盧 晶 李 奇 朱曉蓉 謝榮榮 楊金奎
(首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京同仁醫(yī)院內(nèi)分泌科 糖尿病防治研究北京市重點(diǎn)實驗室 北京市糖尿病研究所,北京 100730)
現(xiàn)代社會,隨著經(jīng)濟(jì)水平的提高和生活習(xí)慣的改變,飲食結(jié)構(gòu)與以往存在很大差異,全球糖尿病發(fā)病率呈逐年上升的趨勢。目前,我國糖尿病發(fā)病率居世界首位[1]。
胰腺由外分泌腺和內(nèi)分泌腺兩部分組成。胰腺內(nèi)分泌腺又稱胰島。胰島主要包括α、β、δ和PP細(xì)胞4種細(xì)胞。胰島細(xì)胞可以分泌特異性的胰腺激素從而調(diào)節(jié)機(jī)體的血糖濃度。胰島細(xì)胞數(shù)量減少,胰島正常結(jié)構(gòu)破壞,會導(dǎo)致機(jī)體糖耐量異常乃至糖尿病。傳統(tǒng)途徑中,ATP敏感性鉀通道[ATP-sensitive K+(KATP) channel]主要調(diào)節(jié)胰島β細(xì)胞在葡萄糖刺激下的胰島素分泌(glucose-stimulated insulin secretion,GSIS)。而電壓門控依賴性ERG鉀通道[voltage-gated eag-related gene (Erg) K+channels]家族也在胰島細(xì)胞中高表達(dá)。ERG家族屬于電壓依賴性鉀通道[voltage dependent K+(Kv) channels],包括KCNH2編碼的ERG1通道,KCNH6基因編碼的ERG2通道以及KCNH7編碼的ERG3。KCNH2突變的患者患有2型長QT間期綜合征(long-QT syndrome)且胰島素分泌濃度升高[2]。
糖尿病多重病理生理過程被描述為“惡兆八重奏” (ominous octet)[3]:①胰島β細(xì)胞胰島素分泌缺陷;②肌肉組織葡萄糖攝取減少;③肝糖輸出增加;④“腸促胰島素效應(yīng)”減弱;⑤胰高血糖素濃度升高;⑥腎臟對葡萄糖的處理失調(diào);⑦神經(jīng)遞質(zhì)功能紊亂;⑧脂代謝紊亂。脂代謝紊亂主要表現(xiàn)為總膽固醇(total cholesterol,TC)、三酰甘油(triglyceride,TG)和低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein-cholesterol,LDL-C)的升高,常伴有高密度脂蛋白膽固醇(high density lipoprotein-cholesterol,HDL-C)的降低。糖尿病合并脂代謝紊亂貫穿于糖尿病胰島素抵抗、血糖調(diào)節(jié)異常及糖尿病發(fā)生、發(fā)展的始末。糖尿病患者存在的糖脂代謝異常是引起血管神經(jīng)組織病變,進(jìn)而導(dǎo)致大血管及微血管合并癥的重要原因,也是糖尿病致死率增高的主要原因[4]。
本課題組[5]的前期工作中,發(fā)現(xiàn)1個KCNH6鉀通道雜合突變的糖尿病家系,家系中成年患者表現(xiàn)為低胰島素血癥和糖尿病,且KCNH6在葡萄糖刺激的胰島素分泌中發(fā)揮重要作用,課題組前期采用TALEN技術(shù)成功構(gòu)建了KCNH6基因全身性敲除小鼠動物模型,發(fā)現(xiàn)敲除小鼠存在糖耐量異常。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),6基因敲除小鼠存在血脂代謝異常,其作用機(jī)制與AMPK參與的脂肪酸氧化有關(guān)。上述研究都是在KCNH6基因全身性敲除的基礎(chǔ)上完成。為了更精確的研究KCNH6基因?qū)Ω闻K脂代謝的影響,本研究將采用Cas9技術(shù)構(gòu)建KCNH6基因條件性敲除(conditional knockout,CKO)動物模型,并將其與肝臟特異性Cre小鼠(Alb-cre)雜交,最終得到KCNH6肝臟特異性敲除小鼠,探討KCNH6基因?qū)Ω闻K血脂代謝的調(diào)控作用。
SPF級健康的雄性C57BL/6J小鼠,8周齡,購于南京大學(xué),實驗動物許可證號:SCXK(京)2011-0012。實驗時,雄性KCNH6敲除小鼠(KCNH6 knockout,KCNH6 KO)與野生對照小鼠(wild-type,WT)均為20周齡。飼養(yǎng)在環(huán)境溫度為20~24 ℃、環(huán)境濕度為50%~70%的SPF級動物房內(nèi),正常日光周期,自由進(jìn)食及飲水,保持墊料干燥。
在小鼠KCNH6基因的非編碼區(qū)中選擇內(nèi)含子2、3間和內(nèi)含子4、5之間分別設(shè)計Cas9插入同向的LoxP序列,并在LoxP序列兩端攜帶相應(yīng)的同源序列,構(gòu)建出兩段“同源序列-LoxP-同源序列”的DNA片段作為打靶載體,設(shè)計策略見圖1。5′端Cas9序列為5′-TAGGTAAAGCTGCTGTCCAAGCGGG-3′;3′端Cas9序列為5′-TGTCTCTAGCTGCTAACTTTGG-3′。
