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    叢枝菌根真菌對(duì)太白貝母生長(zhǎng)及質(zhì)量標(biāo)志物的影響

    2020-07-24 10:22:50張建海馮彬彬吳翠色
    關(guān)鍵詞:叢枝貝母太白

    張建海,馮彬彬,吳翠色

    1.重慶三峽醫(yī)藥高等專(zhuān)科學(xué)校,重慶 404120;2.重慶市神女藥業(yè)股份有限公司,重慶 404700

    叢枝菌根(arbuscular mycorrhiza,AM)真菌在自然界分布廣泛,并能與80%以上被子植物根系建立良好的共生體系,改善宿主植物水分和營(yíng)養(yǎng)狀況,提高植物抗逆性,影響次生代謝活動(dòng),具有促進(jìn)宿主植物生長(zhǎng)、提高產(chǎn)量和改善品質(zhì)作用。我國(guó)藥用植物資源十分豐富,近年來(lái),將AM 真菌作為菌劑使用已成為提高栽培藥用植物產(chǎn)量和品質(zhì)、穩(wěn)定其藥效與藥源的新途徑[1-3]。太白貝母Fritillaria TaipaiensisP. Y. Li為2015 年版《中華人民共和國(guó)藥典》(一部)川貝母的基源植物之一[4]。目前川貝母類(lèi)藥材資源匱乏,而太白貝母是人工栽培成功的極少數(shù)川貝母品種之一,具有很高的藥用研究?jī)r(jià)值[5-6]。本研究通過(guò)盆栽接種試驗(yàn),研究4 種AM 真菌對(duì)太白貝母生長(zhǎng)的生理生化影響,探討太白貝母質(zhì)量標(biāo)志物含量與AM 真菌侵染之間的關(guān)系,為提高人工栽培藥用植物質(zhì)量標(biāo)志物含量、揭示中藥材道地性的形成機(jī)理,以及創(chuàng)新藥用植物人工栽培技術(shù)提供試驗(yàn)依據(jù)。

    1 儀器與試藥

    Agilent1260 智能柱溫箱、VWD 紫外檢測(cè)器,美國(guó)安捷倫公司;KQ5200E 型超聲波清洗器,昆山市超聲儀器有限公司;BSA224S 電子天平,賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司;DGX-9143B-1 型數(shù)顯鼓風(fēng)干燥箱,上海福瑪實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;HH.SYZ1-NI 型電熱恒溫水浴鍋,北京市長(zhǎng)風(fēng)儀器儀表公司;SHB-IV雙A 循環(huán)式多用真空泵,鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司;LI-6400 便攜式光合作用測(cè)定儀,北京力高泰科技有限公司;1860PC 紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),上海譜元儀器有限公司;SG-5404A 磁力攪拌器,上海碩光電子科技有限公司;SZ51 奧林巴斯顯微鏡,上海普赫光電科技有限公司; Millipore 純水系統(tǒng)。

    地表球囊霉Glomus versiforme(GV)、聚叢球囊霉Glomus aggregatum(GA)、摩西球囊霉Glomus mosseae(GM)、縮球囊霉Glomus constrictum(GC1),購(gòu)自北京市農(nóng)林科學(xué)院植物營(yíng)養(yǎng)與資源研究所中國(guó)AM 真菌種質(zhì)資源庫(kù);太白貝母,產(chǎn)自重慶巫山篤坪鎮(zhèn)重慶神女藥業(yè)股份有限公司種植基地,由重慶三峽醫(yī)藥高等專(zhuān)科學(xué)校付紹智教授鑒定為百合科貝母屬太白貝母Fritillaria TaipaiensisP. Y. Li。西貝母堿苷、貝母堿甲、貝母堿乙、貝母辛對(duì)照品,中國(guó)食品藥品檢定研究院,批號(hào)分別為111917-201202、110750-201612、110751-201712、111892-201402;磷酸、甲醇、乙腈為色譜純,石油醚、三氯甲烷、甲醇為分析純,實(shí)驗(yàn)用水為超純水;KH2PO4,牛血清蛋白,30%過(guò)氧化氫。

    2 方法

    2.1 接種

    取田間耕作層土壤,風(fēng)干過(guò)篩,在高壓滅菌鍋中滅菌1.5 h。采用室溫盆栽方法,分為接種GV、GA、GM、GC1 和不接種(對(duì)照)5 個(gè)處理,每個(gè)處理重復(fù)3 次,每盆裝土5 kg,每千克土壤分別加氮肥(硫酸銨)、磷肥(磷酸二氫鉀)、鉀肥(硫酸鉀)各0.1、0.15、0.15 g 作底肥。每盆選擇大小一致的太白貝母鱗莖10 株定植,每盆層施AM 真菌50 g,對(duì)照組不加任何真菌,所有處理于生長(zhǎng)期間施有機(jī)肥1 次,于太白貝母種植基地溫室大棚培養(yǎng),定期管理。所取材料帶回實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行處理,備用。

