趙雪平,溫雅嬌,李正英*,鄭海武,黃海英,李曉娟
1(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué) 職業(yè)技術(shù)學(xué)院,內(nèi)蒙古 包頭,014109) 2(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,內(nèi)蒙古 呼和浩特,010018)
酵母菌在葡萄酒發(fā)酵過程中扮演著重要的角色,它可以分解葡萄汁中的大部分糖轉(zhuǎn)化為酒精和CO2。但還會生成一些其他的代謝產(chǎn)物,包括甘油、高級醇、酯、醛等,而這些代謝產(chǎn)物影響了葡萄酒的色澤、香氣及口感, 決定著葡萄酒的質(zhì)量[1]。釀酒酵母的篩選是優(yōu)良酵母菌選育的基礎(chǔ),因此意義非常巨大。酵母的一般來源有果實表面、土壤、發(fā)酵醪液等,內(nèi)蒙古烏海地區(qū)的地理和氣候為葡萄生長提供了很好的條件,優(yōu)質(zhì)的葡萄又為酵母菌提供了生長繁殖的場所,因此期許在此地區(qū)能夠篩選出優(yōu)良的釀酒酵母菌。另外優(yōu)良的釀酒酵母應(yīng)具備起酵快的特點,而且也要有一定的耐受性,也是考察釀酒酵母能否運用于生產(chǎn)的條件[2]。目前大多數(shù)釀酒企業(yè)或酒莊都使用進口釀酒酵母或國內(nèi)的安琪酵母,國內(nèi)釀酒酵母品種單一,這也是篩選釀酒酵母的另一個重要原因[3]。
本研究篩選內(nèi)蒙古烏海地區(qū)的葡萄果皮、果園土樣以及自然發(fā)酵醪液中的釀酒酵母,并以商品化釀酒酵母為對照,研究其耐受性、發(fā)酵特性并進行了鑒定,以期為我國葡萄酒品質(zhì)提升提供依據(jù)。
1.1.1 菌種
(1)測試菌種:采集于內(nèi)蒙古烏海地區(qū)釀酒葡萄果園的土壤、果實表皮及發(fā)酵醪液。
(2)對照菌種:商用釀酒酵母CECA(安琪酵母股份有限公司)、商用釀酒酵母CSM(法國拉曼公司)。
1.1.2 原料
釀酒葡萄采于內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)職業(yè)技術(shù)學(xué)院科技園區(qū)。
1.1.3 培養(yǎng)基
孟加拉紅瓊脂培養(yǎng)基(g/L):孟加拉紅0.033,氯霉素0.1,MgSO40.5,KH2PO41,蛋白胨5,葡萄糖10,瓊脂15;
YEPD固體培養(yǎng)基(g/L):酵母浸出粉5,蛋白胨10,瓊脂14,葡萄糖20;
YPD液體培養(yǎng)基(g/L):酵母浸出粉10,蛋白胨20,葡萄糖20;
TTC上層培養(yǎng)基[4](g/L):氯化三苯基四氮唑(TTC) 0.5,葡萄糖5,瓊脂15;
TTC下層培養(yǎng)基[4](g/L):MgSO40.4,KH2PO41.0,酵母浸出粉1.5,蛋白胨2,葡萄糖10,瓊脂20,調(diào)節(jié)pH至5.5;
BIGGY瓊脂培養(yǎng)基(g/L):BIGGY瓊脂45;
產(chǎn)酯固體培養(yǎng)基[5-6](g/L):溴甲酚紫0.04,三丁酸甘油脂15 mL/L,酵母浸粉10,蛋白胨20,葡萄糖20,瓊脂20;
發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):(NH4)2SO41,MgSO41,KH2PO41,酵母浸粉10,胰蛋白胨20,葡萄糖200。
1.1.4 主要試劑