圖1 Cas9設(shè)計策略Fig.1 Design strategy of Cas9UTR: untranslated regions
將純化后的打靶載體通過顯微注射的方法注入小鼠胚胎干細(xì)胞中,得到攜帶LoxP突變基因的靶細(xì)胞。將中靶細(xì)胞注入小鼠囊胚中內(nèi),將囊胚植入假孕小鼠子宮,發(fā)育得到F0代LoxP突變基因的嵌合體小鼠。
將嵌合體小鼠與野生型C57/B6小鼠進(jìn)行繁育,得到F1代小鼠。通過基因型鑒定篩選出F1代雜合子,并用其作為親本。交配繁育F2代,得到的F2代再進(jìn)行基因鑒定,最終得到兩條染色體均帶有LoxP突變基因的純合突變小鼠(Flox小鼠),從而建立突變?nèi)后w。
下列反應(yīng)物構(gòu)成20 μL的反應(yīng)體系:模板DNA 2.0 μL,緩沖液 (含Mg2+) 2.0 μL,dNTP混合物(10 mmol/L) 0.5 μL,引物混合液 (10 mol/L) 0.5 μL, DNA聚合酶(5 U/μL) 0.5 μL,超純水14.5 μL。進(jìn)行降落PCR,反應(yīng)條件:預(yù)變性95 ℃5 min。變性98 ℃30 s;退火65 ℃30 s;延伸72 ℃ 45 s;共20個循環(huán);再變性98 ℃30 s;退火55 ℃ 30 s;延伸72 ℃ 45 s;共20個循環(huán)。最后再延伸70 ℃10 min。PCR之后通過瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行鑒定。鑒定正向引物:5′-CCCCATCTGCTAAGCCTTAATTAC-3′;反向引物:5′-GAAGGCTGGAGGCTGCAAACC-3′。
由于Flox鼠的目的基因片段上下游均插入了同向的LoxP片段,將其與CreT小鼠進(jìn)行雜交后,即能在特異性表達(dá)Cre重組酶的組織中將兩段LoxP序列之間的基因刪除,同時生成一個終止子,以達(dá)到條件性敲除目的基因的作用。剪取小鼠尾尖消化后,使用酚/氯仿法抽提基因組DNA,隨后進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng)鑒定小鼠基因型。
構(gòu)建PCR反應(yīng)體系。PCR反應(yīng)條件:預(yù)變性95 ℃5 min;變性95 ℃30 s;退火58 ℃30 s;延伸72 ℃30 s;共40個循環(huán),最后再延伸70 ℃10 min。PCR之后通過瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行鑒定。根據(jù)電泳結(jié)果篩選含有目的條帶的小鼠,判斷對應(yīng)小鼠是雜合子還是純合子,引物序列見表1。
小鼠自離乳后開始監(jiān)測體質(zhì)量和進(jìn)食量。10周和20周禁食12 h后內(nèi)眥取血,監(jiān)測體質(zhì)量、進(jìn)食量和血液生物化學(xué)相關(guān)指標(biāo)。
應(yīng)用Prism5 (GraphPad Software) 進(jìn)行統(tǒng)計分析。兩組間均數(shù)比較采用獨(dú)立樣本的Mann-WhitneyU檢驗。體質(zhì)量監(jiān)測采用雙因素重復(fù)測量的方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
表1 引物序列
F:forward;R:reverse.
將F0代Flox小鼠與野生型C57/B6小鼠進(jìn)行繁育,得到F1代小鼠。剪尾提取基因組后,采用降落PCR擴(kuò)增的方法檢測Flox片段。理論上,不含F(xiàn)lox片段的小鼠可見1條307 bp條帶,F(xiàn)lox純合子只有1條400 bp條帶,雜合子有307 bp和400 bp 2條帶。63和69為野生型,64、65、66、67為Flox雜合子小鼠(圖2)。
圖2 KCNH6條件性敲除小鼠鑒定電泳圖Fig.2 Electrophoretic pattern of KCNH6 conditioned knockout mice identification63-69: mouse; TRANS 2K: marker.TRANS 2K plus II marker (bp): 8 000,5 000,3 000,2 000,1 000,750,500,250,100; 500 bp is highlight; P: positive control; B6: C57/B6; N: negative control.
