生長(zhǎng)狀態(tài)良好,具有清晰的邊界和不規(guī)則形狀。用25 μMRes處理后,EC109細(xì)胞的細(xì)胞狀態(tài)和形狀與空白對(duì)照組相比沒(méi)有顯著變化。當(dāng)用60 nM PTX處理時(shí),細(xì)胞變圓,體積減小,細(xì)胞漂浮,大多數(shù)細(xì)胞經(jīng)歷了類似于細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)改變。當(dāng)用PTX和Res同時(shí)處理細(xì)胞時(shí),細(xì)胞形態(tài)又趨于正常,細(xì)胞數(shù)顯著增加,細(xì)胞碎片減少。

    表1 PTX與Res聯(lián)用對(duì)EC109細(xì)胞細(xì)胞活力的影響(%)(n=3)Table 1 Effect of PTX combined with Res on EC109 cell viability(%)(n=3)

    圖1 PTX與Res聯(lián)用對(duì)EC109細(xì)胞細(xì)胞活力的影響Figure 1 Effect of PTX combined with Res on EC109 cell viability

    圖2 不同藥物處理組中的聯(lián)合用藥指數(shù)Figure 2 Combination index in different drug treatment groups

    圖3 不同藥物處理組的細(xì)胞形態(tài)(200×)Figure 3 Cell morphology in different drug treatment groups(200×)

    2.3 Res減少PTX誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡

    以上結(jié)果表明,Res顯著削弱了PTX在EC109細(xì)胞中的細(xì)胞毒性??寺⌒纬蓪?shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,PTX處理過(guò)的組別中,幾乎沒(méi)有觀察到細(xì)胞克隆所形成的集落,克隆形成率為(10.81±1.24%)。當(dāng)用Res聯(lián)合PTX處理細(xì)胞時(shí),EC109的克隆形成能力相較于單獨(dú)使用PTX處理時(shí)顯著增強(qiáng),且克隆形成率增加至(18.81±2.91%),見(jiàn)表2。

    表2 不同藥物處理組中的克隆形成率Table 2 Colony formation ratein different drug treatment groups

    通過(guò)Hoechst 33258染色和流式細(xì)胞術(shù)來(lái)檢測(cè)EC109細(xì)胞的凋亡。Hoechst 33258染色用于觀察形態(tài)學(xué)變化,Annexin V和PI染色用于研究細(xì)胞凋亡率。不同藥物處理組的EC109細(xì)胞用Hoechst 33258染色并在熒光顯微鏡下觀察,結(jié)果如圖4所示。在空白對(duì)照組中觀察到細(xì)胞核中的藍(lán)色熒光較為均勻。用60nM PTX處理后,觀察到細(xì)胞核碎裂和明顯的凋亡小體。在25 μM Res處理組中,只有少數(shù)細(xì)胞表現(xiàn)出核染色質(zhì)凝聚和凋亡小體。然而,在用60 nM PTX與25 μM Res聯(lián)用處理后,與單用PTX處理組相比,凋亡細(xì)胞的數(shù)量顯著降低。

    圖4 不同藥物處理組中細(xì)胞凋亡相關(guān)的形態(tài)學(xué)變化(200×)Figure 4 Morphological changes related to apoptosis in different drug treatment groups(200×)

    Annexin V/PI凋亡試劑盒用于檢測(cè)流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡百分比,如表3及圖5所示。在EC109細(xì)胞中,單用60 nM PTX組可引起細(xì)胞凋亡,凋亡率為(39.8±5.67%)。單用25 μM Res組中凋亡率為(14.1±2.53%)。然而與單用PTX對(duì)比,聯(lián)合Res用藥組的細(xì)胞凋亡率明顯下降,凋亡率為(22±3.99%)。這些結(jié)果表明,在一定濃度下,Res可拮抗PTX誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡作用。