酵母浸粉、胰蛋白胨,北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;葡萄糖,天津市風(fēng)船化學(xué)試劑科技有限公司;瓊酯粉,天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;KH2PO4,天津市標(biāo)準(zhǔn)科技有限公司;(NH4)2SO4,天津市天大化學(xué)試劑廠;MgSO4,北京雙環(huán)化學(xué)試劑廠;NaOH,天津市盛奧化學(xué)試劑有限公司;乳酸,天津市化學(xué)試劑三廠;乳酸鉀,山東優(yōu)索化工科技有限公司;酒石酸鉀鈉,國藥集團化學(xué)試劑有限公司;酵母菌DNA提取試劑盒,天根生化科技有限公司;引物、dNTPs、Taq 酶,上海生工生物技術(shù)服務(wù)有限公司。
1.1.5 儀器與設(shè)備
synergyHIMF+Take3全功能酶標(biāo)儀,美國BioTek儀器有限公司;THZ-98AB恒溫振蕩培養(yǎng)箱、LRH-70生化培養(yǎng)箱、CX21光學(xué)顯微鏡、HWS12電熱恒溫水浴鍋,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;SX-700立式壓力蒸汽滅菌鍋,北京世貿(mào)遠東科學(xué)儀器有限公司;VD-1320超凈工作臺,哈爾濱東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司;HC-2518R高速離心機,海玉博生物科技有限公司。
1.2.1 釀酒酵母菌株的分離純化
采集內(nèi)蒙古烏海地區(qū)的果園土壤30份、葡萄表皮30份和農(nóng)家發(fā)酵醪液10份,作為酵母菌的分離來源。將收集的葡萄或土壤樣品制成菌液,并且稀釋,吸取50 μL稀釋后的菌液于孟加拉紅固體平板上,用涂布棒涂勻,28 ℃培養(yǎng)1~3 d。挑選單個的具有典型酵母菌菌落特征且形態(tài)差異較為明顯的菌落,劃線純化2~3代,將上述分離純化得到的酵母菌接入YEPD斜面培養(yǎng)基,4 ℃保藏。
1.2.2 釀酒酵母菌株的篩選
將分離后的酵母菌株利用TTC培養(yǎng)基顯色法測定菌株產(chǎn)乙醇能力,BIGGY瓊脂培養(yǎng)基顯色法測定菌株產(chǎn)H2S的性能以及產(chǎn)酯培養(yǎng)基顯色法測定菌株產(chǎn)酯特性。篩選出產(chǎn)乙醇能力強、低產(chǎn)H2S且高產(chǎn)酯的優(yōu)良酵母菌株。
1.2.2.1 高產(chǎn)乙醇酵母菌株的篩選
酵母菌株劃線接種到TTC下層培養(yǎng)基上,以商業(yè)釀酒酵母CECA和CSM及空白試驗作為對照,28 ℃培養(yǎng)1~3 d后,在菌落上覆蓋一層TTC上層培養(yǎng)基,28 ℃遮光培養(yǎng)。觀察各平皿中菌落的顯色情況,菌株與培養(yǎng)基反應(yīng),使菌落呈現(xiàn)白色、淺紅色、紅色和深紅色,菌落呈現(xiàn)的顏色越深,表明菌株產(chǎn)乙醇能力越強。
1.2.2.2 低產(chǎn)H2S酵母菌株的篩選
將1.2.2.1中篩選出的高產(chǎn)乙醇酵母菌株點種到BIGGY瓊脂培養(yǎng)基上,并以商業(yè)釀酒酵母CECA和CSM及空白試驗作為對照,28 ℃培養(yǎng)1~3 d,觀察各菌株菌落顏色,菌株產(chǎn)生的H2S與BIGGY培養(yǎng)基中的鉍發(fā)生反應(yīng),使菌落呈現(xiàn)白色、黃色、淺棕色和深棕色,顏色越深,代表菌株產(chǎn)H2S的量越多。
1.2.2.3 高產(chǎn)酯酵母菌株的篩選
將1.2.2.2中篩選出的酵母菌株劃線接種到產(chǎn)酯培養(yǎng)基上,以商業(yè)釀酒酵母CECA和CSM及空白試驗作為對照。觀察其菌落顏色。菌株產(chǎn)酯能力不同所呈現(xiàn)在產(chǎn)酯平板上的菌落顏色也不相同,菌落黃色越深,表明菌株的產(chǎn)酯量越多[7]。
