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    氯喹對脂多糖誘導(dǎo)的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞損傷的影響

    2020-07-23 07:48:56朱瑩瑩張姣姣周羅成王海嶸
    內(nèi)科理論與實(shí)踐 2020年2期
    關(guān)鍵詞:高濃度比值膿毒癥

    王 寧, 朱瑩瑩, 張姣姣, 周羅成, 康 健, 王海嶸

    (上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院急診醫(yī)學(xué)科,上海 200092)

    血管內(nèi)皮細(xì)胞襯于血管內(nèi)壁, 不僅可以調(diào)節(jié)物質(zhì)交換,還具有分泌、免疫、調(diào)節(jié)周圍器官反應(yīng)等功能,其損傷見于感染、腫瘤等多種疾病中[1]。膿毒癥是機(jī)體對感染的失調(diào)性宿主反應(yīng)引起的危及生命的器官功能障礙, 而內(nèi)皮細(xì)胞功能障礙是膿毒癥導(dǎo)致器官損傷的重要原因之一[2]。關(guān)于膿毒癥發(fā)生時(shí)內(nèi)皮細(xì)胞功能障礙的機(jī)制尚不明確, 研究表明, 細(xì)胞的炎癥損傷和凋亡在其中起到重要作用[2]。 脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)廣泛應(yīng)用于誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞凋亡、 建立膿毒癥內(nèi)皮細(xì)胞損傷模型[3-4],因此本研究應(yīng)用LPS 誘導(dǎo)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(human umbilical vein endothelial cell,HUVEC)損傷。

    氯喹(chloroquine,CQ)是一種抗瘧疾藥,不僅由于抗炎、免疫調(diào)節(jié)等特性用于治療自身免疫性疾病[5],還通過誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡應(yīng)用于癌癥治療中[6-7]。目前有研究發(fā)現(xiàn),CQ 可以通過抑制炎癥因子降低膿毒癥小鼠的死亡率[8],但CQ 對膿毒癥內(nèi)皮細(xì)胞損傷的作用及機(jī)制尚不明確。 本實(shí)驗(yàn)旨在研究CQ對LPS 誘導(dǎo)的HUVEC 損傷的影響,并探討可能的作用機(jī)制。

    材料與方法

    一、材料

    細(xì)胞株HUVEC 購自中國科學(xué)院上海細(xì)胞生物學(xué)研究所。 LPS[大腸桿菌(Escherichia coli)055:B5]購自美國Sigma-Aldrich 公司,CQ 購自美國Cell Signaling Technology 公司, 細(xì)胞計(jì)數(shù)試劑盒(cell counting kit-8,CCK-8)購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;膜聯(lián)蛋白Ⅴ(annexin Ⅴ)、異硫氰酸熒光素(fluorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC)凋亡檢測試劑盒購自日本同仁化學(xué)研究所; 甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphatedehydrogenase,GAPDH)、BCL-2、BAX、辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP) 標(biāo)記山羊抗小鼠、HRP 標(biāo)記山羊抗兔抗體購自武漢愛博泰克生物科技有限公司,微管相關(guān)蛋白1 輕鏈3(microtubule-associated protein 1 light chain 3,LC3)、 裂解的胱天蛋白酶3 (cleaved caspase 3) 抗體購自美國Cell Signaling Technology公司。

    二、方法

    1. 細(xì)胞分組與處理:取對數(shù)生長期的HUVEC,計(jì)數(shù)后用90%DMEM 高糖培養(yǎng)基和10%胎牛血清組成的完全培養(yǎng)基配置成濃度為1×105個(gè)/mL 的細(xì)胞懸液接種于細(xì)胞培養(yǎng)板中。根據(jù)不同處理將細(xì)胞分為對照組,LPS 組,低、中、高濃度CQ 組,對照組即不經(jīng)藥物處理的細(xì)胞,LPS 組即用濃度為10 μg/mL 的LPS 作用細(xì)胞, 低、 中、 高濃度CQ 組即在LPS 作用基礎(chǔ)上分別加入濃度為0.1、1 和10 μmol/L 的CQ 作用細(xì)胞;各組細(xì)胞培養(yǎng)24 h 后進(jìn)行細(xì)胞活力、凋亡檢測。

