郭佳,王娉,周繼福,3,趙曉美,劉繼鋒,陳穎*
1(中國(guó)檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院,北京,100176) 2(天津科技大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,天津,300457) 3(南京財(cái)經(jīng)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,江蘇 南京,210046)
菌落總數(shù)是指食品樣品經(jīng)過處理,在一定條件下培養(yǎng)后所得每克(或每毫升)樣品中形成的微生物菌落數(shù)[1],是評(píng)價(jià)食品衛(wèi)生情況的重要性指標(biāo)。目前檢測(cè)食品中菌落總數(shù)的方法有顯色培養(yǎng)基法、測(cè)試紙片法、電阻抗技術(shù)法、ATP生物發(fā)光技術(shù)法、流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)法和自動(dòng)化儀器分析方法等。其中,顯色培養(yǎng)基法實(shí)驗(yàn)步驟較傳統(tǒng)方法簡(jiǎn)單[2-3],結(jié)果更易判讀[4];測(cè)試紙片法方便快捷[4-5],但成本較傳統(tǒng)培養(yǎng)法高[6];電阻抗法目前已被美國(guó)分析化學(xué)家協(xié)會(huì) (Association of Official Analytical Chemists,AOAC)認(rèn)證[6],但電阻抗儀對(duì)溫度的穩(wěn)定性要求較高[7-8],使用時(shí)需注意環(huán)境溫度;ATP生物發(fā)光技術(shù)法操作快速簡(jiǎn)單、測(cè)定范圍廣[9],但菌落濃度一般需≥104CFU/g[10];流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)法大多應(yīng)用在液體樣品中,固體樣品的應(yīng)用還較少[11];自動(dòng)化儀器檢測(cè)法雖然儀器本身成本偏高,但操作簡(jiǎn)單,可以大大降低人工成本,適合大批量檢測(cè)。
Microbio全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法是運(yùn)用透鏡像差多重聚焦技術(shù)對(duì)菌落進(jìn)行3D分析,能夠連續(xù)動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè)并有效區(qū)分雜質(zhì),快速完成菌落計(jì)數(shù)。為探究Microbio 全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法與平板菌落計(jì)數(shù)法在檢測(cè)結(jié)果上是否有顯著性差異,本文分別用上述2種方法檢測(cè)模擬染菌的食品樣品,從數(shù)據(jù)準(zhǔn)確度、定量限和檢出時(shí)間等方面進(jìn)行分析比較。
微生物數(shù)碼顯微培養(yǎng)計(jì)數(shù)系統(tǒng)(MicroBio),BD;麥?zhǔn)蠞岫葍x(M007230),Biomerieux;培養(yǎng)箱(BD115),Binder;培養(yǎng)箱(IC160),Salvis。
大腸埃希菌(Escherichiacoli)ATCC11775,金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)22018,銅綠假單胞菌(Pseudomonasaeruginosa)ATCC27853,洋蔥伯克霍爾德菌(Burkholderiacepacia)CICC10857,蠟樣芽孢桿菌(Bacilluscereus)1410302,地衣芽孢桿菌(Bacilluslicheniformis)22730,白色念珠菌(Moniliaalbican)ATCC90029,黑曲霉菌(Aspergillusniger)ATCC16404,領(lǐng)地伯克霍爾德氏菌(Burkholderiaterritorii)IQCC33107,污染伯克霍爾德氏菌(Burkholderiacontaminans)CICC23882均為本實(shí)驗(yàn)室保存。食品樣品(生雞肉),購(gòu)自北京超市,經(jīng)高溫滅菌后備用。
平板計(jì)數(shù)瓊脂(plate count agar, PCA)、馬鈴薯葡萄糖瓊脂,北京陸橋技術(shù)股份有限公司和BD公司;腦心浸液肉湯(brain heart infusion broth,BHI)、腦心浸液瓊脂(brain heart infusion agar, BHIA),Oxoid公司;NaCl,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;馬鈴薯葡萄糖瓊脂、比濁管,BD公司;2 mL離心管,AXYGEN公司;50 mL離心管,美國(guó)康寧公司。