1.2.3 酵母菌株耐受性測定
耐受性測定包括耐乙醇性能試驗、耐SO2性能試驗、高糖耐受性試驗和低pH的耐受性試驗,將YPD液體培養(yǎng)基分裝到試管中再放入倒置的杜氏管中,杜氏管內(nèi)不含空氣。121 ℃滅菌20 min,冷卻至室溫,按照表1的條件調(diào)節(jié)培養(yǎng)基的濃度梯度,接種待測酵母菌株體積分?jǐn)?shù)為2%,每個處理平行3次,28 ℃培養(yǎng)1~3 d,觀察其產(chǎn)氣狀況判斷其耐受性。以商業(yè)釀酒酵母CECA和CSM及空白試驗作為對照。
表1 酵母菌株耐受性測定條件梯度Table 1 Conditional gradient for tolerance measurement ofyeast strains
1.2.4 優(yōu)良菌株的鑒定
1.2.4.1 酵母菌DNA的提取
采用柱式酵母基因組 DNA 抽提試劑盒提取。
1.2.4.2 菌株26S rDNA D1/D2基因序列的PCR擴增
(1)引物設(shè)計:正向引物NL1(5′-GCATATCAATAAGCGGAGGAAAAG-3′)和反向引物NL4(5′-GGTCCGTGTTTCAAGACGG-3′)[8-10]。
(2)反應(yīng)體系:引物(10 μmol/L)各0.5 μL,基因組 DNA 0.5 μL,10×Buffer(with Mg2+)2.5 μL,2.5 mmol/L的dNTP 1 μL,Taq酶0.2 μL,加雙蒸水補足至25 μL。
(3)PCR擴增條件:94 ℃,4 min;94 ℃,45 s;55 ℃,45 s;72 ℃,1 min,循環(huán)30次;72 ℃,延伸10 min。PCR產(chǎn)物取5 μL在1%瓊酯糖凝膠電泳上進行電泳檢測,電泳參數(shù):150 V,100 mA,10~20 min電泳觀察[8-10]。
酵母菌株序列測定后,將測序結(jié)果在NCBI數(shù)據(jù)庫中進行比對,通過比對測序菌株與數(shù)據(jù)庫中模式菌株的可信值,構(gòu)建系統(tǒng)進化樹。
1.2.5 酵母菌株發(fā)酵產(chǎn)品感官評價
將培養(yǎng)至對數(shù)生長期的優(yōu)良菌株接種到Y(jié)PD液體培養(yǎng)基中,在 10 ℃、12 000 r/min條件下離心3 min,收集菌泥備用[11]。選用種植于內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)職業(yè)技術(shù)學(xué)院科技園區(qū)的葡萄進行發(fā)酵試驗[葡萄汁理化指標(biāo)為: 23.0 °Brix,還原糖154.07 g/L,總酸(6.86±0.2)g/L,pH 3.14]。葡萄汁中按體積分?jǐn)?shù)2%的接種量接入優(yōu)良酵母菌株,同時用法國商業(yè)酵母CSM和國產(chǎn)商業(yè)酵母CECA作對照。在 25 ℃下恒溫發(fā)酵。每24 h測定還原糖、總酸和乙醇體積分?jǐn)?shù),當(dāng)殘?zhí)琴|(zhì)量濃度下降至4 g/L 以下時視為發(fā)酵結(jié)束,按照GB/T 15037—2006[12]的方法,組織7位有經(jīng)驗的品評員,進行感官評定[13-14]。
將釀酒葡萄產(chǎn)區(qū)的部分地區(qū)所采集的葡萄及其果園土壤樣品或發(fā)酵醪液中酵母菌的分離純化,通過對酵母菌形態(tài)觀察以及顯微鏡鏡檢,初步去除重復(fù)菌株,共篩選出13株酵母菌株編號為KY1~KY3、KA1~KA3、KX1~KX4、KB1~KB3,如圖1所示,多數(shù)為出芽繁殖的橢球形菌株。