    2. CCK-8 檢測細(xì)胞活力: 將HUVEC 接種在96 孔板中,每孔100 μL,待細(xì)胞過夜后按實(shí)驗(yàn)分組分別加入LPS、CQ 作用細(xì)胞24 h,然后加入CCK-8 10 μL/孔,在37℃培養(yǎng)箱共同孵育2 h 后,用酶標(biāo)儀在450 nm 波長測定吸光度(A 值), 細(xì)胞活力=[(實(shí)驗(yàn)組A 值-空白組A 值)/(對照組A 值-空白組A 值)]×100%。

    3. 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡:將HUVEC 接種在6 孔板中,按上述處理24 h 后,收集細(xì)胞上清液及用無乙二胺四乙酸(ethylenediaminetetraacetic acid,EDTA)的胰酶消化下來的細(xì)胞至離心管中,1 000 轉(zhuǎn)/min 離心3 min 后棄上清,再用磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)洗2 次,1 000 轉(zhuǎn)/min 離心3 min 后棄上清,然后加入1×膜聯(lián)蛋白Ⅴ結(jié)合液,制成終濃度為1×106個(gè)/mL 的細(xì)胞懸液。取100 μL 細(xì)胞懸液至流式管中,加入5 μL 膜聯(lián)蛋白Ⅴ, FITC 結(jié)合物和5 μL 碘化丙啶 (propidium iodide,PI)溶液,室溫避光培養(yǎng)15 min 后加入400 μL 1×膜聯(lián)蛋白Ⅴ結(jié)合液,上機(jī)檢測。

    4. 蛋白質(zhì)印跡法(Western blotting)檢測蛋白的表達(dá):將HUVEC 接種在6 孔板中,按上述處理24 h后, 用放射免疫沉淀實(shí)驗(yàn)(radioimmunoprecipitation assay,RIPA)蛋白裂解液提取各組細(xì)胞總蛋白,BCA法進(jìn)行蛋白定量,然后用12%聚丙烯酰胺凝膠電泳120 min,300 mA 橫流轉(zhuǎn)膜80 min 及快速封閉液封閉15 min 后,與BCL-2(1∶1 000)、BAX(1∶1 000)、裂解的胱天蛋白酶3 (1∶1 000)、LC3 (1∶1 000)、GAPDH(1∶1 000)抗體4℃孵育過夜。 次日用TBST洗滌5 min×4 次, 加入HRP 標(biāo)記的山羊抗小鼠及山羊抗兔二抗(1∶1 000)室溫孵育1 h,再用TBST洗滌5 min×4 次后進(jìn)行曝光顯影。

    三、統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    采用SPSS 19.0 及Graphpad Prism 6.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析及繪制。 計(jì)量資料以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析, 組間兩兩比較采用LSD法。 P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    結(jié) 果

    一、CQ 對HUVEC 細(xì)胞活力的影響

    通過CCK-8 法分析細(xì)胞活性發(fā)現(xiàn), 與對照組比較,10 μg/mL LPS 能明顯降低細(xì)胞活力 (P<0.05);加入CQ 作用后,與LPS 組比較,低、中濃度CQ 組能一定程度上減輕LPS 誘導(dǎo)的細(xì)胞活力降低(P<0.05), 高濃度CQ 作用后細(xì)胞活力與LPS 組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),但低于低、中濃度CQ 作用組(P<0.05)(見表1)。

    二、CQ 對HUVEC 細(xì)胞凋亡的影響

    通過流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡發(fā)現(xiàn),與對照組相比, LPS 組細(xì)胞凋亡率高于對照組, 差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與LPS 組相比,用低、中濃度CQ處理細(xì)胞后,細(xì)胞凋亡率降低(P<0.05),高濃度CQ作用后細(xì)胞凋亡率無明顯變化(P>0.05),但高濃度CQ 導(dǎo)致的細(xì)胞凋亡率較低、 中濃度CQ 組有所升高(P<0.05)(見表1)。

    表1 不同濃度CQ 對HUVEC 細(xì)胞活力、細(xì)胞凋亡的影響(均n=5,±s/%)

    表1 不同濃度CQ 對HUVEC 細(xì)胞活力、細(xì)胞凋亡的影響(均n=5,±s/%)

