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    豬唾液檢測應(yīng)用研究進展

    2020-06-22 20:10楊曉培趙靜于菲菲
    鄉(xiāng)村科技 2020年12期
    關(guān)鍵詞:疾病診斷

    楊曉培 趙靜 于菲菲

    [摘 要] 唾液是一種重要的外分泌液體,是由多種來源的蛋白質(zhì)和其他分子組成的復(fù)雜混合物,可從中挖掘大量生物信息。唾液檢測以其無創(chuàng)、便捷的優(yōu)勢,成為比較熱門的人類醫(yī)學(xué)檢查方法,但在豬只飼養(yǎng)、運輸、屠宰過程中的應(yīng)用還不普遍。本文總結(jié)唾液檢測在豬只病毒性、細(xì)菌性疾病診斷以及養(yǎng)殖過程中動物福利的研究進展,為進一步研究提供思路。

    [關(guān)鍵詞] 豬唾液檢測;疾病診斷;動物福利

    [中圖分類號] S858.28 [文獻標(biāo)識碼] A [文章編號] 1674-7909(2020)12-111-2

    1 唾液概述

    唾液是由超過99%的水組成的稀溶液構(gòu)成,內(nèi)含多種電解質(zhì)、蛋白質(zhì)、酶、黏液和含氮化合物[1]。Bandhakavi等發(fā)現(xiàn),人唾液中約20%蛋白質(zhì)存在于血漿中,且唾液在一定程度上能反映血清或口腔中的激素、藥物、抗體、病毒及其他成分的濃度,表明唾液作為一種生物液體的重要性和潛力[2]。

    2 唾液檢測優(yōu)勢

    目前,使用唾液作為診斷介質(zhì)已可以用來監(jiān)測部分人類疾病,監(jiān)測豬的全身健康和評估系統(tǒng)性疾病的體系還未形成,多數(shù)仍停留在實驗室研究階段。

    豬的唾液檢測方法是利用其好奇心理和嗜好咀嚼的特性,采用紗布球采集唾液,在動物常用檢測方式中優(yōu)勢明顯。由于豬只皮下脂肪組織豐富,樣本采集有技術(shù)要求,唾液樣本可以由非技術(shù)人員操作獲取,減少人力成本;無創(chuàng)采集的方式減少豬只應(yīng)激反應(yīng),真實反映豬只平息狀態(tài)下的生理情況,也使得重復(fù)試驗操作便捷、高效;能減少有創(chuàng)采樣過程中可能造成的感染,監(jiān)測方式更加安全。

    3 唾液檢測在豬疾病診斷中的研究進展

    豬唾液中富含的生物信息使得唾液檢測可用于免疫后抗體檢測、疾病早期診斷、治療效果判斷等。同血清檢測方式相比,除了有采集便捷的優(yōu)勢外,唾液中分泌性抗體產(chǎn)生速度快、穩(wěn)定性高,而且有對抗原的主動捕捉能力[3],應(yīng)用前景好。

    3.1 細(xì)菌性疾病

    唾液中可以檢測到葡萄球菌、幽門螺旋桿菌、枯草芽孢桿菌、胸膜肺炎放線桿菌、乳球菌和乳酸菌等細(xì)菌、豬鏈球菌和副鏈球菌等[4-6],以唾液樣本檢測為手段,通過PCR、ELISA手段或者檢測特異性抗體來評估細(xì)菌感染和定植情況。例如,Sakura等通過采集4個養(yǎng)殖場不同生長階段的84頭健康豬的唾液、糞便和陰道拭子樣本,了解養(yǎng)豬場豬鏈球菌和副鏈球菌的定殖情況,確定感染源[5]。Bosi則通過檢測血樣和唾液樣本中大腸桿菌鞭毛特異性的IgA,發(fā)現(xiàn)喂食噴霧干燥血漿可以改善豬只生長性能,并減弱大腸桿菌誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)[6]。

    3.2 病毒性疾病

    唾液中可直接檢測到的病毒包括非洲豬瘟病毒(ASFV)、豬瘟病毒(CSFV)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PPRSV)、豬口蹄疫病毒(FMDV)、偽狂犬病毒(PRV)、豬副流感病毒、豬圓環(huán)病毒和星狀病毒等,也可通過檢測抗體判斷豬是否被病毒感染[3,4,7,8]。

    在非洲豬瘟的檢測和防控中,唾液檢測成為最普遍的檢測方式。除采樣優(yōu)勢外,唾液中的病毒出現(xiàn)較血液早2~5 d,更利于ASFV的早期診斷[7]。在血清和唾液中的抗體水平比較試驗中,侯亞琴等選取種公豬、母豬、育肥豬成年豬,通過正向間接血凝試驗檢測CSFV、FMDV抗體,結(jié)果表明豬血清和唾液中抗體水平有高度相關(guān)性[3]。而位玉玲則建立了唾液中豬PRV的qRT-PCR方法和唾液中豬PRV抗體間接ELISA的方法,得知血清和唾液中抗體消長規(guī)律基本一致,但由于疾病發(fā)展第一階段是在口腔、鼻黏膜增殖,因此在第一階段唾液與血清中的PRV量稍有偏差[8]。