將Flox純合子小鼠(基因型為KCNH6flox/wt)與CreT小鼠進(jìn)行雜交,得到表達(dá)Cre重組酶的Flox雜合鼠(基因型為KCNH6flox/wtCreT)和不表達(dá)Cre的Flox雜合鼠(基因型為KCNH6flox/wtCreW)。采用KCNH6flox/wtCreT進(jìn)行內(nèi)交,可得到表達(dá)Cre的Flox純合鼠,基因型為KCNH6flox/floxCreT;或不表達(dá)Cre的小鼠,基因型為KCNH6flox/floxCreW。
采用鼠尾消化后提取DNA,PCR擴(kuò)增檢測Flox和Cre的表達(dá)。表達(dá)Flox片段的小鼠可在400 bp見條帶(圖3A),表達(dá)Crew重組酶的鼠在351 bp處可見條帶(圖3B),表達(dá)CreT重組酶的鼠在390 bp處可見條帶(圖3C)。成功構(gòu)建出KCNH6基因肝臟細(xì)胞敲除鼠(基因型為KCNH6flox/floxCreT)及其對照鼠(基因型為KCNH6flox/floxCreW)。280為KCNH6flox/floxCreT(以下簡稱為KO鼠)。278、279、281、282為KCNH6flox/floxCreW(以下簡稱為WT鼠)。
經(jīng)過大量繁殖后,得到大量KO和WT小鼠。選取雄鼠和雌鼠,監(jiān)測小鼠體質(zhì)量,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)(圖4)。
圖3 KCNH6肝臟細(xì)胞特異性敲除小鼠鑒定圖Fig.3 Electrophoretic pattern of KCNH6 hepatic knockout mice identificationA:left: Flox is 400 bp; right: LoxP is 514 bp; B:CreW is 351 bp;C:CreT is 390 bp; P: positive control; B6: C57/B6; N: negative control; DL2000: marker. DL2000 marker: 2 000,1 000,750,500,250,100 bp. 750 bp is highlight.
圖4 體質(zhì)量曲線監(jiān)測Fig.4 Detection of body weightA:male, WT:n=6,KO: n=9; B:female, WT:n=7,KO: n=8;WT: wild-type; KO: knockout.
選取雌鼠和雄鼠KO,同窩對照為WT小鼠。分別在8周和20周禁食后內(nèi)眥取血,測血清中總膽固醇、三酰甘油、高密度脂蛋白膽固醇和低密度脂蛋白膽固醇。8周的雄鼠血脂4項差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),KO雌鼠的總膽固醇、三酰甘油和低密度脂蛋白膽固醇均有升高趨勢,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,圖5)。20周時,KO雄鼠總膽固醇、三酰甘油和低密度脂蛋白膽固醇均明顯高于WT組(P<0.05,圖6)。
圖5 8周KO和WT小鼠血脂4項檢測結(jié)果Fig.5 Results of lipid metabolism in mice of 8-week-old A: male, WT: n=6, KO: n=9; B: female, WT: n=7, KO: n=8;TC: total cholesterol;TG: triglycerides;HDL-C: high density lipoprotein-cholesterol; LDL-C: low density lipoprotein-cholesterol;WT: wild-type; KO: knockout.
圖6 20周小鼠血脂4項檢測結(jié)果 Fig.6 Results of lipid metabolism in mice of 20-week-old A:male, WT: n=6, KO: n=9,*P<0.05,**P<0.01; B:female, WT: n=7,KO: n=8; TC: total cholesterol;TG:triglycerides;HDL-C: high density lipoprotein-cholesterol; LDL-C: low density lipoprotein-cholesterol;WT: wild-type; KO: knockout.