    2.2 指標(biāo)檢測(cè)

    2.2.1 侵染率將采集的太白貝母根系用水沖洗干凈,剪成l cm根段,采用Phillips 和Hayman 方法(即KOH 透明-乳酸甘油曲利本蘭染色法)測(cè)定AM 真菌侵染率。將太白貝母根系置于10%KOH 溶液中,90 ℃水浴處理45 min,棄去KOH,用自來(lái)水沖洗干凈,置于1%HCl中酸化,再將植物根系移至乳酸甘油曲利本蘭染液中,90 ℃水浴染色15 min。于顯微解剖鏡20×40 倍鏡下采用十字交叉法測(cè)定太白貝母根系的AM 真菌侵染率[7]。

    2.2.2 生物量于太白貝母生長(zhǎng)期開(kāi)花前葉片完全伸展后,利用直尺測(cè)定葉片的長(zhǎng)度和寬度;開(kāi)花期測(cè)定地上部分的鮮重和干重;地上部分枯萎后挖取鱗莖,測(cè)定鱗莖的鮮重和干重,并計(jì)算折干率。折干率(%)=干重÷鮮重×100%。

    2.2.3 葉片光合指標(biāo)在太白貝母生長(zhǎng)旺盛期每日10:00 左右,用LI-6400 便攜式光合作用測(cè)定儀,選用人工光源測(cè)定葉片凈光合速率(Pn)、蒸騰速率(Tr)、氣孔導(dǎo)度(Gs)和胞間CO2濃度(Ci)[8]。

    2.2.4 葉片生化指標(biāo)

    取0.5 g 鮮葉片,加入8 mL 磷酸緩沖液,于冰浴中研磨,勻漿轉(zhuǎn)入離心管,于4 ℃、8000 r/min 離心10 min,上清液用于保護(hù)酶系統(tǒng)測(cè)定。超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)和過(guò)氧化物酶(POD)活性分別采用氮藍(lán)四唑(NBT)光化學(xué)還原法(以抑制NBT 降解50%作為1 個(gè)酶活單位)、愈創(chuàng)木酚比色法(以l min 光密度值變化0.01 作為1 個(gè)酶活單位)和紫外吸收法(以光密度值變化0.01 作為1 個(gè)酶活單位)測(cè)定[8]??扇苄蕴呛坑幂焱壬y(cè)定,可溶性蛋白含量用考馬斯亮藍(lán)G-250 染色法測(cè)定。

    2.2.5 質(zhì)量標(biāo)志物采用周濃等[9-11]測(cè)定方法,將太白貝母干燥鱗莖粉碎,取樣品粉末3.0 g,置250 mL 圓底燒瓶中,加150 mL 石油醚(30~60 ℃)浸泡12 h 進(jìn)行脫脂處理,過(guò)濾,濾渣水浴揮干后加質(zhì)量分?jǐn)?shù)28%濃氨試液10 mL,浸潤(rùn)2 h,精密加入三氯甲烷-甲醇(4∶1)混合溶液150 mL,混勻,置70 ℃水浴中加熱回流3 h,放冷,過(guò)濾,回收濾液至干,殘?jiān)蛹状既芙獠⒍ㄈ葜? mL量瓶中,搖勻,0.45 μm 微孔濾膜過(guò)濾,HPLC 測(cè)定不同處理太白貝母中總生物堿、貝母辛、西貝母堿苷、貝母堿甲、貝母堿乙含量。色譜條件:采用Agilent Extend-C18色譜柱(4.0 mm×250 mm,5 μm),以0.03%二乙胺水-甲醇為流動(dòng)相梯度洗脫,柱溫30 ℃,流速1 mL/min,進(jìn)樣量10 μL。

    2.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    采用SPSS22.0 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析。數(shù)據(jù)用—x±s表示,組間比較采用方差分析。P<0.05 表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    3 結(jié)果

    3.1 叢枝菌根真菌對(duì)太白貝母的侵染率

    不同處理太白貝母的AM 真菌侵染率見(jiàn)圖1??梢钥闯觯煌珹M 真菌均能顯著提高太白貝母侵染率(P<0.05),且不同AM 真菌對(duì)太白貝母根系的侵染能力有所不同,GA 對(duì)太白貝母的侵染率顯著高于其他3 種AM 真菌。同時(shí),對(duì)照組也有一定侵染率,說(shuō)明太白貝母栽種前根系已被少量AM 真菌侵染。