1.4.1 檢測(cè)數(shù)據(jù)準(zhǔn)確性及定量限比較
分別制備大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、洋蔥伯克霍爾德菌、銅綠假單胞菌、地衣芽孢桿菌、蠟樣芽孢桿菌、白色念球菌、黑曲霉的菌液。
用生理鹽水將菌液調(diào)節(jié)到適當(dāng)?shù)臐岫群蠹尤氲绞称窐悠分?,制成菌落終濃度為100、50、25、10、5 CFU/mL的食品樣品模擬污染懸液,采用GB 4789.2—2016[1]、GB 4789.15—2016[12]中的方法進(jìn)行檢測(cè)。隨后分別放入普通培養(yǎng)箱(PT組)和微生物數(shù)碼顯微培養(yǎng)計(jì)數(shù)系統(tǒng)(TD組)進(jìn)行培養(yǎng)。每組5個(gè)重復(fù)??瞻讓?duì)照為未添加目標(biāo)菌的食品樣品。采用t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),P<0.05認(rèn)為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
制備5份不同濃度:1、5、10、15、20、25 CFU/mL的食品樣品模擬污染懸液,培養(yǎng)和檢測(cè)方法同上。采用t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),P<0.05認(rèn)為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1.4.2 檢出時(shí)間比較
分別制備領(lǐng)地伯克霍爾德氏菌、污染伯克霍爾德氏菌食品樣品模擬污染懸液,污染濃度≤100 CFU/mL。培養(yǎng)方式及空白對(duì)照同1.4.1。采用t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),P<0.05認(rèn)為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1.4.3 不同操作人員比較
為探究人員操作對(duì)于計(jì)數(shù)結(jié)果的影響,以不同人員為單一變量,在其他條件不變的情況下,分別制備5、10、25、50、100 CFU/mL的食品樣品模擬污染懸液(大腸埃希菌),實(shí)驗(yàn)由2人進(jìn)行操作,各做5組,平行5次實(shí)驗(yàn),具體操作及空白對(duì)照同1.4.1。
1.4.4 不同品牌培養(yǎng)基比較
用BD公司和北京陸橋公司的培養(yǎng)基進(jìn)行金黃色葡萄球菌的培養(yǎng)操作,各做5組實(shí)驗(yàn),前期處理和后續(xù)檢測(cè)培養(yǎng)操作及空白對(duì)照同1.4.1。對(duì)計(jì)數(shù)結(jié)果進(jìn)行單因素方差分析(α=0.05)。
采用Excel及Minitab 17進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行雙樣本t檢驗(yàn)及單因素方差分析。
根據(jù)1.4.1步驟對(duì)8個(gè)菌種(大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、洋蔥伯克霍爾德菌、銅綠假單胞菌、地衣芽孢桿菌、蠟樣芽孢桿菌、白色念球菌、黑曲霉)進(jìn)行數(shù)據(jù)準(zhǔn)確性比較實(shí)驗(yàn),空白對(duì)照無目標(biāo)菌檢出,回收率70%~105%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation, RSD) 0.04~0.35,說明數(shù)據(jù)準(zhǔn)確度較好[13-14](表1)。5 CFU/mL時(shí),RSD均≤0.35;10、25 CFU/mL時(shí),RSD≤0.25;50、100 CFU/mL時(shí),2個(gè)方法的RSD≤0.15。其中PT組RSD高于TD組RSD的比例為50%,這說明在數(shù)據(jù)穩(wěn)定性上,TD組較PT組有微小的優(yōu)勢(shì)。在相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差方面,5、10 CFU/mL的RSD大多在0.20~0.35之間,這在一定程度上說明低濃度(5、10 CFU/mL)的平板計(jì)數(shù)誤差較大。運(yùn)用Minitab軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析(α=0.05),得到的P>0.05,說明2者在統(tǒng)計(jì)學(xué)上差異不顯著,Microbio全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法可以替代平板計(jì)數(shù)法。