    2.4 Res與PTX聯(lián)用可增強(qiáng)P-gp活性

    Rh123是一種黃綠色熒光染料,是P-gp跨膜蛋白的特異性底物,在低濃度下無(wú)細(xì)胞毒性[13]。若P-gp的轉(zhuǎn)運(yùn)能力增強(qiáng),Rh123的攝取將減少,細(xì)胞中的平均熒光強(qiáng)度將降低。使用FlowJo 7.6軟件分析數(shù)據(jù)。細(xì)胞內(nèi)積累的熒光強(qiáng)度顯示,與單用PTX相比,組合組中平均熒光強(qiáng)度降低2.02倍。P-gp可介導(dǎo)Rh123積累量的變化。結(jié)果表明,Res與PTX聯(lián)用時(shí)通過(guò)增強(qiáng)P-gp活性降低了EC109細(xì)胞中的PTX積累。實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表4所示。

    2.5 Res減少細(xì)胞內(nèi)PTX的積累

    通過(guò)HPLC檢測(cè)不同用藥組中細(xì)胞內(nèi)PTX的積累濃度。結(jié)果如表5和圖6所示。短箭頭標(biāo)識(shí)的為PTX的吸收峰,保留時(shí)間為6.99 min。利用所用的色譜條件,可以分離細(xì)胞內(nèi)的PTX和內(nèi)源性物質(zhì),沒(méi)有雜質(zhì)干擾。1 μg/mL和3 μg/mL PTX與25 μM Res聯(lián)用組均比PTX單用組細(xì)胞內(nèi)PTX的含量低。結(jié)果表明,Res減少了EC190細(xì)胞中PTX的積累。

    表3 不同藥物處理組中的細(xì)胞凋亡率Table 3 Apoptosis rate in different drug treatment groups

    3 討論

    圖5 不同藥物處理組細(xì)胞凋亡結(jié)果Figure 5 Apoptosis results of different drug treatment groups

    表4 不同藥物處理組的細(xì)胞平均熒光強(qiáng)度Table 4 Average fluorescence intensity of cells in different drug treatment groups

    食管癌是一種常見(jiàn)的消化系統(tǒng)惡性腫瘤,其治療方案較多,在很多情況下藥物聯(lián)用的治療方案是有效的,但也存在藥物之間的拮抗作用。值得注意的是,本研究結(jié)果顯示,PTX和Res之間的相互作用降低了PTX抑制食管癌的療效。通過(guò)HPLC實(shí)驗(yàn),我們發(fā)現(xiàn)Res可降低PTX在細(xì)胞內(nèi)的蓄積,但是Res拮抗PTX的更深入的作用機(jī)制有待進(jìn)一步研究。

    來(lái)自蔬菜和水果的天然化合物通常被認(rèn)為是安全的,很多研究也表明其可降低患癌風(fēng)險(xiǎn)。因此,合理的膳食補(bǔ)充劑、中草藥可與處方藥物同時(shí)使用。Res作為惡性腫瘤患者膳食的佐劑,可能與藥物具有相互作用。此外,還要考慮來(lái)自食物中Res在體內(nèi)的吸收、分布、代謝和排泄特性,才能確定惡性腫瘤患者在使用PTX時(shí)能否能同時(shí)補(bǔ)充Res。然而,藥物與植物化學(xué)物質(zhì)之間相互作用的研究太少。食物成分對(duì)P-gp等藥物轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白功能的影響尚未得到廣泛研究[14]。有研究在膀胱癌、乳腺癌等惡性腫瘤中觀察到Res和PTX聯(lián)用會(huì)抑制PTX的抗腫瘤作用,且在乳腺癌的研究中,通過(guò)動(dòng)物體內(nèi)實(shí)驗(yàn)證實(shí)了Res聯(lián)用PTX會(huì)降低PTX誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡作用[15,16]?;谏鲜鲅芯浚彻馨┗颊咴谑褂肞TX治療期間,食用含有Res的食物似有降低PTX藥效的風(fēng)險(xiǎn),然而這一理論在未來(lái)仍需體內(nèi)和臨床的進(jìn)一步驗(yàn)證。

    表5 不同藥物處理組細(xì)胞內(nèi)PTX的積累濃度Table 5 Accumulated concentration of PTX in cells of different drug treatment groups

    圖6 不同藥物處理組中PTX的吸收峰面積Figure 6 The area of PTX absorption peak in different drug treatment groups

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