    圖1 不同處理太白貝母的AM 真菌侵染率比較

    3.2 叢枝菌根真菌對(duì)太白貝母生物量的影響

    太白貝母生物量指標(biāo)測(cè)定結(jié)果見(jiàn)表1。可以看出,與對(duì)照比較,不同處理的太白貝母鱗莖鮮重和干重均顯著增加(P<0.05),其中接種GA 鱗莖鮮重和干重增加最多,分別比對(duì)照高49.52%和77.82%,接種GV鮮重和干重增加最少,分別比對(duì)照高 31.59%和47.28%;不同處理的太白貝母鱗莖折干率與對(duì)照比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與對(duì)照比較,不同處理的太白太母地上部分鮮重和干重均顯著增加(P<0.05),其中接種GA 地上部分鮮重和干重增加最多,分別比對(duì)照高66.15%和76.45%;接種GC1 鮮重和干重增加最少,分別比對(duì)照高42.10%和49.42%;不同處理的太白貝母地上部分折干率與對(duì)照比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。不同處理的太白貝母葉長(zhǎng)和葉寬均高于對(duì)照,其中GA 處理增加較多,GC1 處理增加較少,但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

    表1 不同處理太白貝母生物量比較(—x±s,n=3)

    3.3 叢枝菌根真菌對(duì)太白貝母光合特性的影響

    不同處理的太白貝母葉片光合指標(biāo)測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖2。與對(duì)照比較,接種GV、GA、GM、GC1 均能顯著提高葉片凈光合速率(P<0.05),分別比對(duì)照提高15.11%、55.14%、30.74%、24.92%,其中接種GA最高;氣孔導(dǎo)度與對(duì)照比較均顯著增加(P<0.05),分別提高36.32%、59.20%、29.01%、41.75%,其中接種GA 最高;蒸騰速率與對(duì)照比較均不同程度增加,分別提高21.42%、29.59%、11.22%、10.20%,接種GV、GA 差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),其中接種GA 增加最多;胞間CO2濃度與對(duì)照比較均不同程度增加,分別提高5.84%、24.81%、16.35%、10.75%,接種GA、GM、GC1 差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),其中接種GA 增加最多。

    圖2 不同處理太白貝母葉片光合指標(biāo)比較(—x±s,n=3)

    3.4 叢枝菌根真菌對(duì)太白貝母葉片生理特性的影響

    不同處理的太白貝母葉片生化指標(biāo)測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖3、圖4。不同處理均可顯著提高葉片CAT、SOD、POD 活性(P<0.05)。CAT 活性以接種GA 最高,為110.25 U/(g·min);接種GM 最低,為89.14 U/(g·min)。SOD 活性以接種GA 最高,為122.14 U/(g·FW),接種GC1 最低,為117.16 U/(g·FW);POD 活性以接種GA 最高,為95.12 U/(g·min),接種GC1 最低,為88.21 U/(g·min)。接種GV、GA、GM、GC1 后葉片可溶性蛋白含量顯著高于對(duì)照(P<0.05),分別提高21.06%、26.76%、16.29%、20.36%,其中GA最高,GM 最低;可溶性糖含量均高于對(duì)照,分別提高20.44%、21.73%、15.65%、2.56%,接種GV、GA、GM 差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),其中GA 最高。

    圖3 不同處理太白貝母保護(hù)酶系統(tǒng)比較(—x±s,n=3)

    圖4 不同處理太白貝母可溶性糖和可溶性蛋白含量比較(—x±s,n=3)

    3.5 叢枝菌根真菌對(duì)太白貝母質(zhì)量的影響

    不同處理太白貝母質(zhì)量標(biāo)志物含量測(cè)定結(jié)果見(jiàn)表2。不同處理均可提高太白貝母總生物堿、貝母辛、西貝母堿苷、貝母堿甲、貝母堿乙含量(P<0.05)。接種GV、GA、GM、GC1 后太白貝母總生物堿含量分別比對(duì)照提高35.94%、40.21%、32.03%、30.60%;貝母辛含量分別比對(duì)照提高 40.91%、41.67%、26.52%、21.97%;西貝母堿苷含量分別比對(duì)照提高27.13%、17.83%、13.95%、19.83%;貝母堿甲含量分別比對(duì)照提高16.67%、23.33%、6.67%、3.33%;貝母堿乙含量分別比對(duì)照提高16.67%、25.00%、8.33%、16.67%。

    表2 不同處理太白貝母質(zhì)量標(biāo)志物比較(—x±s,mg/g,n=3)