表1 兩種培養(yǎng)方法下8株菌菌落計(jì)數(shù)的數(shù)據(jù) 準(zhǔn)確性結(jié)果比較
續(xù)表1
為確定TD組的檢測(cè)結(jié)果是否可靠,對(duì)PT組和TD組的數(shù)據(jù)進(jìn)行相關(guān)性分析。以PT組數(shù)值為橫坐標(biāo),TD組數(shù)值為縱坐標(biāo),對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行線性回歸,得到的相關(guān)系數(shù)在0.969 6~0.997 4之間,且都大于0.95,具有良好的相關(guān)性,表明Microbio 全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法的測(cè)定結(jié)果可靠。
為確定Microbio全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法和平板計(jì)數(shù)的定量限是否存在差異,選擇6個(gè)較低檢測(cè)濃度進(jìn)行檢測(cè)??瞻讓?duì)照無目標(biāo)菌檢出。當(dāng)菌體濃度在1 CFU/mL時(shí),2種方法的回收率都較低。5~25 CFU/mL時(shí),回收較高,在72%~101%之間。對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析(α=0.05),P值在0.107~1.000之間(≥0.05),表明2種方法差異不顯著。定量限均可以達(dá)到 5 CFU/mL。
表2 兩種培養(yǎng)方法下8株菌菌落計(jì)數(shù)的定量限結(jié)果比較
續(xù)表2
續(xù)表2
污染伯克霍爾德氏菌[15]和領(lǐng)地伯克霍爾德氏菌生長(zhǎng)緩慢[16],檢測(cè)一般需要1~2 d。因此選用上述2株菌評(píng)價(jià)2種方法的最快檢出時(shí)間。TD組的檢出時(shí)間可以精確計(jì)時(shí)到0.5 h??瞻讓?duì)照無目標(biāo)菌檢出。污染伯克霍爾德菌16.0 h左右即可被 Microbio全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)系統(tǒng)檢出,20.0 h左右計(jì)數(shù)穩(wěn)定(圖1-a);領(lǐng)地伯克霍爾德菌15.5 h左右可被檢出,19.0 h左右計(jì)數(shù)穩(wěn)定(結(jié)果未顯示);而平板計(jì)數(shù)法24 h左右才能檢測(cè)到領(lǐng)地伯克霍爾德氏菌(結(jié)果未顯示)和污染伯克霍爾德氏菌穩(wěn)定計(jì)數(shù)結(jié)果(圖1-b)。因此,從檢測(cè)時(shí)間看,Microbio 全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法短于傳統(tǒng)的平板計(jì)數(shù)法。
A-TD組;B-PT組
選用大腸埃希菌作為實(shí)驗(yàn)菌種,以操作人員(A、B)為單一變量,設(shè)計(jì)10組實(shí)驗(yàn)研究人員操作對(duì)于計(jì)數(shù)結(jié)果的影響??瞻讓?duì)照無目標(biāo)菌檢出,實(shí)驗(yàn)組10組數(shù)據(jù)的P值均>0.05(0.160~0.921之間)(表4),說明不同人員操作對(duì)計(jì)數(shù)結(jié)果影響不顯著。
表4 不同人員對(duì)于計(jì)數(shù)影響的單因素方差分析(大腸埃希菌)
圖2是使用不同廠家培養(yǎng)基所得的計(jì)數(shù)結(jié)果圖,a為TD組結(jié)果,b為PT組結(jié)果。1號(hào)為X廠家培養(yǎng)基,2號(hào)為Y廠家培養(yǎng)基,右下角為菌落計(jì)數(shù)結(jié)果,分別為73、98、95、115 CFU(空白對(duì)照無目標(biāo)菌檢出)。PT組和TD組分別有5個(gè)水平,每個(gè)水平的平行數(shù)為5,計(jì)數(shù)結(jié)果方差分析(α=0.05)顯示,2種培養(yǎng)基在統(tǒng)計(jì)學(xué)上沒有顯著性差異。說明不同培養(yǎng)基對(duì)計(jì)數(shù)結(jié)果影響不大。