本研究采用Cas9技術(shù)構(gòu)建了KCNH6條件性敲除小鼠,并將其與肝臟細(xì)胞特異性Cre (Alb-cre) 小鼠雜交,最終得到KCNH6基因肝臟細(xì)胞特異性敲除小鼠。以同窩對照為陰性對照,監(jiān)測兩組小鼠的一般狀況發(fā)現(xiàn)其體質(zhì)量和進(jìn)食量差異均無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。成年雄性小鼠的膽固醇、三酰甘油和低密度脂蛋白較對照組均有明顯升高,提示模型小鼠存在肝臟血脂代謝異常。
經(jīng)典的基因敲除有時候會因為某些基因?qū)ε咛グl(fā)育有影響而無法正常分娩,或者不能產(chǎn)生后代而不能獲得純合子動物模型。而條件性基因敲除技術(shù)可以在特定的組織內(nèi)敲除某個基因,從而避免這一問題,并且有更高的特異性,更有助于研究基因在特異性組織的作用。目前應(yīng)用最為廣泛的是基于Cre/LoxP系統(tǒng)構(gòu)建條件性基因敲除小鼠[6]。Cre重組酶由大腸桿菌F1噬菌體中Cre基因編碼,是由343個氨基酸組成的蛋白質(zhì),它可以特異性識別DNA上的LoxP序列,后續(xù)介導(dǎo)不同的特異性重組反應(yīng)[7]。傳統(tǒng)的條件性基因敲除技術(shù),采用ES細(xì)胞技術(shù)先構(gòu)建條件性敲除小鼠,該技術(shù)穩(wěn)定性高、特異性好,但實驗步驟繁瑣、周期較長等。Le等[8]利用RNA引導(dǎo)Cas9核酸酶技術(shù)可以在多種細(xì)胞中特定的基因組位點(diǎn)進(jìn)行切割、修飾,這一技術(shù)隨即被運(yùn)用到構(gòu)建基因敲除動物模型中。Cas9技術(shù)具有靶向精確性高,實驗周期短,成本低和無物種限制等優(yōu)點(diǎn),在動物模型構(gòu)建的應(yīng)用前景十分廣闊。本研究采用Cas9技術(shù)構(gòu)建了KCNH6基因條件性敲除小鼠,用時僅半年。后期與肝臟細(xì)胞特異性Cre小鼠雜交1年后,得到大量KCNH6肝臟細(xì)胞特異性敲除小鼠。
肝臟組織、脂肪組織和肌肉組織是參與機(jī)體能量代謝的重要組織器官。其中,肝臟作為機(jī)體的主要代謝器官,是體內(nèi)碳水化合物和脂質(zhì)生物合成的主要場所,在調(diào)節(jié)機(jī)體的糖脂調(diào)節(jié)中起著重要的作用。機(jī)體中糖代謝與脂代謝有密不可分的關(guān)系,一定條件下可以相互轉(zhuǎn)化。非酒精性脂肪肝(non-alcohol fatty liver disease,NAFLD)、高三酰甘油血癥、血脂增高等脂代謝紊亂癥狀在代謝綜合征、肥胖和2型糖尿病患者中普遍存在。在胰島素抵抗時,肝臟糖代謝發(fā)生紊亂,后者又加重胰島素抵抗;細(xì)胞中的脂肪酸大量堆積可以導(dǎo)致胰島素抵抗,進(jìn)而引發(fā)糖耐量異常,形成惡性循環(huán)。NAFLD可發(fā)展為非酒精性脂肪性肝炎(non-alcoholic steatohepatitis,NASH)和進(jìn)行性肝纖維化,最終導(dǎo)致肝硬化和肝癌[9]。過量的脂質(zhì)不僅在肝臟內(nèi)積聚,還會在胰腺外周積聚,導(dǎo)致非酒精性脂肪性胰腺疾病(non-alcoholic fatty pancreas disease,NAFPD)。研究[10-11]顯示,NAFPD促進(jìn)胰島素抵抗和糖尿病。長期增加循環(huán)血液中的游離脂肪酸(free fatty acids,F(xiàn)FA)可導(dǎo)致細(xì)胞脂質(zhì)毒性,并導(dǎo)致細(xì)胞功能障礙,增加基礎(chǔ)胰島素釋放和葡萄糖刺激的胰島素分泌紊亂。目前對于KCNH6在肝臟中的作用及其具體作用機(jī)制尚不清楚。本研究成果構(gòu)建了KCNH6肝臟細(xì)胞特異性敲除小鼠,并且發(fā)現(xiàn)成年雄鼠存在較明顯的血脂代謝紊亂。模型小鼠的構(gòu)建,將有助于明確KCNH6在肝臟血脂代謝中的具體作用機(jī)制。
建立在動物模型構(gòu)建成功的基礎(chǔ)上,本研究擬通過高脂誘導(dǎo)喂養(yǎng)雄性小鼠,看能否有更明顯的脂代謝異常表型。進(jìn)一步通過分子表達(dá)譜測序,蛋白印記和定量PCR等方法尋找相關(guān)信號通路,明確KCNH6在肝臟脂代謝中的作用及其相關(guān)機(jī)制。