圖1 酵母菌在YEPD培養(yǎng)基上的菌落特征以及顯微鏡下的形態(tài)Fig.1 Colony characteristics of yeast on YEPD medium andmorphology under microscope
2.2.1 高產(chǎn)乙醇酵母菌的篩選
將分離純化的13株酵母菌進行產(chǎn)乙醇能力試驗,結(jié)果見表2。
表2 酵母菌在TTC培養(yǎng)基上的顯色結(jié)果Table 2 Chromogenic results of yeast on TTC medium
由表2可知,有4株酵母菌(KX4、KA3、KX2、KX3)的菌落在TTC培養(yǎng)基上呈深紅色,其產(chǎn)乙醇能力與對照組相當(dāng),因此選擇這4株產(chǎn)乙醇能力強的酵母菌進行下一步的篩選試驗。
圖2 酵母菌在TTC培養(yǎng)基上的的顯色結(jié)果Fig.2 The colour results of yeast on TTC medium注:從左到右為:深紅色、紅色、淺紅色
2.2.2 低產(chǎn)H2S酵母菌株的篩選試驗
將高產(chǎn)酒精的4株酵母菌進行低產(chǎn)H2S酵母菌株的篩選試驗,結(jié)果見表3。
表3 酵母菌在BIGGY培養(yǎng)基上菌落顏色Table 3 Colony colour of yeast on BIGGY medium
BIGGY瓊脂是一種具有選擇性的培養(yǎng)基,使用鉍作為指示劑,來測定菌株生長時是否有產(chǎn)生H2S[14],顏色越深,表面菌株產(chǎn)H2S越多[15]。由圖3可知,對照菌株CECA菌落在BIGGY培養(yǎng)基上呈淺棕褐色,為低產(chǎn)H2S酵母,CSM呈棕褐色,為中產(chǎn)H2S酵母。H2S產(chǎn)生的不良?xì)馕稌绊懫咸丫频娘L(fēng)味[16],且對人體有毒害作用,基于此,僅保留低產(chǎn)和中產(chǎn)H2S的菌株KX3、KX2和KX4作后續(xù)研究。
圖3 酵母菌在BIGGY培養(yǎng)基上的的顯色結(jié)果Fig.3 The results of yeast colour on BIGGY medium注:從左到右為:淺棕褐色、棕褐色、褐色
2.2.3 高產(chǎn)酯酵母菌株的篩選結(jié)果
將3株低產(chǎn)或中產(chǎn)H2S高產(chǎn)乙醇酵母分別接種到產(chǎn)酯培養(yǎng)基上,并以商業(yè)菌株CECA和CSM作對照,28 ℃恒溫培養(yǎng)1~3 d。觀察菌落附近的顏色并記錄,顯色結(jié)果見表4。
表4 產(chǎn)酯特性篩選結(jié)果Table 4 Screening results of ester-producing characteristics
由圖4可知,對照菌株CECA、CSM及KX3的菌落在產(chǎn)酯培養(yǎng)基上呈深黃色,即產(chǎn)酯能力較強,所以選擇KX3酵母菌株進行后續(xù)研究。
圖4 酵母菌在產(chǎn)脂培養(yǎng)基上的的顯色結(jié)果Fig.4 The colour results of yeast on lipid-producing medium注:從左到右為:黃色、淺黃色
2.3.1 酵母菌株26S rDNA D1/D2區(qū)域的PCR擴增
如圖5所示,通過對酵母菌株DNA 的提取和PCR擴增,可以看出酵母菌株的DNA片段長度在580~600 bp左右,符合前人對酵母菌基因序列長度的研究范圍[17]。
圖5 酵母菌株P(guān)CR擴增電泳圖Fig.5 PCR amplified electrophoresis map of yeast strains
2.3.2 酵母菌株26S rDNAD1/D2區(qū)測序結(jié)果