    1):與對照組比較,P<0.05;2):與LPS 組比較,P<0.05;3):與低濃度CQ組比較,P<0.05;4):與中濃度CQ 組比較,P<0.05

    組別 細(xì)胞活力 細(xì)胞凋亡對照組 97.5±3.85 8.17±2.07 LPS 組 71.23±3.491) 25.47±2.281)低濃度CQ 組 82.57±4.102) 18.73±2.052)中濃度CQ 組 85.13±2.462) 14.77±1.932)高濃度CQ 組 65.87±3.983)4) 29.05±2.343)4)

    三、CQ 對HUVEC 凋亡相關(guān)蛋白的影響

    通過蛋白質(zhì)印跡法檢測凋亡相關(guān)蛋白發(fā)現(xiàn),與對照組相比,LPS 刺激后BAX、 裂解的胱天蛋白酶3 蛋白的表達(dá)升高,BCL-2 蛋白的表達(dá)有所降低,BCL-2/BAX 蛋白比值明顯降低(P<0.05);給予CQ處理后,低、中濃度CQ 逆轉(zhuǎn)了LPS 對上述蛋白的作用,導(dǎo)致BCL-2/BAX 蛋白比值升高(P<0.05),裂解的胱天蛋白酶3 蛋白表達(dá)降低(P<0.05),但高濃度CQ 作用后,BCL-2/BAX 蛋白比值較LPS 組升高(P>0.05),裂解的胱天蛋白酶3 蛋白表達(dá)較LPS 組升高(P<0.05)(見圖1、表2)。

    圖1 不同濃度CQ 對BCL-2、BAX、裂解的胱天蛋白酶3表達(dá)的影響

    表2 不同濃度CQ 對凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá)水平及LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值的影響(均n=5,±s)

    表2 不同濃度CQ 對凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá)水平及LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值的影響(均n=5,±s)

    1):與對照組比較,P<0.05;2):與LPS 組比較,P<0.05;3):與低濃度CQ組比較,P<0.05;4):與中濃度CQ 組比較,P<0.05

    組別 BCL-2/BAX 裂解胱天蛋白酶3 LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ對照組 1.73±0.08 0.94±0.11 0.79±0.11 LPS 組 0.61±0.061) 1.45±0.041) 0.89±0.16低濃度CQ 組 1.52±0.072) 1.13±0.082) 0.81±0.07中濃度CQ 組 1.42±0.062) 1.03±0.072) 1.00±0.17高濃度CQ 組 0.79±0.04 1.59±0.052)3)4) 2.13±0.142)3)4)

    四、CQ 對HUVEC 自噬相關(guān)蛋白LC3 的影響

    通過蛋白質(zhì)印跡法檢測LC3 蛋白發(fā)現(xiàn),與對照組相比,LPS 刺激后LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值無明顯變化(P>0.05);與LPS 組相比,低、中濃度CQ 對LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值也無明顯作用,而高濃度CQ 作用后LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值明顯升高(見圖2、表2)。

    圖2 不同濃度CQ 對自噬相關(guān)蛋白LC3 表達(dá)的影響

    討 論

    膿毒癥是急危重癥醫(yī)學(xué)常見病,其發(fā)病率高、致死率高,是全球主要的衛(wèi)生健康問題[9]。 研究發(fā)現(xiàn), 內(nèi)皮細(xì)胞損傷是導(dǎo)致膿毒癥發(fā)生器官功能障礙的中心環(huán)節(jié), 而細(xì)胞凋亡是其中的重要機(jī)制之一[2]。 本研究以LPS 誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞凋亡, 結(jié)果表明LPS 可以抑制內(nèi)皮細(xì)胞活力, 增加內(nèi)皮細(xì)胞的凋亡,與之前的一些研究結(jié)果[10-11]一致,因此調(diào)控內(nèi)皮細(xì)胞凋亡可能對改善膿毒癥導(dǎo)致的重要器官損傷具有一定的重要意義。

    CQ 是一種經(jīng)典的抗瘧疾藥,由于其抗炎、免疫調(diào)節(jié)、抗腫瘤等特性不斷被挖掘,逐漸應(yīng)用于類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎、系統(tǒng)性紅斑狼瘡和腫瘤等疾病治療中[12]。近年來一些研究表明,CQ 通過抑制炎癥因子的釋放在膿毒癥相關(guān)的體內(nèi)和體外試驗(yàn)中有一定的療效,但CQ 對膿毒癥所致內(nèi)皮細(xì)胞損傷的作用并不明確[13]。