    4 討論

    AM 真菌生長(zhǎng)發(fā)育呈“S”形曲線(xiàn),開(kāi)始時(shí)為滯緩期,侵染過(guò)程緩慢,隨后快速侵染,達(dá)到高峰后持續(xù)侵染,與植物根系生長(zhǎng)形成動(dòng)態(tài)平衡。不同AM 真菌在太白貝母中的侵染情況有所不同,可能與其對(duì)寄主的選擇性有一定關(guān)系,提示AM 菌劑在實(shí)際應(yīng)用中需要考慮不同AM 真菌與植物之間的選擇性。AM 真菌侵染太白貝母根系是一個(gè)復(fù)雜的生理過(guò)程,隨著現(xiàn)代分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展和菌根研究的深入,將進(jìn)一步闡明其機(jī)制。

    本試驗(yàn)結(jié)果顯示,太白貝母能與AM 真菌形成良好共生關(guān)系,不同AM 真菌對(duì)太白貝母根系有不同程度的侵染,接種AM 真菌明顯提高了菌根侵染率,從而提高太白貝母的生物量。4 種AM 真菌接種后積累干物質(zhì)的量不盡相同,這可能是由不同菌種的特點(diǎn)決定的,也可能是土壤的理化性質(zhì)對(duì)不同菌種產(chǎn)生的影響導(dǎo)致,有待于進(jìn)一步觀察。地下鱗莖干重與地上部分干重比值不同,會(huì)影響植物的生長(zhǎng)狀況,進(jìn)而影響太白貝母的產(chǎn)量。本試驗(yàn)中,接種不同AM 真菌的太白貝母地下鱗莖干重與地上部分干重比值有所不同,接種GV、GM 者低于對(duì)照,而接種GA、GC1 者高于對(duì)照,表明接種不同AM 真菌對(duì)太白貝母地上部分和地下部分的生長(zhǎng)影響不同,可為提高太白貝母產(chǎn)量提供試驗(yàn)依據(jù)。

    凈光合速率是葉片光合特性的重要指標(biāo),也是影響生物產(chǎn)量的重要因素,植物的生長(zhǎng)與其光合性能之間存在著必然的關(guān)系。本研究結(jié)果表明,接種不同AM 真菌均能顯著提高太白貝母葉片凈光合速率、蒸騰速率、氣孔導(dǎo)度。接種AM 真菌后凈光合速率的提高伴隨著氣孔導(dǎo)度、蒸騰速率和胞間CO2濃度的提高,提示AM 真菌處理導(dǎo)致太白貝母光合作用提高可能與氣孔導(dǎo)度的提高有關(guān),說(shuō)明太白貝母光合作用增強(qiáng)是氣孔因素造成的。

    太白貝母葉片保護(hù)酶系統(tǒng)包括SOD、CAT和POD等,其中SOD 是植物細(xì)胞中重要的活性氧清除酶之一,CAT 和POD 能分解H2O2,減輕細(xì)胞損傷。三者相互協(xié)調(diào),使活性氧自由基維持在較低水平,從而防止活性氧引起的膜脂過(guò)氧化及其他損害過(guò)程,保證植物正常生長(zhǎng)。本試驗(yàn)中,接種AM 真菌使太白貝母SOD、POD 和CAT 活性均呈現(xiàn)明顯增加趨勢(shì),說(shuō)明AM 真菌能有效防止植株衰老,提高植株抗逆性。

    可溶性糖含量和可溶性蛋白質(zhì)含量是衡量植物幼苗健壯程度常用的生理指標(biāo)。接種AM 真菌后,太白貝母中可溶性糖和可溶性蛋白質(zhì)含量均顯著高于對(duì)照,表明接種AM 真菌可培育具有較強(qiáng)生理活性的太白貝母植株。

    AM 真菌可能通過(guò)參與寄主植物代謝途徑,影響次生代謝產(chǎn)物的產(chǎn)量[12-14]。太白貝母的質(zhì)量標(biāo)志物包括總生物堿、貝母辛、西貝母堿、貝母堿甲、貝母堿乙等,其主要質(zhì)量標(biāo)志物含量受產(chǎn)地、品種、生長(zhǎng)階段及環(huán)境因素的影響而存在一定差異。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),AM 真菌的侵染可明顯影響太白貝母中總生物堿、貝母辛、西貝母堿苷、貝母堿甲、貝母堿乙的代謝,接種不同AM 真菌的太白貝母上述成分含量均高于對(duì)照,表明共生真菌是影響太白貝母質(zhì)量標(biāo)志物含量的重要因素之一。AM 真菌對(duì)質(zhì)量標(biāo)志物含量及其在藥用植物體內(nèi)累積分布規(guī)律影響的具體機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。

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