    4 唾液檢測在動物福利評估中的應(yīng)用

    近年來,我國開始逐漸重視動物福利問題,不僅是因為肉類制品品質(zhì)問題遭到出口國家抵制,更是因為動物福利影響動物生產(chǎn)性能、內(nèi)分泌、免疫功能、肉類品質(zhì)。

    Damian等在豬唾液蛋白組學(xué)研究中檢測到353個蛋白,通過給予刺激后發(fā)現(xiàn),有44個蛋白發(fā)生顯著性改變,無論是受到長期的跛行困擾還是在捕捉時受到短期刺激,均影響唾液中蛋白質(zhì)的表達[9]。近年來,相關(guān)學(xué)者在不斷探索新的蛋白標(biāo)志物評估豬的應(yīng)激狀況。例如,Escribano等通過檢測唾液睪酮濃度發(fā)現(xiàn)豬只批內(nèi)、批間變異系數(shù)低,而且不同采樣時間、不同年齡無顯著差異;通過鼻套圈和短途運輸應(yīng)激分析生長豬唾液睪酮量,結(jié)果表明唾液睪酮量顯著上升,唾液睪酮水平可以作為豬急性應(yīng)激的一個可能的標(biāo)記物[10]。Muneta等首次證明了IgA在豬唾液中的表達與應(yīng)激相關(guān),通過免疫組化染色證實IgA在豬唾液腺漿細(xì)胞中表達,通過ELISA檢測到豬唾液中的IgA,并且抑制應(yīng)激將使唾液中的IgA水平升高[11]。此外,Camila等發(fā)現(xiàn)血液樣本檢測動物應(yīng)激狀態(tài)的方法也可通過唾液檢測實現(xiàn),母豬泌乳期唾液檢測總抗氧化能力、當(dāng)量抗氧化能力、銅還原抗氧化能力、鐵還原能力、血漿、尿酸以及氧化蛋白產(chǎn)物和過氧化氫的含量有效可靠[12]。

    5 討論

    唾液中存在2種分泌型抗體,其中IgG滴度總體較血液中偏低,但總體趨勢一致,IgA還可用于檢測非全身性感染性疾病,檢測范圍廣;該方法采樣容易,符合大批量檢測要求。但唾液采集易受到環(huán)境因素如養(yǎng)殖環(huán)境中存在的細(xì)菌等影響,同時檢測靈敏度較血液檢測偏低,需不斷優(yōu)化檢測標(biāo)記物、指標(biāo)值,繼續(xù)挖掘靈敏度高的標(biāo)記物,才能充分發(fā)揮唾液樣品的潛在診斷價值。

    參考文獻

    [1]Humphrey S P,Williamson R T. A review of saliva:Normal composition,flow,and function[J].Journal of Prosthetic Dentistry,2001(2):162-169.

    [2]Bandhakavi S,Stone M D,Onsongo G,et al. A dynamic range compression and three-dimensional peptide fractionation analysis platform expands proteome coverage and the diagnostic potential of whole saliva[J].Journal of Proteome Research,2009(12):5590-5600.

    [3]侯亞琴,張建明,李慧,等.豬唾液與血清中免疫抗體相關(guān)性研究[J].畜禽業(yè),2014(3):18-19.

    [4]Gutierrez A,Ceron J,F(xiàn)uentes-Rubio M,et al. A Proteomic Approach To Porcine Saliva[J].Current Protein & Peptide Science,2014(1):56-63.

    [5]Sakura,Arai,Hyunjung,et al. Assessment of pig saliva as a Streptococcus suis reservoir and potential source of infection on farms by use of a novel quantitative polymerase chain reaction assay[J].American Journal of Veterinary Research,2018(9):941-948.

    [6]Bosi P,Casini L,F(xiàn)inamore A,et al. Spray-dried plasma improves growth performance and reduces inflammatory status of weaned pigs challenged with enterotoxigenic Escherichia coli K88[J].Journal of Animal Science,2004(6):1764-1772.

    [7]付文貴.非洲豬瘟檢測技術(shù)要點[J].今日畜牧獸醫(yī),2019(12):11.

    [8]位玉玲.唾液中豬偽狂犬病毒熒光定量PCR和ELISA檢測方法的建立與初步應(yīng)用[D].杭州:浙江農(nóng)林大學(xué),2017.

    [9]Kaufman E,Lamster I B. The diagnostic applications of saliva - A review[J].Critical Reviews in Oral Biology & Medicine,2002(2):197-212.

    [10]Escribano D,F(xiàn)uentes-Rubio M,Cerón J J. Salivary testosterone measurements in growing pigs:validation of an automated chemiluminescent immunoassay and its possible use as an acute stress marker[J].Research in Veterinary Science,2014(1):20-25.

    [11]Muneta Y,Yoshikawa T,Minagawa Y,et al. Salivary IgA as a Useful Non-Invasive Marker for Restraint Stress in Pigs[J].Journal of Veterinary Medical Science,2010(10):1295-1300.

    [12]Camila Peres Rubio,Eva Mainau,José Joaquín Cerón,et al. Biomarkers of oxidative stress in saliva in pigs:analytical validation and changes in lactation[J].BMC Veterinary Research,2019(1):144.

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