    本研究應(yīng)用CQ 干預(yù)LPS 誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷模型,觀察不同濃度CQ 對細(xì)胞活力和細(xì)胞凋亡的影響。結(jié)果表明,CQ 在低、中濃度時(shí)提高細(xì)胞活性,同時(shí)降低LPS 誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡;在高濃度時(shí)則降低細(xì)胞活性即抑制細(xì)胞增殖、促進(jìn)細(xì)胞凋亡。 在百草枯誘導(dǎo)肺損傷的體外模型中, 研究結(jié)果與本研究類似,在較低濃度時(shí)CQ 的應(yīng)用能夠抑制Ⅱ型肺泡上皮細(xì)胞凋亡,隨著CQ 濃度增高,細(xì)胞凋亡增多[14]。此外,在癌癥治療中,高濃度CQ 常用來誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡。 因此CQ 對細(xì)胞凋亡的作用與其應(yīng)用劑量有關(guān)。

    細(xì)胞凋亡主要有外源性死亡受體途徑、內(nèi)源性線粒體途徑和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)途徑[15]。 研究表明,CQ 能夠改變?nèi)苊阁w的通透性參與線粒體凋亡途徑[16],因此本研究進(jìn)一步研究了CQ 對線粒體途徑凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn),低、中濃度CQ 能夠提高BCL/BAX 比值,降低裂解的胱天蛋白酶3 的表達(dá),表明CQ 在低、 中濃度時(shí)通過線粒體途徑來拮抗LPS 誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡;而CQ 在高濃度時(shí)BCL/BAX比值升高不明顯, 裂解的胱天蛋白酶3 的表達(dá)升高,表明高濃度時(shí)CQ 主要通過非線粒體途徑激活胱天蛋白酶3 途徑誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞凋亡。

    LC3 是常用的自噬標(biāo)志物, 存在LC3-Ⅰ和LC3-Ⅱ2 種蛋白狀態(tài)[17]。 研究顯示CQ 可以影響LC3 蛋白的表達(dá)而影響自噬[18]。 本研究進(jìn)一步研究了CQ 在膿毒癥狀態(tài)下對于自噬的影響, 發(fā)現(xiàn)低、中濃度CQ 作用時(shí),LC3-Ⅰ、LC3-Ⅱ蛋白無明顯變化, 高濃度CQ 作用時(shí)LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ比值升高,LC3-Ⅱ蛋白有明顯的累積,表明CQ 在較低濃度時(shí)不影響自噬,而高濃度時(shí)CQ 提高LC3-Ⅱ蛋白的表達(dá),發(fā)揮促進(jìn)基礎(chǔ)水平自噬的功能。 綜合本研究結(jié)果提示,引起自噬激活的CQ 濃度高于對細(xì)胞產(chǎn)生保護(hù)作用的CQ 濃度,因此,CQ 在低、中濃度時(shí)改善LPS 誘導(dǎo)的內(nèi)皮細(xì)胞損傷主要通過抑制凋亡途徑實(shí)現(xiàn),與自噬無關(guān);本研究結(jié)果與文獻(xiàn)報(bào)道[19]類似,膿毒癥內(nèi)皮細(xì)胞損傷時(shí)主要表現(xiàn)為細(xì)胞凋亡增加, 而非自噬增加。 CQ 在高濃度時(shí)加重LPS 誘導(dǎo)的內(nèi)皮細(xì)胞損傷可能和促進(jìn)細(xì)胞自噬、激活凋亡途徑有關(guān)。

    綜上所述, 不同濃度的CQ 對LPS 誘導(dǎo)的內(nèi)皮細(xì)胞損傷有不同的作用:低濃度時(shí)CQ 能抑制凋亡途徑減少內(nèi)皮細(xì)胞凋亡;高濃度時(shí)促進(jìn)自噬,激活凋亡途徑促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞凋亡。 當(dāng)然CQ 在不同濃度時(shí)產(chǎn)生不同作用的機(jī)制仍不是很明確,有待進(jìn)一步研究。

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