DNA測序結(jié)果在NCBI網(wǎng)站上進行序列同源性比對,結(jié)果如表5所示。比較得到酵母菌株KX3的DNA片段與釀酒酵母同源性最高,達到100%,與測序結(jié)果進行對比,并用MEGA4.1構(gòu)建系統(tǒng)進化樹,如圖6所示。最終確定酵母菌株KX3為釀酒酵母。
表5 酵母菌株26S rDNA D1/D2序列測序結(jié)果Table 5 Sequencing results of 26S rDNA D1/D2 sequenceof yeast strain
圖6 酵母菌株26S rDNA構(gòu)建的系統(tǒng)進化樹Fig.6 Phylogenetic tree constructed by yeast strain 26S rDNA
將篩選出的酵母菌株KX3進行耐受性試驗測定,試驗結(jié)果見表6。
表6 酵母菌株耐受性能測定試驗結(jié)果Table 6 Screening results of ester-producing characteristics
由表6可知,菌株KX3的耐乙醇體積分?jǐn)?shù)為16%,耐SO2質(zhì)量濃度為400 mg/L耐高糖質(zhì)量濃度為500 g/L,耐低pH值為2.5,符合釀酒生產(chǎn)的標(biāo)準(zhǔn)。
由圖7可知,斜率越大發(fā)酵越快,KX3與CECA的發(fā)酵速率相當(dāng),且高于菌株CSM;從圖8可以看出,從第4~12 h起,OD值隨培養(yǎng)時間延長而快速增長,進入對數(shù)生長期,培養(yǎng)到12 h后進入穩(wěn)定期,說明該菌株具有良好的生長特性[18-19]。
圖7 CO2失重量Fig.7 CO2 weight loss
圖8 KX3生長曲線圖Fig.8 OD600 value of growth curve of KX3
對優(yōu)選的釀酒酵母KX3和2株商業(yè)釀酒酵母發(fā)酵葡萄酒的色澤、香氣、澄清度、滋味、典型性等方面進行了評分[20-21],結(jié)果見圖9。
圖9 不同酵母菌發(fā)酵的干紅葡萄酒感官評定Fig.9 Sensory scoring scale for dry red wine fermentedby different yeasts
在2株商業(yè)酵母菌和1株優(yōu)選酵母菌發(fā)酵葡萄酒的感官評分中,CECA發(fā)酵葡萄酒經(jīng)感官評價,酒體澄清透亮有光澤,呈寶石紅色,有典型的葡萄酒風(fēng)味,回味綿長,總評分為91分;CSM發(fā)酵葡萄酒經(jīng)感官評價,酒體澄清透亮有光澤,呈寶石紅色,清新爽口,果香協(xié)調(diào),具有典型性,總評分為85分;KX3發(fā)酵葡萄酒,酒體澄清透亮有光澤,呈寶石紅色,口感細(xì)膩柔和,果香馥郁,酒體豐滿,典型明確,總評分為89分。篩選出的優(yōu)良菌株中KX3釀制的葡萄酒評分僅次于對照菌CECA ,具備葡萄酒的典型特性。
優(yōu)良釀酒酵母菌表現(xiàn)為具有良好的耐受性、發(fā)酵特性及發(fā)酵產(chǎn)品典型的風(fēng)味,目前本土優(yōu)良釀酒酵母菌有待進一步的分離和篩選,本文以內(nèi)蒙古烏海地區(qū)果園的土壤、葡萄果皮及發(fā)酵醪液為篩選源,并以商業(yè)釀酒酵母菌CECA、CSM為對照,篩選出的菌株KX3經(jīng)26S rDNA D1/D2區(qū)測序鑒定為釀酒酵母菌,耐乙醇體積分?jǐn)?shù)為16%,耐SO2質(zhì)量濃度為400 mg/L,耐高糖質(zhì)量濃度為500 g/L,耐pH值為2.5,并且起酵快,經(jīng)感官評定,酒體果香濃郁、典型性好,可以運用于商業(yè)化生產(chǎn),而發(fā)酵產(chǎn)生的香氣物質(zhì)還有待進一步研究。