a-Microbio方法;b-平板計(jì)數(shù)法;1-X廠家培養(yǎng)基;2-Y廠家培養(yǎng)基
本研究共選用10種代表菌株,分別從計(jì)數(shù)數(shù)據(jù)準(zhǔn)確性、定量限檢測(cè)、檢出時(shí)間、人員操作、不同培養(yǎng)基方面對(duì)Microbio全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法和平板計(jì)數(shù)法進(jìn)行比較。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法在計(jì)數(shù)數(shù)據(jù)準(zhǔn)確性、定量限檢測(cè)、人員操作、不同培養(yǎng)基方面和平板計(jì)數(shù)法無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(α=0.05),最低檢出限可達(dá)5 CFU/mL;檢出時(shí)間方面,全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)方法相較于平板計(jì)數(shù)法有一定的優(yōu)勢(shì),節(jié)約4 h左右。
在菌種選擇方面充分考慮了代表性,金黃色葡萄球菌和大腸埃希菌分別作為革蘭氏陽性菌[17]和革蘭氏陰性菌代表[17],蠟樣芽孢桿菌和地衣芽孢桿菌是污染食品中常被檢測(cè)到的芽孢桿菌[18],選取銅綠假單胞菌和洋蔥伯克霍爾德菌來檢測(cè)色素是否會(huì)影響機(jī)器的計(jì)數(shù),選取黑曲霉和白色念球菌來評(píng)價(jià)機(jī)器真菌計(jì)數(shù)[19]的效果。
食品加工過程復(fù)雜多樣,冷凍、鹽漬、高溫等加工方法可使部分菌株因細(xì)胞結(jié)構(gòu)受損而死亡,但也存在一部分菌株能夠抵御這些不良環(huán)境因素,而處于受損傷或亞致死狀態(tài),在這種情況下進(jìn)行檢測(cè)時(shí),應(yīng)合理地考慮培養(yǎng)基的使用效果。本研究發(fā)現(xiàn),進(jìn)口培養(yǎng)基和國(guó)產(chǎn)培養(yǎng)基在數(shù)量上沒有顯著性差異。從菌落的形態(tài)來看,X廠家培養(yǎng)基上生長(zhǎng)的菌落較Y廠家培養(yǎng)基的稍大。因此在檢測(cè)敏感性較高的菌種時(shí),應(yīng)根據(jù)菌種的長(zhǎng)勢(shì)選擇合適的培養(yǎng)基[20]。
在檢出時(shí)間方面,自動(dòng)化的儀器設(shè)備要優(yōu)于傳統(tǒng)的檢測(cè)方法。傳統(tǒng)的檢測(cè)方法,需要每間隔一定的時(shí)間就對(duì)菌落進(jìn)行計(jì)數(shù),并且受菌落大小及透明度的限制,十分耗費(fèi)人力。而Microbio全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法可以實(shí)現(xiàn)實(shí)時(shí)檢測(cè),實(shí)時(shí)計(jì)數(shù),操作更智能,還能將數(shù)據(jù)實(shí)時(shí)傳輸至工作者的郵箱,因此全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法在檢出時(shí)間方面有一定的優(yōu)勢(shì)。
自動(dòng)化檢測(cè)是微生物快速檢測(cè)的一個(gè)趨勢(shì),隨著勞動(dòng)力成本的上升和儀器成本的降低,越來越多的自動(dòng)化檢測(cè)技術(shù)應(yīng)用于菌落計(jì)數(shù)中,如TSUTA等[21]和RAYMOND等[11]分別用流式細(xì)胞術(shù)法來提高好氧平板計(jì)數(shù)法的預(yù)測(cè)精度及檢測(cè)巧克力中乳酸菌的總數(shù),LUCAS等[22]結(jié)合3D打印技術(shù)檢測(cè)液滴中大腸桿菌的數(shù)量,JIANG等[23]采用電化學(xué)傳感器的方法檢測(cè)水中的菌落總數(shù)。利用全自動(dòng)菌落計(jì)數(shù)法不僅可以節(jié)省勞動(dòng)力,還可以降低實(shí)驗(yàn)員主觀上對(duì)于菌落計(jì)數(shù)結(jié)果的影響,使結(jié)果更客觀。目前關(guān)于Microbio 微生物數(shù)碼顯微培養(yǎng)計(jì)數(shù)系統(tǒng)的相關(guān)文獻(xiàn)研究較少,但國(guó)內(nèi)已有一些原理相似的儀器出現(xiàn),如QXC-30(上海海恒機(jī)電)及訊數(shù)公司的一系列儀器,說明該方法在菌落計(jì)數(shù)方面有較大的潛能。